Использование зебраданио (Danio rerio) для оценки краткосрочной памяти — габитуация и определение домашней базы
- Авторы: Галстян Д.С.1,2,3, Колесникова Т.О.4, Косицын Ю.М.1, Забегалов К.Н.4, Губайдуллина М.А.4, Маслов Г.О.4,5, Демин К.А.1,4,3, Калуев А.В.1,2,4,3,5,6,7,8
-
Учреждения:
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова
- Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
- Научно-технологический университет «Сириус»
- Уральский федеральный университет
- Новосибирский государственный университет
- Научно-исследовательский институт нейронаук и медицины
- Московский физико-технический институт
- Выпуск: Том 20, № 2 (2022)
- Страницы: 169-175
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.rcsi.science/RCF/article/view/109706
- DOI: https://doi.org/10.17816/RCF202169-175
- ID: 109706
Цитировать
Аннотация
Новизна среды — это один из наиболее мощных стрессоров для животных, часто используемых в нейробиологии поведения для изучения аффективных и когнитивных нарушений. Однако в процессе исследования незнакомой среды у экспериментальных животных происходит снижение стресса за счет габитуации (приспособление, habituation). В различных поведенческих тестах у зебраданио это проявляется в заплыве в зоны, представляющие потенциальную опасность для них: верхняя часть аквариума в тесте незнакомого аквариума, центральная часть в тесте открытого поля. При построении эффективной стратегии выживания важным представляется навигация в незнакомой среде, которая осуществляется за счет поиска домашней базы — наиболее безопасного участка, который служит отправной точкой в исследовании незнакомой среды. Правильное определение домашней базы важно для выявления поведенческих особенностей у зебраданио, что и рассмотрено в настоящем обзоре (как и габитуация) в качестве теста для оценки краткосрочной пространственной памяти.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Давид Самвелович Галстян
Санкт-Петербургский государственный университет; Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова; Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: david_sam@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6213-5117
научн. сотр.
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургТатьяна Олеговна Колесникова
Научно-технологический университет «Сириус»
Email: philimontani@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5561-8583
SPIN-код: 8558-7887
научн. сотр.
Россия, СочиЮрий Михайлович Косицын
Санкт-Петербургский государственный университет
Email: ikosicin53@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4266-808X
научн. сотр.
Россия, Санкт-ПетербургКонстантин Николаевич Забегалов
Научно-технологический университет «Сириус»
Email: hatokiri@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9748-0324
SPIN-код: 5993-6315
научн. сотр.
Россия, СочиМария Андреевна Губайдуллина
Научно-технологический университет «Сириус»
Email: mariangub@gmail.com
научн. сотр.
Россия, СочиГлеб Олегович Маслов
Научно-технологический университет «Сириус»; Уральский федеральный университет
Email: maslovog6@gmail.com
научн. сотр.
Россия, Сочи; ЕкатеринбургКонстантин Андреевич Демин
Санкт-Петербургский государственный университет; Научно-технологический университет «Сириус»; Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: deminkasci@gmail.com
SPIN-код: 3830-1853
канд. биол. наук, ст. научн. сотр.
Россия, Санкт-Петербург; Сочи; Санкт-ПетербургАлан Валерьевич Калуев
Санкт-Петербургский государственный университет; Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова; Научно-технологический университет «Сириус»; Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова; Уральский федеральный университет; Новосибирский государственный университет; Научно-исследовательский институт нейронаук и медицины; Московский физико-технический институт
Автор, ответственный за переписку.
Email: avkalueff@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7525-1950
SPIN-код: 4134-0515
д-р биол. наук, профессор
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург; Сочи; Санкт-Петербург; Екатеринбург; Новосибирск; Новосибирск; МоскваСписок литературы
- Wong K, Elegante M, Bartels B, et al. Analyzing habituation responses to novelty in zebrafish (Danio rerio). Behav Brain Res. 2010;208(2):450–457. doi: 10.1016/j.bbr.2009.12.023
- Maximino C, de Brito TM, da Silva Batista AW, et al. Measuring anxiety in zebrafish: a critical review. Behav Brain Res. 2010;214(20):157–171. doi: 10.1016/j.bbr.2010.05.031
- Chanin S, Fryar C, Varga D, et al. Assessing startle responses and their habituation in adult zebrafish. In: Kalueff AV, Stewart AM. Zebrafish protocols for neurobehavioral research. Springer: 2012. P. 287–300. doi: 10.1007/978-1-61779-597-8_22
- Clark KJ, Boczek NJ, Ekker SC. Stressing zebrafish for behavioral genetics. Rev Neurosci. 2011;22(1). doi: 10.1515/RNS.2011.007
- Zurn J, Falls W, Motai Y. Detecting startle responses in the zebrafish using novel digital imaging techniques. Neuroscience Meeting Planner. Society for Neuroscience. San Diego, CA. 2006.
- Burgess HA, Johnson SL, Granato M. Unidirectional startle responses and disrupted left–right coordination of motor behaviors in robo3 mutant zebrafish. Genes Brain Behav. 2009;8(5):500–511. doi: 10.1111/j.1601-183X.2009.00499.x
- Pelkowski SD, Kapoor M, Richendrfer HA, et al. A novel high-throughput imaging system for automated analyses of avoidance behavior in zebrafish larvae. Behav Brain Res. 2011;223(1):135–144. doi: 10.1016/j.bbr.2011.04.033
- Mann KD, Hoyt C, Feldman S, et al. Cardiac response to startle stimuli in larval zebrafish: sympathetic and parasympathetic components. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2010;298(5): R1288–R1297. doi: 10.1152/ajpregu.00302.2009
- Roberts AC, Reichl J, Song MY, et al. Habituation of the C-start response in larval zebrafish exhibits several distinct phases and sensitivity to NMDA receptor blockade. PLOS one. 2011;6(12):e29132. doi: 10.1371/journal.pone.0029132
- Vorhees CV, Williams MT. Assessing spatial learning and memory in rodents. ILAR J. 2014;55(2):310–32. doi: 10.1093/ilar/ilu013
- Eilam D, Golani I. Home base behavior of rats (Rattus norvegicus) exploring a novel environment. Behav Brain Res. 1989;34(3): 199–211. doi: 10.1016/s0166-4328(89)80102-0
- Benjamini Y, Tchernichovski O, Golani I. Constraints and the emergence of ‘free’ exploratory behavior in rat ontogeny. Behaviour. 1996;133(7/8):519–539. doi: 10.1163/156853996X00198
- Magara S, Holst S, Lundberg S, et al. Altered explorative strategies and reactive coping style in the FSL rat model of depression. Front Behav Neurosci. 2015;9:89. doi: 10.3389/fnbeh.2015.00089
- Leke R, de Oliveira DL, Mussulini BHM, et al. Impairment of the organization of locomotor and exploratory behaviors in bile duct-ligated rats. PLOS ONE. 2012;7(5):e36322. doi: 10.1371/journal.pone.0036322
- Gorny JH, Gorny B, Wallace DG, Whishaw IQ. Fimbria-fornix lesions disrupt the dead reckoning (homing) component of exploratory behavior in mice. Learning and Memory. 2002;9(6):387–394. doi: 10.1101/lm.53002
- Stewart A, Cachat JM, Wong K, et al. Phenotyping of zebrafish homebase behaviors in novelty-based tests. In: Kalueff AV, Cachat JM, editors. Zebrafish Neurobehavioral Protocols. Totowa, NJ: Humana Press, 2011. P. 143–155. doi: 10.1007/978-1-60761-953-6_12
- Rosemberg DB, Rico EP, Mussulini BHM, et al. Differences in spatio-temporal behavior of zebrafish in the open tank paradigm after a short-period confinement into dark and bright environments. PLOS ONE. 2011;6(5): e19397. doi: 10.1371/journal.pone.0019397
- Stewart A, Cachat J, Wong K, et al. Homebase behavior of zebrafish in novelty-based paradigms. Behav Processes. 2010;85(2): 198–203. doi: 10.1016/j.beproc.2010.07.009
