Сравнительное исследование эффектов мезенхимальных стволовых клеток при различных методах доставки в экспериментальной модели фиброза легких
- Авторы: Аверьянов А.В.1,2, Коноплянников А.Г.3, Забозлаев Ф.Г.2, Сотникова А.Г.1,2, Данилевская О.В.1,2, Коноплянников М.А.2, Татарский А.Р.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России
- Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России
- Национальный медицинский исследовательский центр радиологии
- Выпуск: Том 9, № 4 (2018)
- Страницы: 4-14
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.rcsi.science/clinpractice/article/view/10416
- DOI: https://doi.org/10.17816/clinpract944-14
- ID: 10416
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Одним из перспективных направлений лечения идиопатического легочного фиброза является трансплантация мезенхимальных стволовых клеток. В экспериментальных исследованиях на мелких животных используются внутривенный и эндобронхиальный (инсталляции) методы доставки клеточного препарата, в то время как у человека наиболее простым и доступным является ингаляционный способ доставки лекарств.
Цель — определение оптимального типа небулайзера для сохранения жизнеспособных мезенхимальных стволовых клеток (МСК) при распылении с последующим сравнением эффектов ингаляционного и внутривенного методов доставки на стандартной модели блеомицинового легочного фиброза у кроликов.
Методы. На первом этапе проводилась оценка выживаемости МСК ex vivo после 10-минутной небулизации через компрессорный, ультразвуковой и сетчатый (меш) небулайзеры. В дальнейшем использовался небулайзер, продемонстрировавший сохранность наибольшего числа клеток после распыления. На втором этапе, после бронхоскопической инсталляции блеомицина, 5 кроликов получили в заднюю правую долю внутривенную трансплантацию 2×106 аллогенных МСК, 5 — 2×107 МСК ингаляционно через компрессорный небулайзер; по 5 животных использовались в качестве здорового и блеомицинового контроля без лечения.
Результаты. Наибольшая степень жизнеспособности МСК сохранялась после прохождения через компрессорный небулайзер (72%), существенно меньшая выживаемость наблюдалась при ультразвуковой небулизации (20%) и не определялось живых клеток после меш-небулизации. Обе группы, получавшие лечение МСК, имели достоверно более низкий индекс фиброза по морфометрической шкале Эшкрофта, чем контрольная группа блеомицинового фиброза. Экспрессия коллагена в ткани легких была существенно выше во всех группах с блеомициновой травмой, но у животных при ингаляционном введении МСК она достоверно отличалась (0,51 балла) от группы блеомицина без лечения (2,1 балла). Уровень нейтрофилов в жидкости бронхоальвеолярного лаважа был достоверно ниже у животных, получивших внутривенную терапию МСК. Уровни TNFα и TGFβ1 в жидкости бронхоальвеолярного лаважа имели тенденцию к уменьшению в группах лечения, но достоверно не различались от контроля.
Выводы. Наибольшая выживаемость МСК наблюдается при прохождении через компрессорный небулайзер, который, по-видимому, следует рассматривать в качестве оптимального средства для доставки клеток в дыхательные пути. Как при ингаляционном, так и при внутривенном введении МСК наблюдаются сходные эффекты — торможение развития блеомицининдуцированного фиброза легких, что свидетельствует о возможности использования обоих путей доставки клеток без потери эффективности.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Александр Вячеславович Аверьянов
Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России; Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России
Email: averyanovav@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1031-6933
SPIN-код: 2229-7100
докт. мед. наук, главный научный сотрудник отдела фундаментальной пульмонологии
Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28Анатолий Георгиевич Коноплянников
Национальный медицинский исследовательский центр радиологии
Email: konopl@obninsk.ru
ORCID iD: 0000-0003-2766-9030
докт. биол. наук, профессор, главный научный сотрудник
Россия, 249036, Калужская область, г. Обнинск, ул. Королева, д. 4Фёдор Георгиевич Забозлаев
Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России
Email: fzab@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7445-8319
SPIN-код: 3259-9332
докт. мед. наук, заведующий патологоанатомическим отделением
Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28Анна Геннадьевна Сотникова
Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России; Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России
Email: sotnikoffaa@gmail.com
заведующая пульмонологическим отделением
Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28Олеся Васильевна Данилевская
Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России; Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России
Email: danless@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7573-3554
SPIN-код: 5951-8780
старший научный сотрудник лаборатории патологической анатомии
Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28Михаил Анатольевич Коноплянников
Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России
Автор, ответственный за переписку.
Email: mkonopl@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1180-2343
SPIN-код: 9211-6391
канд. биол. наук, заведующий лабораторией клеточных технологий
Россия, 115682 , г. Москва, Ореховый бульвар, д.28Алексей Романович Татарский
Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России
Email: averyanovav@mail.ru
SPIN-код: 9734-2366
докт. мед. наук, профессор, руководитель образовательного центра
Россия, 115682, г. Москва, Ореховый бульвар, д.28Список литературы
- Raghu G, Collard HR, Egan JJ, et al. An official ATS/ERS/JRS/ALAT statement: idiopathic pulmonary fibrosis: evidence-based guidelines for diagnosis and management. Am J Respir Crit Care Med. 2011;183(6):788–824. doi: 10.1164/rccm.2009-040GL.
- Navaratnam V, Fleming KM, West J, et al. The rising incidence of idiopathic pulmonary fibrosis in the U.K. Thorax. 2011;66(6):462–467. doi: 10.1136/thx.2010.148031.
- American Thoracic Society; European Respiratory Society. American Thoracic Society/European Respiratory Society international multidisciplinary consensus classification of the idiopathic interstitial pneumonias. Am J Respir Crit Care Med. 2002;165(2):277–304. doi: 10.1164/ajrccm.165.2.ats01.
- Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(2):133–140. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.
- Moodley Y, Ilancheran S, Samuel C, et al. Human amnion epithelial cell transplantation abrogates lung fibrosis and augments repair. Am J Respir Crit Care Med. 2010;182(5):643–651. doi: 10.1164/rccm.201001-0014OC.
- Murphy S, Lim R, Dickinson H, et al. Human amnion epithelial cells prevent bleomycin-induced lung injury and preserve lung function. Cell Transplant. 2011;20(6):909–923. doi: 10.3727/096368910X543385.
- Reddy M, Fonseca L, Gowda S, et al. Human adipose-derived mesenchymal stem cells attenuate early stage of bleomycin induced pulmonary fibrosis: comparison with pirfenidone. Int J Stem Cells. 2016;9(2):192–206. doi: 10.15283/ijsc16041.
- Awad HA, Butler DL, Boivin GP, et al. Autologous mesenchymal stem cell-mediated repair of tendon. Tissue Eng. 1999;5(3):267–277. doi: 10.1089/ten.1999.5.267.
- Ashcroft T, Simpson JM, Timbrell V. Simple method of estimating severity of pulmonary fibrosis on a numerical scale. J Clin Pathol. 1988;41(4):467–470.
- Yeo LY, Friend JR, McIntosh MP, et al. Ultrasonic nebulization platforms for pulmonary drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 2010;7(6):663–679. doi: 10.1517/17425247.2010.485608.
- Martin AR, Finlay WH. Nebulizers for drug delivery to the lungs. Expert Opin Drug Deliv. 2015;12(6):889–900. doi: 10.1517/17425247.2015.995087.
- Kamaruzaman NA, Kardia E, Kamaldin N, et al. The rabbit as a model for studying lung disease and stem cell therapy. Biomed Res Int. 2013;2013:691830. doi: 10.1155/2013/691830.
- Degryse AL, Lawson WE. Progress toward improving animal models for idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Med Sci. 2011;341(6):444–449. doi: 10.1097/MAJ.0b013e31821aa000.
- Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, et al. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405–422. doi: 10.3727/096368909788809857.
- Lee SH, Jang AS, Kim YE, et al. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010;11:16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.
- Lan YW, Choo KB, Chen CM, et al. Hypoxia-preconditioned mesenchymal stem cells attenuate bleomycin-induced pulmonary fibrosis. Stem Cell Res Ther. 2015;6:97. doi: 10.1186/s13287-015-0081-6.
- Rojas M, Xu J, Woods CR, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005;33(2):145–152. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC.
- Xu J, Mora A, Shim H, et al. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007;37(3):291–299. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC.
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, et al. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104(26):11002–11007. doi: 10.1073/pnas.0704421104.
- Cargnoni A, Piccinelli EC, Ressel L. Conditioned medium from amniotic membrane-derived cells prevents lung fibrosis and preserves blood gas exchanges in bleomycin-injured mice-specificity of the effects and insights into possible mechanisms. Cytotherapy. 2014;16(1):17–32. doi: 10.1016/j.jcyt.2013.07.002.
- Rathinasabapathy A, Bruce E, Espejo A, et al. Therapeutic potential of adipose stem cell-derived conditioned medium against pulmonary hypertension and lung fibrosis. Br J Pharmacol. 2016;173(19):2859–2879. doi: 10.1111/bph.13562.
- Islam MN, Das SR, Emin MT, et al. Mitochondrial transfer from bone-marrow–derived stromal cells to pulmonary alveoli protects against acute lung injury. Nat Med. 2012;18(5):759–765. doi: 10.1038/nm.2736.
- Sinclair KA, Yerkovich ST, Hopkins PM, Chambers DC. Characterization of intercellular communication and mitochondrial donation by mesenchymal stromal cells derived from the human lung. Stem Cell Res Ther. 2016;7(1):91. doi: 10.1186/s13287-016-0354-8.