РАЗРАБОТКА СИСТЕМЫ ГЕНЕТИЧЕСКОЙ ТРАНСФОРМАЦИИ РЯСКИ МАЛОЙ LEMNA MINOR


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Оптимизированы параметры регенерации in vitro, подобраны условия эффективного селективного отбора трансформированной ткани, получены трансгенные растения Lemna minor и проведен их молекулярный анализ, подтвердивший интеграцию целевого гена в геном ряски и его экспрессию. Оптимизированная нами методика трансформации может быть использована для создания трансгенных растений ряски - продуцентов рекомбинантных белков медицинского назначения и биоремедиаторов водоемов.

Об авторах

Софья Евгеньевна Гайдукова

Центр «Биоинженерия» РАН РФ, Москва, РФ

Email: plasmid@yandex.ru

Андрей Львович Ракитин

Центр «Биоинженерия» РАН РФ, Москва, РФ

Email: rakitin@biengi.ac.ru

Николай Викторович Равин

Центр «Биоинженерия» РАН РФ, Москва, РФ

Email: nravin@biengi.ac.ru

Константин Георгиевич Скрябин

Центр «Биоинженерия» РАН РФ, Москва, РФ

Email: akatio@biengi.ac.ru

Анастасия Михайловна Камионская

Центр «Биоинженерия» РАН РФ, Москва, РФ

Email: akatio@biengi.ac.ru

Список литературы

  1. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж., 1984. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. -М.: Мир, 480 с.
  2. Мартиросян Е.В., Рыжова Н.Н., Скрябин К.Г., Кочиева Е.З., 2008. RAPD-анализ геномного полиморфизма у представителей семейства Lemnaceae (Рясковые)//Генетика. Т. 44. № 3. С. 1-5.
  3. Падегимас Л., Шульга О., Скрябин К.Г., 1993. Создание трансгенных растений Nicotiana tabacum и Solanum tuberosum, устойчивых к гербициду фосфинотрицину//Молекулярная биология. Т. 27. С. 947-951.
  4. Рыжова Н.Н., Мартиросян Е.В., Колганова Т.В. и др., 2006. Характеристика последовательностей спейсера trnL-trnF генов тРНК хлоропластной ДНК представителей рода Spirodela семейства Рясковых//Молекулярная биология. Т. 40. С. 989-995.
  5. Cascone A., Forni C., Migliore L, 2004. Flumequine uptake and the aquatic duckweed, Lemna minor L.//Water, Air, and Soil Pollution. Vol. 156. P. 241-249.
  6. Chang W.C., Chiu P.L, 1978. Regeneration of Lemna gibba G3 through callus culture//Z. Pflanzephysiol. Vol. 89. P. 91-94.
  7. Christensen A., Quail P., 1996. Ubiquitin promoterbased vectors for high-level expression of selectable and/or screenable marker genes in monocotyledonous plants//Transgenic Research. Vol. 5. P. 213-218.
  8. Frick H., Morley K., 1995. Metabolism of lactose by Lemna minor L. (duckweed) callus//Process Bio-chem. Vol. 30. P. 57-62.
  9. Gamborg O.L., 1970. The effects of amino acids and ammonium on the growth of plant cells in suspension culture//Plant Physiol. Vol. 45. P. 372-375.
  10. Helens R., Mullineaux P., Klee H., 2000. A guide to Agrobacterium binary Ti vectors//Trends in Plant Science. Vol. 5a: P. 446-451.
  11. Hoagland D.R., Arnon D.I., 1938. The water-culture method for growing plants without soil//Univ. Calif. Coll. Agric. Exp. Sta. Circ. Berkeley, CA. P. 347-353.
  12. Hubalek T., Vosahlova S., Mateju V. et al., 2007. Ecotoxicity Monitoring of Hydrocarbon-Contaminated Soil During Bioremediation: A Case Study//Arch. Environ. Contam. Toxicol. Vol. 52. P. 1-7.
  13. Li J., Vunsh R., Vishnevetsky J. et al., 2004. Callus induction and regeneration in Spirodela and Lemna//Plant Cell Rep. Vol. 22. P. 457-464.
  14. Mackenzie S.M., Waite S., Metcalfe D.J., Joyce C.B., 2003. Landfill leachate ecotoxicity experiments using Lemna minor//Water, Air and Soil Pollution. Focus 3. P. 171 -179.
  15. Mardanov A.V., Ravin N.V., Kuznetsov B.B. et al., 2008. Complete Sequence of the Duckweed (Lemna minor) Chloroplast Genome: Structural Organization and Phylogenetic Relationships to Other Angiosperms//Journal of Molecular Evolution. Vol. 66. P. 555-564.
  16. Mkandawire M., Taubert B., Dudel G., 2005. Resource manipulation in uranium and arsenic attenuation by Lemna gibba L. (duckweed) in tailing water or a former uranium mine//Water, Air, and Soil Pollution. Vol. 166. P. 83-101.
  17. Moon H.K., Stomp A.M., 1997. Effects of medium and light on callus induction, growth, and frond regeneration in Lemna gibba (duckweed)//In Vitro Cell. Dev. Biol. -Plant. Vol. 33. P. 20-25.
  18. Murashige T., Skoog F., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures//Physiol Plant. Vol. 15. P. 473-476.
  19. Murray M.G., Thompson W.F., 1980. Rapid isolation of high molecular weight DNA//Nucleic Acids Res. Vol. 8(19). P. 4321-4325.
  20. Schenk R.U., Hildebrandt A.C., 1972. Medium and techniques for induction and growth of monocotyledonous and dicotyledonous plant cell cultures//Can. J. Bot. Vol. 50. P. 199-204.
  21. Stefaniak B., Wozny A. and Budna I., 2002. Callus induction and plant regeneration in Lemna minor L.//Biologia plantarum. Vol. 45(3). P. 469-472.
  22. Stesevic D., Feiler U., Sundic D. et al., 2007. Application of a new sediment contact test with Myriophyllum aquaticum and of the aquatic Lemna test to assess the sediment quality of Lake Skadar//J. Soils Sediments. Vol. 7(5). P. 342-349.

© Гайдукова С.Е., Ракитин А.Л., Равин Н.В., Скрябин К.Г., Камионская А.М., 2008

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах