Сравнительная оценка морфологических особенностей гравидарного эндометрия при эмбриональных потерях
- Авторы: Траль Т.Г.1,2, Толибова Г.Х.1,3
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
- Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
- Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
- Выпуск: Том 74, № 2 (2025)
- Страницы: 59-67
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.rcsi.science/jowd/article/view/296137
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD654814
- EDN: https://elibrary.ru/KOAQKS
- ID: 296137
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Применение программ вспомогательных репродуктивных технологий для преодоления бесплодия в ряде случаев продолжает оставаться единственным способом рождения ребенка. К сожалению, частота репродуктивных потерь достигает средних значений в популяции, эндометриальная дисфункция является причиной нарушения морфогенеза трансформации гравидарного эндометрия как одного из значимых факторов репродуктивных потерь в программах вспомогательных репродуктивных технологий и привычном невынашивании беременности.
Цель — сравнить морфологические особенности абортивного материала при неразвивающейся беременности I триместра, наступившей после применения методов вспомогательных репродуктивных технологий, и при привычном невынашивании беременности.
Материалы и методы. Исследования проведены на 97 образцах неразвивающейся беременности на сроке 5–8 нед. Выполнено гистологическое исследование по стандартной методике. Иммуногистохимическое исследование с оценкой экспрессии прогестерон-индуцированного блокирующего фактора, стромального клеточного фактора-1, апоптоз-индуцирующего фактора и эндотелиального маркера проведено по стандартной методике. Цифровую микроскопию выполнили на микроскопе Olympus BX46 (Olympus Co., Япония) с использованием программного обеспечения СellSens 47 Entry (Olympus Co., Япония). Экспрессию маркеров рассчитывали с помощью программы «ВидеоТесТ-Морфология 5.2» (ООО «ВидеоТесТ», Россия) с последующим статистическим анализом с использованием пакетов программ SPSS 23.0 (США) и GraphPad Prism 9 (США).
Результаты. При неполноценной гравидарной трансформации эндометрия верифицированы статистически значимое снижение экспрессии прогестерон-индуцированного блокирующего фактора и стромального клеточного фактора-1 в строме и железах, статистически значимое повышение экспрессии апоптоз-индуцирующего фактора в железах эндометрия. В железах эндометрия с полноценной гравидарной трансформацией после ЭКО экспрессия прогестерон-индуцированного блокирующего фактора была статистически значимо выше по сравнению экспрессией в условиях неразвивающейся беременности при привычном невынашивании. Аналогичные данные в экспрессии стромального клеточного фактора-1 в железах и строме и экспрессии СD34+ в строме гравидарного эндометрия получены при статистическом сравнении маркеров при полноценной гравидарной трансформации после ЭКО и привычном невынашивании беременности.
Заключение. Снижение экспрессии прогестерон-индуцированного блокирующего фактора и стромального клеточного фактора-1 в гравидарном эндометрии приводит к потере локальной иммуносупрессии и может стать причиной репродуктивных потерь независимо от способа наступления беременности. Повышение экспрессии апоптоз-индуцирующего фактора в железах гравидарного эндометрия и повышение экспрессии CD34+ в строме эндометрия при ЭКО и привычном невынашивании беременности свидетельствуют о патологической активации процессов ангиогенеза и апоптоза.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Татьяна Георгиевна Траль
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта; Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: ttg.tral@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8948-4811
SPIN-код: 1244-9631
д-р мед. наук
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургГулрухсор Хайбуллоевна Толибова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта; Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
Email: gulyatolibova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6216-6220
SPIN-код: 7544-4825
д-р мед. наук
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургСписок литературы
- Warren SG. Can human populations be stabilized? Earth’s Future. 2015;3:82–94. doi: 10.1002/2014EF000275
- Aitken RJ. The changing tide of human fertility. Human Reprod. 2022:37:629–638. EDN: JTJFJS doi: 10.1093/humrep/deac011
- Spiridonov DV, Polyakova IG. The phenomenon of delayed motherhood and assisted reproductive technologies: socio-economic and demographic aspects. The world of Russia. 2024;33(3):75–98. (In Russ.) EDN: CWIHCL doi: 10.17323/1811-038X-2024-33-3-75-98
- Zhiryaeva EA, Kiyasova EV, Rizvanov AA. Comic book technologies in reproductive medicine: assessment of the quality of oocytes and embryos. Genes and cells. 2018;13(1):35–41. EDN: YNQDWH doi: 10.23868/201805003
- Adamyan LV, Elagin VV, Pivazyan LG, et al. Preimplantation genetic testing in gynecology – to be or not to be? Problems of reproduction. 2023;29(3):16–24. EDN: FVDOXI doi: 10.17116/repro20232903116
- Tolibova GH, Tral TG. Chronic endometritis – a protracted discussion. Ural Medical Journal. 2023;22(2):142–152. EDN: DPKBJR doi: 10.52420/2071-5943-2023-22-2-142-152
- Franasiak JM, Ruiz-Alonso M, Scott RT, et al. Both slowly developing embryos and a variable pace of luteal endometrial progression may conspire to prevent normal birth in spite of a capable embryo. Fertil Steril. 2016;105:861–866. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.02.030
- Ticconi C, Di Simone N, Campagnolo L, et al. Clinical consequences of defective decidualization. Tissue Cell. 2021;72:101586. EDN: MCTICI doi: 10.1016/j.tice.2021.101586
- Yang AM, Xu X, Han Y. et al. Risk factors for different types of pregnancy losses: analysis of 15,210 pregnancies after embryo transfer. Front Endocrinol (Lausanne). 2021;12:683236. EDN: GKNKGZ doi: 10.3389/fendo.2021.683236
- Evans J, Hutchison J, Salamonsen LA, et al. Proteomic insights into endometrial receptivity and embryo-endometrial epithelium interaction for implantation reveal critical determinants of fertility. Proteomics. 2020;20(1):e1900250. EDN: QUYKTS doi: 10.1002/pmic.201900250
- Tral TG, Tolibova GH, Serdyukov SV, et al. Morphofunctional assessment of the causes of frozen pregnancy in the first trimester. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2013;62(3):83–87. EDN: RJMDYJ doi: 10.17816/JOWD62383-87
- Tral TG, Tolibova GH, Kogan IY. Implantation failure of the endometrium in cycles of in vitro fertilization in patients with chronic endometritis. Klin Exp Morphology. 2023;12(1):24–33. doi: 10.31088/CEM2023.12.1.24-33
- Ng SW, Norwitz GA, Pavlicev M, et al. Endometrial decidualization: the primary driver of pregnancy health. Int J Mol Sci. 2020;21(11):4092. EDN: FJXLXV doi: 10.3390/ijms21114092
- Harris LK, Benagiano M, D’Elios MM, et al. Placental bed research: II. Functional and immunological investigations of the placental bed. Am J Obstet Gynecol. 2019;221(5):457–469. doi: 10.1016/j.ajog.2019.07.010
- Li D, Zheng L, Zhao D, et al. The role of immune cells in recurrent spontaneous abortion. Reprod Sci. 2021;28(12):3303–3315. doi: 10.1007/s43032-021-00599-y
- Mori M, Bogdan A, Balassa T, et al. The decidua-the maternal bed embracing the embryo-maintains the pregnancy. Semin Immunopathol. 2016;38(6):635–649. EDN: BXAWTJ doi: 10.1007/s00281-016-0574-0
- Mulac-Jericevic B, Sucurovic S, Gulic T, et al. The involvement of the progesterone receptor in PIBF and Gal-1 expression in the mouse endometrium. Am J Reprod Immunol. 2019;81(5):e13104. doi: 10.1111/aji.13104
- Zheng J, Wang H, Zhou W. Modulatory effects of trophoblast-secreted CXCL12 on the migration and invasion of human first-trimester decidual epithelial cells are mediated by CXCR4 rather than CXCR7. Reprod Biol Endocrinol. 2018;6(1):17. EDN: WPUWHA doi: 10.1186/s12958-018-0333-2
- Kuo CY, Shevchuk M, Opfermann J, et al. Trophoblast-endothelium signaling involves angiogenesis and apoptosis in a dynamic bioprinted placenta model. Biotechnol Bioeng. 2019;116(1):181–192. EDN: VSDZIF doi: 10.1002/bit.26850
- Koo S, Yoon MJ, Hong SH, et al. CXCL12 enhances pregnancy outcome via improvement of endometrial receptivity in mice. Sci Rep. 2021;11(1):7397. EDN: MEXWTA doi: 10.1038/s41598-021-86956-y
- Burton GJ, Jauniaux E. Placentation in the human and higher primates. Adv Anat Embryol Cell Biol. 2021;234:223–254. EDN: RRHQJR doi: 10.1007/978-3-030-77360-1_11
- Hempstock J, Jauniaux E, Greenwold N, et al. The contribution of placental oxidative stress to early pregnancy failure. Hum Pathol. 2003;(34):12:1265–1275. doi: 10.1016/j.humpath.2003.08.006
- Fortis MF, Fraga LR, Boquett JA, et al. Angiogenesis and oxidative stress-related gene variants in recurrent pregnancy loss. Reprod Fertil Dev. 2018;30(3):498–506. doi: 10.1071/RD17117
- Hussain T, Murtaza G, Metwally E, et al. The role of oxidative stress and antioxidant balance in pregnancy. Mediators Inflamm. 2021:9962860. EDN: MJMWJE doi: 10.1155/2021/9962860
- Vacca P, Vitale C, Montaldo E, et al. CD34+ hematopoietic precursors are present in human decidua and differentiate into natural killer cells upon interaction with stromal cells. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108(6):2402–2407. doi: 10.1073/pnas.1016257108
- Bai L., Sun L, Chen W, et al. Evidence for the existence of CD34+ angiogenic stem cells in human first-trimester decidua and their therapeutic for ischaemic heart disease. J Cell Mol Med. 2020;24(20):11837–11848. EDN: HHIMOA doi: 10.1111/jcmm.15800
- Makri D, Efstathiou P, Michailidou E, et al. Apoptosis triggers the release of microRNA miR-294 in spent culture media of blastocysts. J Assist Reprod Genet. 2020;37(7):1685–1694. EDN: SOWFCL doi: 10.1007/s10815-020-01796-5
- Bakri NM, Ibrahim SF, Osman NA, et al. Embryo apoptosis identification: oocyte grade or cleavage stage? Saudi J Biol Sci. 2016;23(1):S50–S55. doi: 10.1016/j.sjbs.2015.10.0234
- Ramos-Ibeas P, Gimeno I, Cañón-Beltrán K, et al. Senescence and apoptosis during in vitro embryo development in a bovine model. Front Cell Dev Biol. 2020;8:619902. EDN: GKFWCC doi: 10.3389/fcell.2020.619902
- Bogdan A, Polgar B, Szekeres-Bartho J. Progesterone induced blocking factor isoforms in normal and failed murine pregnancies. Am J Reprod Immunol. 2014;71(2):131–136. doi: 10.1111/aji.12183
- Warner JA, Zwezdaryk KJ, Day B, et al. Human cytomegalovirus infection inhibits CXCL12-mediated migration and invasion of human extravillous cytotrophoblasts. Virol J. 2012;9:255. EDN: VFWNBS doi: 10.1186/1743-422X-9-255
- Pavlov KA, Dubova EA, Shchegolev AI. Fetoplacental angiogenesis in normal pregnancy: the role of vascular endothelial growth factor. Obstetrics and Gynecology. 2011;(3):C11–C16. (In Russ.)
- Steller JG, Alberts JR, Ronca AE. Oxidative stress as cause, consequence, or biomarker of altered female reproduction and development in the space environment. Int J Mol Sci. 2018;19(12):3729. EDN: TSKYMK doi: 10.3390/ijms19123729
- Wu S, Zhang H, Tian J, et al. Expression of kisspeptin/GPR54 and PIBF/PR in the first trimester trophoblast and decidua of women with recurrent spontaneous abortion. Pathol Res Pract. 2014;210(1):47–54. doi: 10.1016/j.prp.2013.09.017
- Ivanova AN, Popova EB, Tereshkina NE, et al. Vasomotor function of the endothelium. Advances in physiological sciences. 2020;51(4):82–104. EDN: IINNBV doi: 10.31857/S0301179820030066
- Tolibova GH. Endothelial dysfunction in women with infertility: pathogenetic determinants and clinical and morphological diagnostics [dissertation abstract]. Saint Petersburg; 2018. 40 p. EDN: YRHZUT
- Kogan IY. In vitro fertilization: a practical guide for doctors. Moscow: GEOTAR-Media; 2021. (In Russ.) EDN: FINBZV doi: 10.33029/9704-5941-6-IVF-2021-1-368
Дополнительные файлы
