Линии medicago lupulina с отклонениями в развитии эффективной арбускулярной микоризы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Работа направлена на решение актуальной проблемы биологии развития арбускулярной микоризы (АМ). В настоящее время получено множество мутантов на различных растительных модельных объектах по генам, контролирующим стадии развития АМ, тем не менее до сих пор неясны механизмы, контролирующие развитие эффективного АМ-симбиоза. Авторами проведен мутагенез люцерны хмелевидной (Medicago lupulina L.) — нового удобного объекта для молекулярно-генетических исследований. Используемая облигатно микотрофная линия M. lupulina обладает ранним и высоким откликом на микоризацию, высокой продуктивностью семян, а также признаками карликовости при росте без АМ на субстратах с низким содержанием доступного для питания растений фосфора, что позволяет визуально выявлять линии с отклонениями в развитии АМ-симбиоза. Проверено 14 режимов мутагенеза этилметансульфонатом. Три способа мутагенеза позволили получить продуктивное потомство М1 с долей жизнеспособных проростков 73,3–86,0 %, а также 1405 растений потомства М2. По результатам анализа популяции мутагенизированных растений М2 (вплоть до поколения М9) отобраны 15 линий: 1 Myc–-растение, не образующее АМ; 4 Pen–-растения, не образующих АМ, но образующих апрессории; 3 Rmd–-растения, образующих низкоактивную неэффективную АМ; 3 Rmd–-растения, образующих низкоактивную, но эффективную АМ, и 4 Rmd++-растения, образующих эффективную АМ с высокими показателями обилия симбиотических структур (мицелия/арбускул/везикул) в корне.

Об авторах

Андрей Павлович Юрков

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»; Санкт-Петербургский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: yurkovandrey@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2231-6466
SPIN-код: 9909-4280
Scopus Author ID: 56835374200
ResearcherId: A-8513-2014
https://vk.com/andreyyurkov

канд. биол. наук, доцент, старший научный сотрудник лаборатории № 4

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3; 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д.7/9

Лидия Михайловна Якоби

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»; Санкт-Петербургский государственный университет

Email: Iidija-jacobi@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0387-5024
SPIN-код: 3384-4130

научный сотрудник лаборатории № 4

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3; 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д.7/9

