ТОЧНАЯ ЛОКАЛИЗАЦИЯ МУТАЦИИ ПО ЛОКУСУ CDT, ПРИВОДЯЩЕЙ К ПОВЫШЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТИ ГОРОХА (PISUM SATIVUM L.) К КАДМИЮ


Цитировать

Полный текст

Аннотация

У гороха посевного описан мутант SGECdt (cdt), характеризующийся повышенным уровнем накопления кадмия и устойчивостью к данному тяжелому металлу, по сравнению с исходной линией. Проведенный ранее SSAP анализ позволил локализовать локус cdt в VI группе сцепления гороха. Для более подробного картирования локуса cdt были разработаны молекулярные маркеры, основанные на известных последовательностях генов гороха, выявленных с помощью анализа геномной микросинтении между горохом посевным и модельным бобовым Medicago truncatula. Было выявлено тесное сцепление локуса cdt и маркеров, разработанных на основе генов Pentatricopeptide repeat и Exosome complex exonuclease RRP45. Таким образом, были созданы условия для дальнейшего позиционного клонирования гена cdt.

Об авторах

Ольга Алексеевна Кулаева

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии, Санкт-Петербург, РФ

Email: koa1983@yandex.ru Podbelskiy chausse, 3, Saint-Petersburg, Pushkin, 196608, Russia

Виктор Евгеньевич Цыганов

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии, Санкт-Петербург, РФ

Email: viktor_tsyganov@arriam.spb.ru

Список литературы

  1. Кулаева О. А., Цыганов В. Е., 2010. Молекулярно-генетические основы устойчивости высших растений к кадмию и его аккумуляции//Экол. генетика. Т. 8. С. 3-15.
  2. Цыганов В. Е., Кулаева О. А., Нокс М., и др., 2012. Использование SSAP анализа для первичной локализации мутации cdt (cadmium tolerance) в VI группе сцепления гороха//Экол. генетика. Т. X, N 1. С. 42-46.
  3. Aubert G., Morin J., Jacquin F. et al., 2006. Functional mapping in pea, as an aid to the candidate gene selection and for investigating synteny with the model legume Medicago truncatula//Theor. Appl. Genet. Vol. 112. P. 1024-1041.
  4. Belimov A. A., Safronova V. I., Tsyganov V. E. et al., 2003. Genetic variability in tolerance to cadmium and accumulation of heavy metals in pea (Pisum sativum L.)//Euphytica. Vol. 131. P. 25-35.
  5. Cobbett C. S., May M. J., Howden R., Rolls B., 1998. The glutathione-deficient, cadmium-sensitive mutant, cad2-1, of Arabidopsis thaliana is deficient in γ-glutamylcysteine synthetase//The Plant J. Vol. 16. P. 73-78.
  6. Dellaporta S., Wood J., 1983. Plant DNA minipreparation//Plant Mol. Biol. Rep. Vol. 1. P. 19-21.
  7. Ellis T., Poyser S., 2002. An integrated and comparative view of pea genetic and cytogenetic maps//New Phytol. Vol. 153. P. 17-25.
  8. Flavell R., Bennett M., Smith J., Smith D., 1974. Genome size and the proportion of repeated nucleotide sequence DNA in plants//Biochem. Genet. Vol. 4. P. 257-269.
  9. Greshoff P. M., 2005. Positional Cloning of Plant Developmental Genes//The Handbook of Plant Genome Mapping. Genetic and Physical Mapping/Eds.: Meksem K. and Kahl G. Wiley-VCH, Weinheim. P. 233-256.
  10. Graham L., Sticklen B., 1993. Plant chitinases//Can. J. Bot. Vol. 72. P. 1057-1083.
  11. Howden R., Goldsbrough P. B., Andersen C. R., Cobbett C. S., 1995. Cadmium-sensitive, cad1 mutants of Arabidopsis thaliana are phytochelatin deficient//Plant Physiol. Vol. 107. P. 1059-1066.
  12. Ha S., Howden R., Dietrich W., Bugg S., 1999. Phytochelatin synthase genes from arabidopsis and the yeast Schizosaccharomyces pombe//Plant Cell. Vol. 11. P. 1153-1163.
  13. Iwata H., Ninomiya S., 2006. AntMap: Constructing genetic linkage maps using an ant colony optimization algorithm//Breed. Sci. Vol. 56. P. 371-377.
  14. Jander G., Norris S., Rounsley S. et al., 2002. Arabidopsis map based cloning in the post genome era//Plant Physiol. Vol. 129. P. 440 450.
  15. Kaló P., Seres A., Taylor S. et al., 2004. Comparative mapping between Medicago sativa and Pisum sativum//Mol. Genet. Genomics. Vol. 272. P. 235-246.
  16. Murray M., Peters D., Thompson W., 1981. Ancient repeated sequences in the pea and mung bean genomes and implications for genome evolution//J. Sci. Food Agr. Vol. 17. P. 31-42.
  17. Neff M., Turk E., Kalishman M., 2002. Web based primer design for single nucleotide polymorphism analysis//Trends Genet. Vol. 18. P. 613-615.
  18. Sanita di Toppi L., Gabbrielli R., 1999. Response to cadmium in higher plants//Environ. Exp. Bot. Vol. 41. P.105-130.
  19. Sharma S., Dietz K., 2006. The significance of amino acids and amino acid-derived molecules in plant responses and adaptation to heavy metal stress//J. Exp. Bot. Vol. 57. P. 711-726.
  20. Tattersall A.D., Turner L., Knox M. R. et al., 2005. The Mutant crispa reveals multiple roles for PHANTASTICA in pea compound leaf development//Plant Cell. Vol. 17. P. 1046-1060.
  21. Tsyganov V., Belimov A., Borisov A. et al, 2007. A chemically induced new pea (Pisum sativum) mutant SGECdt with increased tolerance to, and accumulation of, cadmium//Ann. Bot. London. Vol. 99. P. 227-237.
  22. Watanabe A., Ito H., Chiba M. et al., 2010. Isolation of novel types of Arabidopsis mutants with altered reactions to cadmium: cadmium gradient agar plates are an effective screen for the heavy metal related mutants//Planta. Vol. 232. P. 825-836.

© Кулаева О.А., Цыганов В.Е., 2012

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах