Сравнение эффективности якорных белков ScAGα1p, KpCW51p, KpCW61p для поверхностного дисплея у дрожжей Komagataella phaffii
- Авторы: Цыганков М.А.1, Румянцев А.М.1, Макеева А.С.1, Падкина М.В.1
-
Учреждения:
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Выпуск: Том 20, № 4 (2022)
- Страницы: 359-371
- Раздел: Методология экологической генетики
- URL: https://journals.rcsi.science/ecolgenet/article/view/132244
- DOI: https://doi.org/10.17816/ecogen112509
- ID: 132244
Цитировать
Аннотация
Актуальность. Дрожжевой дисплей — эффективная технология выведения на поверхность клетки целевых белков посредством их слияния с белками клеточной стенки. Данная методика, в том числе, позволяет получать на основе дрожжей вакцинные препараты путем экспонирования на их клеточной поверхности белков-антигенов. Поиск и характеристика белков, позволяющих эффективно экспонировать целевые белки на поверхности клеток Komagataella phaffii, — актуальная задача.
Цель работы — сравнить эффективность белков клеточной стенки ScAGα1p, включая исследование нескольких вариантов кодирующей последовательности гена ScAGα1, а также KpCW51p, KpCW61p для экспонирования репортерного белка на поверхности клеток.
Материалы и методы. Изучаемые последовательности генов были проклонированы под контролем промотора гена АОХ1 в одной рамке считывания с геном репортерного белка eGFP и интегрированы в геном штамма Х-33 дрожжей K. phaffii.
Результаты. Иммуноцитохимический анализ и конфокальная микроскопия штаммов, экспонирующих на своей поверхности белок eGFP в условиях индукции промотора гена АОХ1, позволили выявить наиболее эффективный якорный белок. Наилучшие результаты были продемонстрированы при использовании белка ScAGα1 — альфа-агглютинина дрожжей Saccharomyces cerevisiae, структурный ген которого не содержал нативной 3'-некодирующей области.
Выводы. Полученные в работе плазмиды позволят получить штаммы дрожжей K. phaffii, эффективно экспонирующие на своей поверхности белки, в том числе антигены, которые можно будет использовать в качестве вакцинного препарата.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Михаил Александрович Цыганков
Санкт-Петербургский государственный университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: mial.tsygankov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2513-6655
SPIN-код: 1098-0995
Scopus Author ID: 56252740000
инженер-исследователь, биологический факультет, кафедра генетики и биотехнологии, лаборатория биохимической генетики
Россия, Санкт-ПетербургАндрей Михайлович Румянцев
Санкт-Петербургский государственный университет
Email: rumyantsev-am@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1744-3890
SPIN-код: 9335-1184
Scopus Author ID: 55370658800
канд. биол. наук, ст. научн. сотр., биологический факультет, кафедра генетики и биотехнологии, лаборатория биохимической генетики
Россия, Санкт-ПетербургАнастасия Станиславовна Макеева
Санкт-Петербургский государственный университет
Email: anastasimakeeva@mail.ru
SPIN-код: 1412-8449
инженер-исследователь, аспирантка, биологический факультет, кафедра генетики и биотехнологии, лаборатория биохимической генетики
Россия, Санкт-ПетербургМарина Владимировна Падкина
Санкт-Петербургский государственный университет
Email: mpadkina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4051-4837
SPIN-код: 7709-0449
Scopus Author ID: 6602596755
д-р биол. наук, профессор, биологический факультет, кафедра генетики и биотехнологии, лаборатория биохимической генетики
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Smith G.P. Filamentous fusion phage: novel expression vectors that display cloned antigens on the virion surface // Science. 1985. Vol. 228, No. 4705. P. 1315–1317. doi: 10.1126/science.4001944
- Ueda M. Establishment of cell surface engineering and its development // Biosci Biotechnol Biochem. 2016. Vol. 80, No. 7. P. 1243–1253. doi: 10.1080/09168451.2016.1153953
- Schreuder M.P., Brekelmans S., van den Ende H., Klis F.M. Targeting of a heterologous protein to the cell wall of Saccharomyces cerevisiae // Yeast. 1993. Vol. 9, No. 4. P. 399–409. doi: 10.1002/yea.320090410
- Boder E.T., Wittrup K.D. Yeast surface display for screening combinatorial polypeptide libraries // Nat Biotechnol. 1997. Vol. 15, No. 6. P. 553–557. doi: 10.1038/nbt0697-553
- Kurtzman C.P. Biotechnological strains of Komagataella (Pichia) pastoris are Komagataella phaffii as determined from multigene sequence analysis // J Ind Microbiol Biotechnol. 2009. Vol. 36, No. 11. P. 1435–1438. doi: 10.1007/s10295-009-0638-4
- Kim S.-Y., Sohn J.-H., Pyun Y.-R., Choi E.-S. A cell surface display system using novel GPI-anchored proteins in Hansenula polymorpha // Yeast. 2002. Vol. 19, No. 13. P. 1153–1163. doi: 10.1002/yea.911
- Tanaka T., Yamada R., Ogino C., Kondo A. Recent developments in yeast cell surface display toward extended applications in biotechnology // Appl Microbiol Biotechnol. 2012. Vol. 95, No. 3. P. 577–591. doi: 10.1007/s00253-012-4175-0
- Bielen A., Tepariс R., Vujaklija D., Mrsa V. Microbial anchoring systems for cell-surface display of lipolytic enzymes // Food Technol Biotechnol. 2014. Vol. 52, No. 1. P. 16–34.
- Wasilenko J.L., Sarmento L., Spatz S., Pantin-Jackwood M. Cell surface display of highly pathogenic avian influenza virus hemagglutinin on the surface of Pichia pastoris cells using alpha-agglutinin for production of oral vaccines // Biotechnol Prog. 2010. Vol. 26, No. 2. P. 542–547. doi: 10.1002/btpr.343
- Lei H., Jin S., Karlsson E., et al. Yeast surface-displayed H5N1 avian influenza vaccines // J Immunol Res. 2016. Vol. 2016. ID4131324. doi: 10.1155/2016/4131324
- Angelini A., Chen T.F., de Picciotto S., et al. Protein Engineering and selection using yeast surface display // Methods Mol Biol. 2015. Vol. 1319. P. 3–36. doi: 10.1007/978-1-4939-2748-7_1
- Cherf G.M., Cochran J.R. Applications of yeast surface display for protein engineering // Methods Mol Biol. 2015. Vol. 1319. P. 155–175. doi: 10.1007/978-1-4939-2748-7_8
- Pack S.P., Park K., Yoo Y.J. Enhancement of β-glucosidase stability and cellobiose-usage using surface-engineered recombinant Saccharomyces cerevisiae in ethanol production // Biotechnology Letters. 2002. Vol. 24. P. 1919–1925. doi: 10.1023/A:1020908426815
- Andreu C., Del Olmo M.L. Yeast arming systems: pros and cons of different protein anchors and other elements required for display // Appl Microbiol Biotechnol. 2018. Vol. 102, No. 6. P. 2543–2561. doi: 10.1007/s00253-018-8827-6
- Mattanovich D., Callewaert N., Rouzé P., et al. Open access to sequence: browsing the Pichia pastoris genome // Microb Cell Fact. 2009. Vol. 8. ID53. doi: 10.1186/1475-2859-8-53
- Cereghino J.L., Cregg J.M. Heterologous protein expression in the methylotrophic yeast Pichia pastoris // FEMS Microbiol Rev. 2000. Vol. 24, No. 1. P. 45–66. doi: 10.1111/j.1574-6976.2000.tb00532.x
- Падкина М.В., Самбук Е.В. Перспективы использования дрожжевого дисплея в биотехнологии и клеточной биологии (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2018. Т. 54, № 4. С. 337–351. doi: 10.7868/S0555109918040013
- Ahmad M., Hirz M., Pichler H., Schwab H. Protein expression in Pichia pastoris: recent achievements and perspectives for heterologous protein production // Appl Microbiol Biotechnol. 2014. Vol. 98, No. 12. P. 5301–5317. doi: 10.1007/s00253-014-5732-5
- Prabhu A.A., Boro B., Bharali B., et al. Gene and process level modulation to overcome the bottlenecks of recombinant proteins expression in Pichia pastoris // Curr Pharm Biotechnol. 2017. Vol. 18, No. 15. P. 1200–1223. doi: 10.2174/1389201019666180329112827
- Cereghino G.P.L., Cereghino J.L., Ilgen C., Cregg J.M. Production of recombinant proteins in fermenter cultures of the yeast Pichia pastoris // Curr Opin Biotechnol. 2002. Vol. 13, No. 4. P. 329–332. doi: 10.1016/S0958-1669(02)00330-0
- Gaboardi G.C., Alves D., de los Santos D.G., et al. Influence of Pichia pastoris X-33 produced in industrial residues on productive performance, egg quality, immunity, and intestinal morphometry in quails // Sci Rep. 2019. Vol. 9, No. 1. ID 15372. doi: 10.1038/s41598-019-51908-0
- Mergler M., Wolf K., Zimmermann M. Development of a bisphenol A-adsorbing yeast by surface display of the Kluyveromyces yellow enzyme on Pichia pastoris // Appl Microbiol Biotechnol. 2004. Vol. 63, No. 4. P. 418–421. doi: 10.1007/s00253-003-1361-0
- Wang Q., Li L., Chen M., et al. Construction of a novel system for cell surface display of heterologous proteins on Pichia pastoris // Biotechnol Lett. 2007. Vol. 29, No. 10. P. 1561–1566. doi: 10.1007/s10529-007-9430-6
- Zhang L., Liang S., Zhou X., et al. Screening for glycosylphosphatidylinositol-modified cell wall proteins in Pichia pastoris and their recombinant expression on the cell surface // Appl Environ Microbiol. 2013. Vol. 79, No. 18. P. 5519–5526. doi: 10.1128/AEM.00824-13
- Yang J., Huang K., Xu X., et al. Cell Surface Display of Thermomyces lanuginosus Lipase in Pichia pastoris // Front Bioeng Biotechnol. 2020. Vol. 8. ID544058. doi: 10.3389/fbioe.2020.544058
- Matsuda T., Cepko C.L. Electroporation and RNA interference in the rodent retina in vivo and in vitro // PNAS USA. 2004. Vol. 101, No. 1. P. 16–22. doi: 10.1073/pnas.2235688100
- Wu S., Letchworth G.J. High efficiency transformation by electroporation of Pichia pastoris pretreated with lithium acetate and dithiothreitol // Biotechniques. 2004. Vol. 36, No. 1. P. 152–154. doi: 10.2144/04361DD02
- Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Москва: Мир, 1984.
- graphpad.com [Электронный ресурс]. GraphPad Prism software [дата обращения: 2022 Oct 10]. Доступ по ссылке: https://www.graphpad.com/
- Lipke P.N., Kurjan J. Sexual agglutination in budding yeasts: structure, function, and regulation of adhesion glycoproteins // Microbiol Rev. 1992. Vol. 56, No. 1. P. 180–194. doi: 10.1128/mr.56.1.180-194.1992
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)