Список литературы

  1. Remy W, Taylor TN, Hass H, Kerp H. Four hundred-million-year-old vesicular arbuscular mycorrhizae. Proc Natl Acad Sci USA. 1994;91(25):11841-11843. doi: 10.1073/pnas.91.25.11841.
  2. Spatafora JW, Chang Y, Benny GL, et al. A phylum-level phylogenetic classification of zygomycete fungi based on genome-scale data. Mycologia. 2016;108(5):1028-46. doi: 10.3852/16-042.
  3. Smith SE, Read DJ. Mycorrhizal symbiosis. Cambridge (UK): Academic Press, Cambridge; 2008.
  4. Юрков А.П., Якоби Л.М., Дзюбенко Н.И., и др. Полиморфизм популяции Павловская люцерны хмелевидной по показателям продуктивности, микоризации и эффективности симбиоза с Glomus intraradices // Сельскохозяйственная биология. – 2011. – Т. 46. – № 3. – С. 65–70. [Yurkov AP, Yakobi LM, Dzyubenko NI, et al. Black medic pavlovskaya population is polymorphic for productivity, mycorrhization and symbiotic efficiency with Glomus intraradices. Selskokhoziaistvennaia Biol. 2011;46(3):65-70. (In Russ.)]
  5. Юрков А.П., Лактионов Ю.В., Кожемяков А.П., и др. Анализ симбиотической эффективности бактериальных и грибных препаратов на кормовых культурах по данным урожайности семян // Кормопроизводство. – 2017. – № 3. – С. 16–21. [Yurkov AP, Laktionov YV, Kozhemyakov AP, et al. Symbiotic efficiency of bacterial and fungal preparations for forage crops according to seed harvest. Kormoproizvodstvo. 2017;(3):16-21. (In Russ.)]
  6. Duc G, Messager A. Mutagenesis of pea (Pisum sativum L.) and the isolation of mutants for nodulation and nitrogen fixation. Plant Sci. 1989;60(2):207-213. doi: 10.1016/0168-9452(89)90168-4.
  7. Borisov A, Vasil’chikov AG, Voroshilova VA, et al. Regulatory genes of garden pea (Pisum sativum L.) controlling the development of nitrogen-fixing nodules and arbuscular mycorrhiza: a review of basic and applied aspects. Prikl Biokhim Mikrobiol. 2007;43(3):265-271. doi: 10.1134/S0003683807030027.
  8. Gianinazzi-Pearson V, Smith SE, Gianinani S, et al. Enzymatic studies on the metabolism of vesicular-arbusuclar mycorrhizas V. Is H+-ATPase a component of ATP-hydrolysing enzyme activities in plant-fungus interfaces? New Phytol. 1991;117(1):61-76. doi: 10.1111/j.1469-8137.1991.tb00945.x.
  9. Balaji B, Ba AM, LaRue TA, et al. Pisum sativum L. mutants insensitive to nodulation are also insensitive to invasion in vitro by mycorrhizal fungus Gigaspora margarita. Plant Sci. 1994;102(2):195-203. doi: 10.1016/0168-9452(94)90038-8.
  10. Sagan M, Morandi D, Tarenghi E, et al. Selection of nodulation and mycorrhizal mutants in the model plant Medicago truncatula (Gaertn.) after γ-ray mutagenesis. Plant Sci. 1995;111(1):63-71. doi: 10.1016/0168-9452(95)04229-N.
  11. Shiztliffe SJ, Vessey JK. A nodulation (Nod+/Fix–) mutant of Phaseolus vulgaris L. has nodulelike structures lacking peripherial vascular bundles (Pvb–) and is resistant to mycorrhizal infection (Myc–). Plant Sci. 1996;118(2):209-220. doi: 10.1016/0168-9452(96)04427-5.
  12. Morandi D, Prado E, Sagan M, Duc G. Characterisation of new symbiotic Medicago truncatula (Gaertn.) mutants, and phenotypic or genotypic complementary information on previously described mutants. Mycorrhiza. 2005;15(4):283-289. doi: 10.1007/s00572-004-0331-4.
  13. Klingner A, Bothe H, Wray V. Identification of a yellow pigment formed in maize roots upon mycorrhizal colonization. Phytochemistry. 1995;38(1):53-55. doi: 10.1016/0031-9422(94)00538-5.
  14. Cordier C, Pozo MJ, Barea JM, et al. Cell defense responses assosiated with localized and systemic resistance to Phitophthora parasitica induced in tomato by an arbuscular mycorrhizal fungus. MPMI. 1998;11(10):1017-1028. doi: 10.1094/MPMI.1998.11.10.1017.
  15. Larkan NJ, Smith SE, Barker SJ. Position of the reduced mycorrhizal colonization (Rmc) locus on the tomato genome map. Mycorrhiza. 2007;17(4):311-318. doi: 10.1007/s00572-007-0106-9.
  16. Reddy DMRS, Schorderet M, Feller U, Reinhardt D. A petunia mutant affected in intracellular accommodation and morphogenesis of arbuscular mycorrhizal fungi. Plant J. 2007;51(5):739-750. doi: 10.1111/j.1365-313X.2007.03175.x.
  17. Morandi D, le Signor C, Gianinazzi-Pearson V, Duc G. A Medicago truncatula mutant hyper-responsive to mycorrhiza and defective for nodulation. Mycorrhiza. 2009;19(6):435-441. doi: 10.1007/s00572-009-0242-5.
  18. Юрков А.П., Якоби Л.М., Степанова Г.В., и др. Эффективность инокуляции форм люцерны хмелевидной грибом арбускулярной микоризы Glomus intraradices и внутрипопуляционная изменчивость растений по показателям продуктивности и микоризообразования // Сельскохозяйственная биология. – 2007. – Т. 42. – № 5. – С. 67–74. [Yurkov AP, Yakobi LM, Stepanova GV, et al. Inoculation efficiency of Glomus intrara- dices and intrapopulation variability in plants of Medicago lupulina L. on productiv ity and forming of mycorrhiza. Selskokhoziaistvennaia Biol. 2007;42(5):67-74. (In Russ.)]
  19. Юрков А.П., Якоби Л.М., Кожемяков А.П., Шишова М.Ф. Влияние арбускулярной микоризы на рост и развитие быстроотзывчивой на микоризацию линии люцерны хмелевидной (Medicago lupulina L.) // Вестник Санкт-Петербургского университета. Серия 3. Биология. – 2009. – № 2. – С. 138–144. [Yurkov AP, Yakobi LM, Kozhemyakov AP, Shishova MF. Influence of arbuscular mycorrhiza on growth and development of black medic (Medicago lupulina L.) plant line with high response to mycorrhization. Vestnik Sankt-Peterburgskogo universiteta. Seriia 3, Bio logiia. 2009;(2):138-144. (In Russ.)]
  20. Yurkova AP, Jacobi LM, Gapeeva NE, et al. Development of Arbuscular Mycorrhiza in Highly Responsive and Mycotrophic Host Plant-Black Medick (Medicago lupulina L.). Ontogenez. 2015;46(5):313-326. doi: 10.1134/S1062360415050082.
  21. Юрков А.П., Степанова Г.В., Якоби Л.М., и др. Продуктивность яровой и озимой пшеницы при использовании гриба арбускулярной микоризы Glomus intraradices в условиях дефицита влаги // Кормопроизводство. – 2012. – № 11. – С. 18–20. [Yurkov AP, Stepanova GV, Yakobi LM, et al. Productivity of spring and winter wheat in drought conditions dependent on the application of arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices. Kormoproizvodstvo. 2012;(11):18-20. (In Russ.)]
  22. Кирпичников Н.А., Завалин А.А., Волков А.А., и др. Эффективность фосфорных удобрений на периодически известкуемой почве при обработке семян ячменя и клевера биопрепаратами // Агрохимия. – 2012. – № 11. – С. 16–27. [Kirpichnikov NA, Zavalin AA, Volkov AA, et al. Effect of Phosphorus Fertilizers, Lime Materials, and Biopreparations on Barley and Clover Plants in a Mixed Plantation. Agrokhimiya. 2012;(11):16-27. (In Russ.)]
  23. Юрков А.П., Якоби Л.М., Юрченко Е.Г., и др. Оптимизация почвенно-биотического комплекса виноградных школок на основе обработки грибами арбускулярной микоризы // Научные труды ГНУ СКЗНИИСиВ. – 2013. – Т. 3. – С. 116–121. [Yurkov AP, Yakobi LM, Yurchenko EG, et al. Optimization of soil-biotic complex of vine nursery on the basis of treatment of arbuscular mycorrhizal fungi. Nauchnye trudy GNU SKZNIISiV. 2013;3:116-121. (In Russ.)]
  24. Сергалиев Н.Х., Юрков А.П., Тлепов А.С., и др. Влияние гриба арбускулярной микоризы Glomus intraradices на продуктивность яровой твердой пшеницы на темно-каштановой почве в условиях сухостепной зоны Приуралья // Новости науки Казахстана. – 2013. – № 3. – С. 149–154. [Sergaliev NKh, Yurkov AP, Tlepov AS, et al. Vliyanie griba arbuskulyarnoy mikorizy Glomus intraradices na produktivnost’ yarovoy tverdoy pshenitsy na temno-kashtanovoy pochve v usloviyakh sukhostepnoy zony Priural’ya. Novosti nauki Kazakhstana. 2013;(3):149-154. (In Russ.)]
  25. Ефимова И.Л., Юрков А.П. Новые приемы агро экологии для повышения качества посадочного материала яблони // Труды Кубанского ГАУ. – 2015. – № 55. – С. 73–77. [Efimova IL, Yurkov AP. Novye priemy agroekologii dlya povysheniya kachestva posadochnogo materiala yabloni. Trudy Kubanskogo GAU. 2015;(55):73-77. (In Russ.)]
  26. Юрков А.П., Шишова М.Ф., Семенов Д.Г. Особенности развития люцерны хмелевидной с эндомикоризным грибом. – Саарбрюкен: LAP, 2010. [Yurkov AP, Shishova MF, Semenov DG. Osobennosti razvitiya lyutserny khmelevidnoy s endomikoriznym gribom. Saarbruken: LAP; 2010. (In Russ.)]
  27. Phillips JM, Hayman DS. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transact British Mycor Soc. 1970;55(1):158-161. doi: 10.1016/S0007–1536(70)80110-3.
  28. Trouvelot A, Kough JL, Gianinazzi-Pearson V. Mesure du taux de mycorhization VA d’un système radiculaire. Recherche de méthodes ayant une signification fonctionnelle. In: Physiological and genetical aspects of mycorrhizae. Ed. by V. Gianinazzi-Pearson, S. Giani nazzi. Paris; 1986.
  29. Воробьев Н.И., Юрков А.П., Проворов Н.А. Программа вычисления индексов микоризации корней растений. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2016612112. Зарегистрирована 12.02.2016. – М., 2016. [Vorob’ev NI, Yurkov AP, Provorov NA. Programma vychisleniya indeksov mikorizatsii korney rasteniy. Svidetel’stvo o gosudarstvennoy registratsii programmy dlya EVM № 2016612112. Zaregistrirovana 12.02.2016. Moscow; 2016. (In Russ.)]
  30. Shtark OY, Sulima AS, Zhernakov AI, et al. Arbuscular mycorrhiza development in pea (Pisum sativum L.) mutants impaired in five early nodulation genes including putative orthologs of NSP1 and NSP2. Symbiosis. 2016;68(1-3):129-144. doi: 10.1007/s13199-016-0382-2.
  31. Сидорова К.К. Исследование естественной мутабильности мутантов растений на примере Pisum sativum L. // Информационный вестник ВОГиС. – 2008. – Т. 12. – № 1–2. – С. 180–185. [Sidorova KK. A study of natural mutability in plants: a case of Pisum Sativum l. Informatsionnyy vestnik VOGiS. 2008;12(1-2):180-185. (In Russ.)]
  32. El Ghachtouli N, Martin-Tanguy J, Paynot M, et al. First report of inhibition of arbuscular mycorrhizal infection of Pisum sativum by specific and irreversible inhibition of polyamine biosynthesis or by gibberellic acid treatment. FEBS Letters. 1996;385(3):189-192. doi: 10.1016/0014-5793(96)00379-1.
  33. Herrera-Medina MJ, Steinkellner S, Vierheilig H, et al. Abscisic acid determines arbuscule development and functionality in the tomato arbuscular mycorrhiza. New Phytol. 2007;175(3):554-564. doi: 10.1111/j.1469-8137.2007.02107.x.
  34. Kojima T, Saito K, Oba H, et al. Isolation and phenotypic characterization of Lotus japonicus mutants specifically defective in arbuscular mycorrhizal formation. Plant Cell Physiol. 2014;55(5):928-941. doi: 10.1093/pcp/pcu024.
  35. Duc G, Trouvelot A, Gianinazzi-Pearson V, et al. First report of non-mycorrhizal plant mutants (Myc–) obtained in pea (Pisum sativum L.) and fababean (Vicia faba L.). Plant Sci. 1989;60(2):215-222. doi: 10.1016/0168-9452(89)90169-6.
  36. Sagan M, Duc G. Sym28 and sym29, two new genes involved in regulation of nodulation in pea (Pisum sativum L.). Symbiosis. 1996;20:229-245.
  37. Engvild K. Nodulation and nitrogen fixation mutants of pea, Pisum sativum L. Theor Appl Genet. 1987;74(6):711-713. doi: 10.1007/BF00247546.
  38. Kneen BE, LaRue TA. Induced symbiosis mutants of pea (Pisum sativum) and sweetclover (Melilotus alba annua). Plant Sci. 1988;58(2):177-182. doi: 10.1016/0168-9452(88)90007-6.
  39. Jacobsen E. Modification of symbiotic interaction of pea (Pisum sativum L.) and Rhizobium leguminosarum by induced mutations. Plant Soil. 1984;82(3):427-438. doi: 10.1007/BF02184280.
  40. Jacobsen E, Feenstra WJ. A new pea mutant with efficient nodulation in the presence of nitrate. Plant Sci Lett. 1984;33(3):337-344. doi: 10.1016/0304-4211(84)90025-7.
  41. Borisov AY, Morzina EV, Kulikova OA, et al. New symbiotic mutants of pea (Pisum sativum L.) affecting either nodule initiation or symbiosome development. Symbiosis. 1992;14:297-313.
  42. Tsyganov VE, Borisov AY, Rozov SM, et al. New symbiotic mutants of pea obtained after mutagenesis of laboratory line SGE. Pisum Genet. 1994;26:36-37.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Схема отбора линий с отклонениями в развитии АМ, полученных в результате ЭМС-мутагенеза сильно микотрофной линии Medicago lupulina. Рд — показатель уровня доступного для питания фосфора в субстрате, Э — эффективность АМ, рассчитанная по сырому весу надземных частей, F — встречаемость АМ, ↑ и ↓ — высокое/низкое значение показателей «Рд», Э и F соответственно

Скачать (419KB)
Метаданные

© Юрков А.П., Якоби Л.М., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах