Генотоксические маркеры у больных сахарным диабетом (обзор литературы)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В работе рассмотрены исследования, направленные на выявление маркеров генотоксичности (хромосомные аберрации, микроядра и повреждения ДНК, регистрируемые методом ДНК-комет) у пациентов с гестационным сахарным диабетом (ГСД) и сахарным диабетом (СД) 1-го и 2-го типов, а также возможные изменения уровней этих генотоксических маркеров под влиянием лекарственных препаратов и диет. Больные СД 2-го типа характеризуются увеличенным уровнем маркеров генотоксичности. Результаты исследований маркеров генотоксичности у пациентов с СД 1-го типа и ГСД противоречивы, однако, свидетельствуют скорее о наличии повышенной генотоксической нагрузке, чем об ее отсутствии. Уровни генотоксических повреждений у больных СД могут быть снижены под влиянием физических упражнений, диет и/или гипогликемических лекарств. К экспериментальному и клиническому изучению в качестве возможных лекарственных кандидатов, снижающих уровни генотоксических биомаркеров у больных диабетом, рекомендованы метформин, Афобазол® и Ноопепт®.

Об авторах

Наталья Вахитовна Еремина

Научно-исследовательский институт фармакологии им. В.В. Закусова

Автор, ответственный за переписку.
Email: neremina@panacelalabs.com
ORCID iD: 0000-0002-7226-5505
SPIN-код: 5224-1968

канд. биол. наук, старший научный сотрудник

Россия, 125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8

Алий Курманович Жанатаев

Научно-исследовательский институт фармакологии им. В.В. Закусова

Email: zhanataev@academpharm.ru
ORCID iD: 0000-0002-7673-8672
SPIN-код: 7070-0510
Scopus Author ID: 6506103462

канд. биол. наук, вед. научн. сотр.

Россия, 125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8

Артем Андреевич Лисицын

Научно-исследовательский институт фармакологии им. В.В. Закусова

Email: nordikal@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9597-6051
SPIN-код: 7857-1860

лаборант-исследователь лаборатории фармакологии мутагенеза

Россия, 125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8

Андрей Дмитриевич Дурнев

Научно-исследовательский институт фармакологии им. В.В. Закусова

Email: addurnev@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0218-8580
SPIN-код: 8426-0380
Scopus Author ID: 7006060753

д-р мед. наук, проф., чл.-корр. РАН

Россия, 125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8

Список литературы

  1. IDF Diabetes Atlas 9th edition. Режим доступа: https://diabetesatlas.org/en/sections/worldwide-toll-of-diabetes.html. Дата обращения: 19.05.2021.
  2. van Dieren S., Beulens J.W., van der Schouw Y.T., et al. The global burden of diabetes and its complications: an emerging pandemic // Eur J Cardiovasc Prev Rehabil. 2010. Vol. 17, Suppl 1. P. S3–S8. doi: 10.1097/01.hjr.0000368191.86614.5a
  3. Дедов И.И., Шестакова М.В., Майоров А.Ю. Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом. Под ред. Дедова И.И., Шестакова М.В., Майорова Ф.Ю. 9-й выпуск // Сахарный диабет. 2019. Т. 22, № 1S1. С. 1–144. doi: 10.14341/DM221S1
  4. Шестакова М.В., Викулова О.К., Железнякова А.В., и др. Эпидемиология сахарного диабета в Российской Федерации: что изменилось за последнее десятилетие? // Терапевтический архив. 2019. Т. 91, № 10. С. 4–13. doi: 10.26442/00403660.2019.10.000364
  5. Demirbag R., Yilmaz R., Gur M., et al. DNA damage in metabolic syndrome and its association with antioxidative and oxidative measurements // Int J Clin Pract. 2006. Vol. 60, No. 10. P. 1187–1193. doi: 10.1111/j.1742-1241.2006.01042.x
  6. Brownlee M. Biochemistry and molecular cell biology of diabetic complications // Nature. 2001. Vol. 414, No. 6865. P. 813–820. doi: 10.1038/414813a
  7. Балаболкин М.И. Роль гликирования белков, окислительного стресса в патогенезе сосудистых осложнений при сахарном диабете // Сахарный диабет. 2002. № 4. С. 8–16.
  8. Даренская М.А., Колесникова Л.И., Колесников С.И. Окислительный стресс: патогенетическая роль в развитии сахарного диабета и его осложнения, терапевтические подходы к коррекции // БЭБиМ. 2021. Т. 171. № 2. С. 136–149. doi: 10.47056/0365-9615-2021-171-2-136-149
  9. Bigagli E., Lodovici M. Circulating Oxidative Stress Biomarkers in Clinical Studies on Type 2 Diabetes and Its Complications // Oxid Med Cell Longev. 2019. Vol. 2019. P. 5953685. doi: 10.1155/2019/5953685
  10. Дурнев А.Д., Середенин С.Б. Мутагены: скрининг и фармакологическая профилактика воздействий. M.: Медицина, 1998. 328 с.
  11. Дурнев А.Д., Жанатаев А.К., Шредер О.В., Середенина В.С. Генотоксические поражения и болезни // Молекулярная медицина. 2013. № 3. C. 3–19.
  12. Witczak M., Ferenc T., Gulczyńska E., et al Elevated frequencies of micronuclei in pregnant women with type 1 diabetes mellitus and in their newborns // Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2014. Vol. 763. P. 12–17. doi: 10.1016/j.mrgentox.2014.02.002
  13. International Diabetes Federation. IDF Diabetes Atlas, 9th edn. Brussels, Belgium: International Diabetes Federation, 2019. Режим доступа: https://diabetesatlas.org/en/ Дата обращения: 26.05.2021.
  14. Toljic M., Egic A., Munjas J., et al. Increased oxidative stress and cytokinesis-block micronucleus cytome assay parameters in pregnant women with gestational diabetes mellitus and gestational arterial hypertension // Reprod Toxicol. 2017. Vol. 71. P. 55–62. doi: 10.1016/j.reprotox.2017.04.002
  15. Witczak M., Wilczyński J., Gulczyńska E., et al. What is the impact of gestational diabetes mellitus on frequency of structural chromosome aberrations in pregnant women and their offspring? // Mutat Res. 2017. Vol. 818. P. 27–30. doi: 10.1016/j.mrgentox.2017.04.003
  16. Gelaleti R.B., Damasceno D.C., Lima P.H., et al. Oxidative DNA damage in diabetic and mild gestational hyperglycemic pregnant women // Diabetol Metab Syndr. 2015. Vol. 7. P. 1. doi: 10.1186/1758-5996-7-1
  17. Basu J., Datta C., Chowdhury S., et al. Gestational Diabetes Mellitus in a Tertiary Care Hospital of Kolkata, India: Prevalence, Pathogenesis and Potential Disease Biomarkers // Exp Clin Endocrinol Diabetes. 2020. Vol. 128, No. 4. P. 216–223. doi: 10.1055/a-0794-6057
  18. Gelaleti R.B., Damasceno D.C., Santos D.P., et al. Increased DNA Damage is Related to Maternal Blood Glucose Levels in the Offspring of Women With Diabetes and Mild Gestational Hyperglycemia // Reprod Sci. 2016. Vol. 23, No. 3. P. 318–323. doi: 10.1177/1933719115602766
  19. Durga K.D., Adhisivam B., Vidya G., et al. Oxidative stress and DNA damage in newborns born to mothers with hyperglycemia – a prospective cohort study // J Matern Fetal Neonatal Med. 2018. Vol. 31, No. 18. P. 2396–2401. doi: 10.1080/14767058.2017.1344630
  20. Забродина В.В., Шредер Е.Д., Шредер О.В., и др. Нарушения пренатального развития и гликемического статуса у потомства крыс с экспериментальным стрептозотоциновым диабетом и их коррекция афобазолом // БЭБиМ. 2014. Т. 158. № 7. C. 20–24.
  21. Mihaljevic O., Zivancevic-Simonovic S., Milosevic-Djordjevic O., et al. Apoptosis and genome instability in children with autoimmune diseases // Mutagenesis. 2018. Vol. 33, No. 5–6. P. 351–357. doi: 10.1093/mutage/gey037
  22. Witczak M., Ferenc T., Gulczyńska E., et al. Elevated frequencies of micronuclei in pregnant women with type 1 diabetes mellitus and in their newborns // Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2014. Vol. 763. P. 12–17. doi: 10.1016/j.mrgentox.2014.02.002
  23. Cinkilic N., Kiyici S., Celikler S., et al. Evaluation of chromosome aberrations, sister chromatid exchange and micronuclei in patients with type-1 diabetes mellitus // Mutat Res. 2009. Vol. 676, No. 1–2. P. 1–4. doi: 10.1016/j.mrgentox.2009.02.014
  24. Saraswathy R., Anand S., Kunnumpurath S.K., et al. Chromosomal Aberrations and Exon 1 Mutation in the AKR1B1 Gene in Patients with Diabetic Neuropathy // Ochsner J. 2014. Vol. 14, No. 3. P. 339–342.
  25. Salimi M., Broumand B., Mozdarani H. Association of elevated frequency of micronuclei in peripheral blood lymphocytes of type 2 diabetes patients with nephropathy complications // Mutagenesis. 2016. Vol. 31, No. 6. P. 627–633. doi: 10.1093/mutage/gew029
  26. Prasad M., Bronson S.C., Warrier T., et al. Evaluation of DNA damage in Type 2 diabetes mellitus patients with and without peripheral neuropathy: A study in South Indian population // J Nat Sci Biol Med. 2015. Vol. 6, No. 1. P. 80–84. doi: 10.4103/0976-9668.149096
  27. Binici D.N., Karaman A., Coşkun M., et al. Genomic damage in patients with type-2 diabetes mellitus // Genet Couns. 2013. Vol. 24, No. 2. P. 149–156.
  28. Palazzo R.P., Bagatini P.B., Schefer P.B., et al. Genomic instability in patients with type 2 diabetes mellitus on hemodialysis // Rev Bras Hematol Hemoter. 2012. Vol. 34, No. 1. P. 31–35. doi: 10.5581/1516-8484.20120011
  29. Shettigar S.K., Shailaja C., Kulkarni R.K. Elevated micronuclei frequency in type 2 diabetes with high glycosylated hemoglobin // Diabetes Res Clin Pract. 2012. Vol. 95, No. 2. P. 246–250. doi: 10.1016/j.diabres.2011.10.025
  30. Quintero Ojeda J.E., Aguilar-Medina M., Olimón-Andalón V., et al. Increased Micronuclei Frequency in Oral and Lingual Epithelium of Treated Diabetes Mellitus Patients // Biomed Res Int. 2018. Vol. 2018. P. 4898153. doi: 10.1155/2018/4898153
  31. Ильинских Н.Н., Костромеева М.С., Ильинских Е.Н. Мониторинг цитогенетических последствий у больных клещевым энцефалитом, имеющих сахарный диабет 2 типа, в зависимости от полиморфизма генов глутатион-S-трансфераз // Сахарный диабет. 2019. Т. 22, № 3. С. 225–232. doi: 10.14341/DM9715
  32. Grindel A., Brath H., Nersesyan A., Knasmueller S., Wagner K.H. Association of Genomic Instability with HbA1c levels and Medication in Diabetic Patients // Sci Rep. 2017. Vol. 7. P. 41985. doi: 10.1038/srep41985
  33. Vormittag W. Structural chromosomal aberration rates and sister-chromatid exchange frequencies in females with type 2 (non-insulin-dependent) diabetes // Mutat Res. 1985. Vol. 143. No. 3. P. 117–119. doi: 10.1016/s0165-7992(85)80020-8
  34. Shaw J.F., Kansal P.C., Gatti R.A. Letter: Diabetes mellitus, chromosomal aberration, and malignancy // Lancet. 1976. Vol. 2, No. 7980. P. 315. doi: 10.1016/s0140-6736(76)90769-8
  35. Lodovici M., Giovannelli L., Pitozzi V., et al. Oxidative DNA damage and plasma antioxidant capacity in type 2 diabetic patients with good and poor glycaemic control // Mutat Res. 2008. Vol. 638, No. 1–2. P. 98–102. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2007.09.002
  36. Dinçer Y., Akçay T., Alademir Z., Ilkova H. Assessment of DNA base oxidation and glutathione level in patients with type 2 diabetes // Mutat Res. 2002. Vol. 505, No. 1–2. P. 75–81. Corrected and republished from: Mutat Res. 2003. Vol. 525, No. 1–2. P. 129–30. doi: 10.1016/s0027-5107(02)00143-4
  37. Tatsch E., Bochi G.V., Piva S.J., et al. Association between DNA strand breakage and oxidative, inflammatory and endothelial biomarkers in type 2 diabetes // Mutat Res. 2012. Vol. 732, No. 1–2. P. 16–20. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2012.01.004
  38. Arif M., Islam M.R., Waise T.M., et al. DNA damage and plasma antioxidant indices in Bangladeshi type 2 diabetic patients // Diabetes Metab. 2010. Vol. 36, No. 1. P. 51–57. doi: 10.1016/j.diabet.2009.05.007
  39. Dinçer Y., Akçay T., Ilkova H., et al. DNA damage and antioxidant defense in peripheral leukocytes of patients with Type I diabetes mellitus // Mutat Res. 2003. Vol. 527, No. 1–2. P. 49–55. doi: 10.1016/s0027-5107(03)00073-3
  40. Franke S.I., Müller L.L., Santos M..C, et al. Vitamin C intake reduces the cytotoxicity associated with hyperglycemia in prediabetes and type 2 diabetes // Biomed Res Int. 2013. Vol. 2013. P. 896536. doi: 10.1155/2013/896536
  41. Corbi S.C., Bastos A.S., Orrico S.R., et al. Elevated micronucleus frequency in patients with type 2 diabetes, dyslipidemia and periodontitis // Mutagenesis. 2014. Vol. 29, No. 6. P. 433–439. doi: 10.1093/mutage/geu043
  42. Astley S., Langrish-Smith A., Southon S., Sampson M. Vitamin E supplementation and oxidative damage to DNA and plasma LDL in type 1 diabetes // Diabetes Care. 1999. Vol. 22, No. 10. P. 1626–1631. doi: 10.2337/diacare.22.10.1626
  43. Hannon-Fletcher M.P., O’Kane M.J., Moles K.W., et al. Levels of peripheral blood cell DNA damage in insulin dependent diabetes mellitus human subjects // Mutat Res. 2000. Vol. 460, No. 1. P. 53–60. doi: 10.1016/s0921-8777(00)00013-6
  44. Watson W.A., Petrie J.C., Galloway D.B., et al. In vivo cytogenetic activity of sulphonylurea drugs in man // Mutat Res. 1976. Vol. 38, No. 1. P. 71–80. doi: 10.1016/0165-1161(76)90080-7
  45. Shaik N.A., Shaik J..P, Ali S., et al. Increased frequency of micronuclei in diabetes mellitus patients using pioglitazone and glimepiride in combination // Food Chem Toxicol. 2010. Vol. 48, No. 12. P. 3432–3435. doi: 10.1016/j.fct.2010.09.016
  46. Harishankar M.K., Logeshwaran S., Sujeevan S., et al. Genotoxicity evaluation of metformin and glimepiride by micronucleus assay in exfoliated urothelial cells of type 2 diabetes mellitus patients // Food Chem Toxicol. 2015. Vol. 83. P. 146–150. doi: 10.1016/j.fct.2015.06.013
  47. Oz Gul O., Cinkilic N., Gul C.B., et al. Comparative genotoxic and cytotoxic effects of the oral antidiabetic drugs sitagliptin, rosiglitazone, and pioglitazone in patients with type-2 diabetes: a cross-sectional, observational pilot study // Mutat Res. 2013. Vol. 757, No. 1. P. 31–35. doi: 10.1016/j.mrgentox.2013.04.024
  48. Müllner E., Brath H., Pleifer S., et al. Vegetables and PUFA-rich plant oil reduce DNA strand breaks in individuals with type 2 diabetes // Mol Nutr Food Res. 2013. Vol. 57, No. 2. P. 328–338. doi: 10.1002/mnfr.201200343
  49. Müllner E., Brath H., Nersesyan A., et al. Nuclear anomalies in exfoliated buccal cells in healthy and diabetic individuals and the impact of a dietary intervention // Mutagenesis. 2014. Vol. 29, No. 1. P. 1–6. doi: 10.1093/mutage/get056
  50. Choi S.W., Yeung V.T., Collins A.R., Benzie I.F. Redox-linked effects of green tea on DNA damage and repair, and influence of microsatellite polymorphism in HMOX-1: results of a human intervention trial // Mutagenesis. 2015. Vol. 30, No. 1. P. 129–137. doi: 10.1093/mutage/geu022
  51. Sardaş S, Yilmaz M, Oztok U, et al. Assessment of DNA strand breakage by comet assay in diabetic patients and the role of antioxidant supplementation // Mutat Res. 2001. Vol. 490, No. 2. P. 123–129. doi: 10.1016/s1383-5718(00)00157-1
  52. Zúñiga-González G.M., Batista-González C.M., Gómez-Meda B.C., et al. Micronuclei in diabetes: folate supplementation diminishes micronuclei in diabetic patients but not in an animal model // Mutat Res. 2007. Vol. 634, No. 1–2. P. 126–134. doi: 10.1016/j.mrgentox.2007.06.006
  53. Lazalde-Ramos B.P., Zamora-Perez A.L., Sosa-Macías M., et al. DNA and oxidative damages decrease after ingestion of folic acid in patients with type 2 diabetes // Arch Med Res. 2012. Vol. 43, No. 6. P. 476–481. doi: 10.1016/j.arcmed.2012.08.013
  54. Gómez-Meda B.C., Zamora-Perez A.L., Muñoz-Magallanes T., et al. Nuclear abnormalities in buccal mucosa cells of patients with type I and II diabetes treated with folic acid // Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2016. Vol. 797. P. 1–8. doi: 10.1016/j.mrgentox.2015.12.003
  55. Manfredini V., Biancini G.B., Vanzin C.S., et al. Simvastatin treatment prevents oxidative damage to DNA in whole blood leukocytes of dyslipidemic type 2 diabetic patients // Cell Biochem Funct. 2010. Vol. 28, No. 5. P. 360–366. doi: 10.1002/cbf.1654
  56. Xavier D.J., Takahashi P., Manoel-Caetano F.S., et al. One-week intervention period led to improvements in glycemic control and reduction in DNA damage levels in patients with type 2 diabetes mellitus // Diabetes Res Clin Pract. 2014. Vol. 105, No. 3. P. 356–363. doi: 10.1016/j.diabres.2014.06.004
  57. da Silva B.S., Rovaris D.L., Bonotto R.M., et al. The influence on DNA damage of glycaemic parameters, oral antidiabetic drugs and polymorphisms of genes involved in the DNA repair system // Mutagenesis. 2013. Vol. 28, No. 5. P. 525–530. doi: 10.1093/mutage/get029
  58. Pittaluga M., Sgadari A., Dimauro I., et al. Physical exercise and redox balance in type 2 diabetics: effects of moderate training on biomarkers of oxidative stress and DNA damage evaluated through comet assay // Oxid Med Cell Longev. 2015. Vol. 2015. P. 981242. doi: 10.1155/2015/981242
  59. Bankoglu E.E., Arnold C., Hering I., et al. Decreased Chromosomal Damage in Lymphocytes of Obese Patients After Bariatric Surgery // Sci Rep. 2018. Vol. 8, No. 1. P. 11195. doi: 10.1038/s41598-018-29581-6
  60. Ibarra-Costilla E., Cerda-Flores R.M., Dávila-Rodríguez M.I., et al. DNA damage evaluated by comet assay in Mexican patients with type 2 diabetes mellitus // Acta Diabetol. 2010. Vol. 47, Suppl 1. P. 111–116. doi: 10.1007/s00592-009-0149-9
  61. Anderson D., Yu T.W., Wright J., Ioannides C. An examination of DNA strand breakage in the comet assay and antioxidant capacity in diabetic patients // Mutation Research. 199. Vol. 398, No. 1–2. P. 151–161. doi: 10.1016/s0027-5107(97)00271-6
  62. OECD Test No. 489: In Vivo Mammalian Alkaline Comet Assay. Режим доступа: https://www.oecd.org/env/test-no-489-in-vivo-mammalian-alkaline-comet-assay-9789264264885-en.htm. Дата обращения: 27.05.2021.
  63. Sirota N.P., Zhanataev A.K., Kuznetsova E.A., et al. Some causes of inter-labolatory variation in the results of comet assay // Mutation Research. 2014. Vol. 770. P. 16–22. doi: 10.1016/j.mrgentox.2014.05.003
  64. Gajski G., Gerić M., Živković Semren T., et al. Application of the comet assay for the evaluation of DNA damage from frozen human whole blood samples: Implications for human biomonitoring // Toxicol Lett. 2020. Vol. 319. P. 58–65. doi: 10.1016/j.toxlet.2019.11.010
  65. Habib S.L., Rojna M. Diabetes and risk of cancer // ISRN Oncol. 2013. Vol. 2013. P. 583786. doi: 10.1155/2013/583786
  66. Giovannucci E., Harlan D.M., Archer M.C., et al. Diabetes and cancer: a consensus report // Diabetes Care. 2010. Vol. 33, No. 7. P. 1674–1685. doi: 10.2337/dc10-0666
  67. Simone S., Gorin Y., Velagapudi C., et al. Mechanism of oxidative DNA damage in diabetes: tuberin inactivation and downregulation of DNA repair enzyme 8-oxo-7,8-dihydro-2’-deoxyguanosine-DNA glycosylase // Diabetes. 2008. Vol. 57, No. 10. P. 2626–2636. doi: 10.2337/db07-1579
  68. Lee S.C., Chan J.C. Evidence for DNA damage as a biological link between diabetes and cancer // Chin Med J (Engl). 2015. Vol. 128, No. 11. P. 1543–1548. doi: 10.4103/0366-6999.157693
  69. Еремина Н.В., Жанатаев А.К., Дурнев А.Д. Индуцируемая клеточная гибель как возможный путь антимутагенного воздействия // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2021. Т. 171. № 1. С. 4–22. doi: 10.47056/0365-9615-2021-171-1-4-22
  70. van Staa T.P., Patel D., Gallagher A.M., de Bruin M.L. Glucose-lowering agents and the patterns of risk for cancer: a study with the General Practice Research Database and secondary care data // Diabetologia. 2012. Vol. 55, No. 3. P. 654–665. doi: 10.1007/s00125-011-2390-3
  71. Attia S.M., Helal G.K., Alhaider A.A. Assessment of genomic instability in normal and diabetic rats treated with metformin // Chem Biol Interact. 2009. Vol. 180, No. 2. P. 296–304. doi: 10.1016/j.cbi.2009.03.001
  72. Rabbani S.I., Devi K., Khanam S. Role of Pioglitazone with Metformin or Glimepiride on Oxidative Stress-induced Nuclear Damage and Reproductive Toxicity in Diabetic Rats // Malays J Med Sci. 2010. Vol. 17, No. 1. P. 3–11.
  73. Aleisa A.M., Al-Rejaie S.S., Bakheet S..A, et al. Effect of metformin on clastogenic and biochemical changes induced by adriamycin in Swiss albino mice // Mutat Res. 2007. Vol. 634, No. 1–2. P. 93–100. doi: 10.1016/j.mrgentox.2007.06.005
  74. Najafi M., Cheki M., Rezapoor S., et al. Metformin: Prevention of genomic instability and cancer: A review // Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2018. Vol. 827. P. 1–8. doi: 10.1016/j.mrgentox.2018.01.007
  75. Дурнев А.Д. Антимутагенез и антимутагены // Физиология человека. 2018. Т. 44. № 3. С. 116–137. doi: 10.7868/S013116461803013X
  76. Сиднева Е.С., Катосова Л.Д., Платонова В.И., и др. Оценка спонтанного и химически индуцированного мутагенеза в клетках человека в зависимости от витаминной обеспеченности // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2005. Т. 139. № 5. С. 199–203.
  77. Дурнев А.Д., Жанатаев А.К., Шредер О.В., Середенин С.Б. Антимутагенные и антитератогенные свойства Афобазола // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2009. Т. 72, № 1. С. 46–51.
  78. Zabrodina V.V., Shreder O.V., Shreder E.D., Durnev A.D. Effect of Afobazole and Betaine on Cognitive Disorders in the Offspring of Rats with Streptozotocin-Induced Diabetes and Their Relationship with DNA Damage // Bull Exp Biol Med. 2016. Vol. 161, No. 3. P. 359–366. doi: 10.1007/s10517-016-3414-2
  79. Zabrodina V.V., Shreder E.D., Shreder O.V., et al. Effect of Afobazole and Betaine on DNA Damage in Placental and Embryonic Tissues of Rats with Experimental Streptozocin Diabetes // Bull Exp Biol Med. 2015. Vol. 159, No. 6. P. 757–760. doi: 10.1007/s10517-015-3068-5
  80. Ostrovskaya R.U., Yagubova S.S., Zhanataev A.K., et al. Neuroprotective Dipeptide Noopept Prevents DNA Damage in Mice with Modeled Prediabetes // Bull Exp Biol Med. 2019. Vol. 168, No. 2. P. 233–237. doi: 10.1007/s10517-019-04681-z.
  81. Supriya Simon A., Dinesh Roy D., Jayapal V., Vijayakumar T. Somatic DNA damages in cardiovascular autonomic neuropathy // Indian J Clin Biochem. 2011. Vol. 26, No. 1. P. 50–56. doi: 10.1007/s12291-010-0087-x
  82. Martínez-Pérez L.M., Cerda-Flores R.M., Gallegos-Cabriales E.C., et al. Frequency of micronuclei in Mexicans with type 2 diabetes mellitus // Prague Med Rep. 2007. Vol. 108, No. 3. P. 248–255
  83. Gelaleti R.B., Damasceno D.C., Salvadori D.M., et al. IRS-1 gene polymorphism and DNA damage in pregnant women with diabetes or mild gestational hyperglycemia // Diabetol Metab Syndr. 2015.Vol. 7. P. 30. doi: 10.1186/s13098-015-0026-3
  84. Wyatt N., Kelly C., Fontana V., et al. The responses of lymphocytes from Asian and Caucasian diabetic patients and non-diabetics to hydrogen peroxide and sodium nitrite in the Comet assay // Mutat Res. 2006. Vol. 609, No. 2. P. 154–164. doi: 10.1016/j.mrgentox.2006.06.029
  85. Varvarovská J., Racek J., Stetina R., et al. Aspects of oxidative stress in children with type 1 diabetes mellitus // Biomed Pharmacother. 2004. Vol. 58, No. 10. P. 539–545. doi: 10.1016/j.biopha.2004.09.011
  86. Collins A.R., Raslová K., Somorovská M., et al. DNA damage in diabetes: correlation with a clinical marker // Free Radic Biol Med. 1998. Vol. 25, No. 3. P. 373–377. doi: 10.1016/s0891-5849(98)00053-7
  87. Rao A., Thomas B., Prasad R.B., et al. A comparative evaluation of the DNA damage in the serum of chronic periodontitis patients with and without diabetes mellitus type II // Indian J Dent Res. 2020. Vol. 31, No. 2. P. 169–174. doi: 10.4103/ijdr.IJDR_503_17
  88. Raghav A., Ahmad J., Alam K. Preferential recognition of advanced glycation end products by serum antibodies and low-grade systemic inflammation in diabetes mellitus and its complications // Int J Biol Macromol. 2018. Vol. 118, Pt B. P. 1884–1891. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.07.033
  89. Bukhari S..A, Javed S., Ali M., et al. Serum haematological and biochemical indices of oxidative stress and their relationship with DNA damage and homocysteine in Pakistani type II diabetic patients // Pak J Pharm Sci. 2015. Vol. 28, No. 3. P. 881–889.
  90. Merecz A., Markiewicz L., Sliwinska A., et al. Analysis of oxidative DNA damage and its repair in Polish patients with diabetes mellitus type 2: Role in pathogenesis of diabetic neuropathy // Adv Med Sci. 2015. Vol. 60, No. 2. P. 220–230. doi: 10.1016/j.advms.2015.04.001
  91. Xavier D.J., Takahashi P., Evangelista A.F., et al. Assessment of DNA damage and mRNA/miRNA transcriptional expression profiles in hyperglycemic versus non-hyperglycemic patients with type 2 diabetes mellitus // Mutat Res. 2015. Vol. 776. P. 98–110. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2015.01.016
  92. Salem S.I., El-Toukhy S.E., El-Saeed G.S.M., El-Wassef M. Correlation of DNA damage in type 2 diabetes to glycemic control // The Egyptian Journal of Hospital Medicine. 2012. Vol. 48, P. 472–482. doi: 10.21608/EJHM.2012.16249
  93. Kasznicki J., Kosmalski M., Sliwinska A., et al. Evaluation of oxidative stress markers in pathogenesis of diabetic neuropathy // Mol Biol Rep. 2012. Vol. 39, No. 9. P. 8669–8678. doi: 10.1007/s11033-012-1722-9
  94. Manfredini V., Biancini G.B., Vanzin C.S., et al. Simvastatin treatment prevents oxidative damage to DNA in whole blood leukocytes of dyslipidemic type 2 diabetic patients // Cell Biochem Funct. 2010. Vol. 28, No. 5. P. 360–366. doi: 10.1002/cbf.1654
  95. Васильев Д.А., Порошина Т.Е., Коваленко И.Г., и др. Двойственная (джокерная) функция глюкозы: изучение связи с возрастом и нарушениями углеводного обмена // Успехи геронтологии. 2008. Т. 21, № 2. С. 204–211.
  96. Bagatini P.B., Palazzo R.P., Rodrigues M.T., et al. Induction and removal of DNA damage in blood leukocytes of patients with type 2 diabetes mellitus undergoing hemodialysis // Mutat Res. 2008. Vol. 657, No. 2. P. 111–115. doi: 10.1016/j.mrgentox.2008.08.004
  97. Sliwinska A., Blasiak J., Kasznicki J., Drzewoski J. In vitro effect of gliclazide on DNA damage and repair in patients with type 2 diabetes mellitus (T2DM) // Chem Biol Interact. 2008. Vol. 173, No. 3. P. 159–165. doi: 10.1016/j.cbi.2008.03.017
  98. Song F., Jia W., Yao Y., et al. Oxidative stress, antioxidant status and DNA damage in patients with impaired glucose regulation and newly diagnosed Type 2 diabetes // Clin Sci (Lond). 2007. Vol. 112, No. 12. P. 599–606. doi: 10.1042/CS20060323
  99. Blasiak J., Arabski M., Krupa R., et al. DNA damage and repair in type 2 diabetes mellitus // Mutat Res. 2004. Vol. 554, No. 1–2. P. 297–304. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2004.05.011
  100. Pitozzi V., Giovannelli L., Bardini G., et al. Oxidative DNA damage in peripheral blood cells in type 2 diabetes mellitus: higher vulnerability of polymorphonuclear leukocytes // Mutat Res. 2003. Vol. 529, No. 1–2. P. 129–133. doi: 10.1016/s0027-5107(03)00114-3

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис.1. Медицинская значимость окислительного повреждения нуклеиновых кислот, липидов и белков при гипергликемии ([9], значительно модифицировано)

Скачать (327KB)
Метаданные

© ООО "Эко-Вектор", 2021


 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах