Сравнительное исследование эффектов мезенхимальных стволовых клеток при различных методах доставки в экспериментальной модели фиброза легких

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Обоснование. Одним из перспективных направлений лечения идиопатического легочного фиброза является трансплантация мезенхимальных стволовых клеток. В экспериментальных исследованиях на мелких животных используются внутривенный и эндобронхиальный (инсталляции) методы доставки клеточного препарата, в то время как у человека наиболее простым и доступным является ингаляционный способ доставки лекарств.

Цель — определение оптимального типа небулайзера для сохранения жизнеспособных мезенхимальных стволовых клеток (МСК) при распылении с последующим сравнением эффектов ингаляционного и внутривенного методов доставки на стандартной модели блеомицинового легочного фиброза у кроликов.

Методы. На первом этапе проводилась оценка выживаемости МСК ex vivo после 10-минутной небулизации через компрессорный, ультразвуковой и сетчатый (меш) небулайзеры. В дальнейшем использовался небулайзер, продемонстрировавший сохранность наибольшего числа клеток после распыления. На втором этапе, после бронхоскопической инсталляции блеомицина, 5 кроликов получили в заднюю правую долю внутривенную трансплантацию 2×106 аллогенных МСК, 5 — 2×107 МСК ингаляционно через компрессорный небулайзер; по 5 животных использовались в качестве здорового и блеомицинового контроля без лечения.

Результаты. Наибольшая степень жизнеспособности МСК сохранялась после прохождения через компрессорный небулайзер (72%), существенно меньшая выживаемость наблюдалась при ультразвуковой небулизации (20%) и не определялось живых клеток после меш-небулизации. Обе группы, получавшие лечение МСК, имели достоверно более низкий индекс фиброза по морфометрической шкале Эшкрофта, чем контрольная группа блеомицинового фиброза. Экспрессия коллагена в ткани легких была существенно выше во всех группах с блеомициновой травмой, но у животных при ингаляционном введении МСК она достоверно отличалась (0,51 балла) от группы блеомицина без лечения (2,1 балла). Уровень нейтрофилов в жидкости бронхоальвеолярного лаважа был достоверно ниже у животных, получивших внутривенную терапию МСК. Уровни TNFα и TGFβ1 в жидкости бронхоальвеолярного лаважа имели тенденцию к уменьшению в группах лечения, но достоверно не различались от контроля.

Выводы. Наибольшая выживаемость МСК наблюдается при прохождении через компрессорный небулайзер, который, по-видимому, следует рассматривать в качестве оптимального средства для доставки клеток в дыхательные пути. Как при ингаляционном, так и при внутривенном введении МСК наблюдаются сходные эффекты — торможение развития блеомицининдуцированного фиброза легких, что свидетельствует о возможности использования обоих путей доставки клеток без потери эффективности.

Об авторах

Александр Вячеславович Аверьянов

Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России; Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России

Email: averyanovav@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1031-6933
SPIN-код: 2229-7100

докт. мед. наук, главный научный сотрудник отдела фундаментальной пульмонологии

Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28

Анатолий Георгиевич Коноплянников

Национальный медицинский исследовательский центр радиологии

Email: konopl@obninsk.ru
ORCID iD: 0000-0003-2766-9030

докт. биол. наук, профессор, главный научный сотрудник

Россия, 249036, Калужская область, г. Обнинск, ул. Королева, д. 4

Фёдор Георгиевич Забозлаев

Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России

Email: fzab@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7445-8319
SPIN-код: 3259-9332

докт. мед. наук, заведующий патологоанатомическим отделением

Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28

Анна Геннадьевна Сотникова

Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России; Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России

Email: sotnikoffaa@gmail.com

заведующая пульмонологическим отделением

Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28

Олеся Васильевна Данилевская

Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России; Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России

Email: danless@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7573-3554
SPIN-код: 5951-8780

старший научный сотрудник лаборатории патологической анатомии

Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28

Михаил Анатольевич Коноплянников

Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России

Автор, ответственный за переписку.
Email: mkonopl@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1180-2343
SPIN-код: 9211-6391

канд. биол. наук, заведующий лабораторией клеточных технологий

Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28

Алексей Романович Татарский

Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России

Email: averyanovav@mail.ru
SPIN-код: 9734-2366

докт. мед. наук, профессор, руководитель образовательного центра

Россия, 115682, г. Москва, Ореховый бульвар, д.28

Список литературы

  1. Raghu G, Collard HR, Egan JJ, et al. An official ATS/ERS/JRS/ALAT statement: idiopathic pulmonary fibrosis: evidence-based guidelines for diagnosis and management. Am J Respir Crit Care Med. 2011;183(6):788–824. doi: 10.1164/rccm.2009-040GL.
  2. Navaratnam V, Fleming KM, West J, et al. The rising incidence of idiopathic pulmonary fibrosis in the U.K. Thorax. 2011;66(6):462–467. doi: 10.1136/thx.2010.148031.
  3. American Thoracic Society; European Respiratory Society. American Thoracic Society/European Respiratory Society international multidisciplinary consensus classification of the idiopathic interstitial pneumonias. Am J Respir Crit Care Med. 2002;165(2):277–304. doi: 10.1164/ajrccm.165.2.ats01.
  4. Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(2):133–140. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.
  5. Moodley Y, Ilancheran S, Samuel C, et al. Human amnion epithelial cell transplantation abrogates lung fibrosis and augments repair. Am J Respir Crit Care Med. 2010;182(5):643–651. doi: 10.1164/rccm.201001-0014OC.
  6. Murphy S, Lim R, Dickinson H, et al. Human amnion epithelial cells prevent bleomycin-induced lung injury and preserve lung function. Cell Transplant. 2011;20(6):909–923. doi: 10.3727/096368910X543385.
  7. Reddy M, Fonseca L, Gowda S, et al. Human adipose-derived mesenchymal stem cells attenuate early stage of bleomycin induced pulmonary fibrosis: comparison with pirfenidone. Int J Stem Cells. 2016;9(2):192–206. doi: 10.15283/ijsc16041.
  8. Awad HA, Butler DL, Boivin GP, et al. Autologous mesenchymal stem cell-mediated repair of tendon. Tissue Eng. 1999;5(3):267–277. doi: 10.1089/ten.1999.5.267.
  9. Ashcroft T, Simpson JM, Timbrell V. Simple method of estimating severity of pulmonary fibrosis on a numerical scale. J Clin Pathol. 1988;41(4):467–470.
  10. Yeo LY, Friend JR, McIntosh MP, et al. Ultrasonic nebulization platforms for pulmonary drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 2010;7(6):663–679. doi: 10.1517/17425247.2010.485608.
  11. Martin AR, Finlay WH. Nebulizers for drug delivery to the lungs. Expert Opin Drug Deliv. 2015;12(6):889–900. doi: 10.1517/17425247.2015.995087.
  12. Kamaruzaman NA, Kardia E, Kamaldin N, et al. The rabbit as a model for studying lung disease and stem cell therapy. Biomed Res Int. 2013;2013:691830. doi: 10.1155/2013/691830.
  13. Degryse AL, Lawson WE. Progress toward improving animal models for idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Med Sci. 2011;341(6):444–449. doi: 10.1097/MAJ.0b013e31821aa000.
  14. Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, et al. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405–422. doi: 10.3727/096368909788809857.
  15. Lee SH, Jang AS, Kim YE, et al. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010;11:16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.
  16. Lan YW, Choo KB, Chen CM, et al. Hypoxia-preconditioned mesenchymal stem cells attenuate bleomycin-induced pulmonary fibrosis. Stem Cell Res Ther. 2015;6:97. doi: 10.1186/s13287-015-0081-6.
  17. Rojas M, Xu J, Woods CR, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005;33(2):145–152. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC.
  18. Xu J, Mora A, Shim H, et al. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007;37(3):291–299. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC.
  19. Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, et al. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104(26):11002–11007. doi: 10.1073/pnas.0704421104.
  20. Cargnoni A, Piccinelli EC, Ressel L. Conditioned medium from amniotic membrane-derived cells prevents lung fibrosis and preserves blood gas exchanges in bleomycin-injured mice-specificity of the effects and insights into possible mechanisms. Cytotherapy. 2014;16(1):17–32. doi: 10.1016/j.jcyt.2013.07.002.
  21. Rathinasabapathy A, Bruce E, Espejo A, et al. Therapeutic potential of adipose stem cell-derived conditioned medium against pulmonary hypertension and lung fibrosis. Br J Pharmacol. 2016;173(19):2859–2879. doi: 10.1111/bph.13562.
  22. Islam MN, Das SR, Emin MT, et al. Mitochondrial transfer from bone-marrow–derived stromal cells to pulmonary alveoli protects against acute lung injury. Nat Med. 2012;18(5):759–765. doi: 10.1038/nm.2736.
  23. Sinclair KA, Yerkovich ST, Hopkins PM, Chambers DC. Characterization of intercellular communication and mitochondrial donation by mesenchymal stromal cells derived from the human lung. Stem Cell Res Ther. 2016;7(1):91. doi: 10.1186/s13287-016-0354-8.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Дизайн второго этапа исследования

Скачать (48KB)
3. Рис. 2. Жизнеспособные мезенхимальные стволовые клетки после 10-минутного распыления с помощью небулайзеров трех разных типов

Скачать (176KB)
4. Рис. 3. Репрезентативные гистологические срезы ткани легкого в группах исследования

5. Рис. 4. Иммуногистохимические маркеры коллагена IV типа в исследуемых группах


© Аверьянов А.В., Коноплянников А.Г., Забозлаев Ф.Г., Сотникова А.Г., Данилевская О.В., Коноплянников М.А., Татарский А.Р., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах