Аспекты загрязнения лекарственных растений пестицидами

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Современное интенсивное сельское хозяйство повсеместно применяет химические средства защиты сельскохозяйственных растений от вредных факторов окружающей среды – пестициды. Используются они также в санитарно-гигиенических целях: для обработки очагов распространения кровососущих членистоногих – разносчиков опасных заболеваний, и уничтожения нежелательной растительности на объектах коммуникаций. При этом сами пестициды могут стать фактором негативного воздействия на организм человека при попадании их остаточных доз в лекарственное растительное сырье как выращиваемые, так и дикорастущие.

В статье рассматривается проблема микрозагрязнений пестицидами лекарственных растений. Указываются пути попадания ядохимикатов в РЛС. Отмечается рост загрязненных площадей в Российской Федерации. Поднимаются вопросы мониторинга загрязнений пестицидами как площадей, с которых собирается растительное лекарственное сырье, так и самого его. Отмечено, что проблема мониторинга осложняется длительностью сохранения некоторых видов пестицидов в природной среде.

Об авторах

Сергей Геннадьевич Парамонов

Санкт-Петербургский государственный химико-фармацевтический университет Министерства здравоохранения Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: sergei.paramonov@pharminnotech.com

канд. биол. наук, доцент кафедры промышленной экологии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Farnsworth NR, Akerele O, Bingel AS, et al. Medicinal plants in therapy. Bulletin of the World Health Organization. 1985; 63(6): 965–81.
  2. Kosalec I, Cvek J, Tomić S. Contaminants of medicinal herbs and herbal products. Arh Hig Rada Toksikol. 2009 Dec; 60(4): 485–501. doi: 10.2478/10004-1254-60-2009-2005.
  3. Обзор российского рынка лекарственных трав и сборов // Информационный портал межрегионального делового сотрудничества // Международная Ассоциация «Система ММЦ»: сайт. – URL: http://www.marketcenter.ru/content/doc-2-10792 (дата обращения 06.05.2021).
  4. Гравель, И.В. Необходимость оценки безопасности лекарственного растительного сырья по содержанию экотоксикантов // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. – 2012. – № 2. – С. 37–39. – URL: https://cyberleninka.ru/article/n/neobhodimost-otsenki-bezopasnosti-lekarstvennogo-rastitelnogo-syrya-po-soderzhaniyu-ekotoksikantov (дата обращения: 06.05.2021).
  5. Гравель, И.В. Определение остаточных пестицидов в лекарственном растительном сырье / И. В. Гравель, И. А. Самылина, О. И. Терешкина, [и др.] // Традиционная медицина. – 2011. – № 4 (27). – С. 60–64. – URL: http://www.tradmed.ru/n27_11.shtml.
  6. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. Министерство сельского хозяйства Российской Федерации (по состоянию на 08.02.2021 г.). – Москва, 2021. – 803 с.
  7. Временные методические указания по применению ДДТ, гексахлорана и его гамма-изомера для уничтожения членистоногих, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигие- ническое значение (вшей, блох, тараканов, комаров, мошек, москитов, мух, клещей): утверждены Главным санитарным врачом СССР 02.11.1971 г. № 937-71. – Москва, 1974. – 23 с.
  8. Tripathy V, Basak BB, Varghese TS, et al. Residuesand contaminants in medicinal herbs – A review. Phytochem Lett. 2015; 14: 67–78. doi: 10.1016/j.phytol. 2015.09.003.
  9. Handbook of Pesticides: Methods of Pesticide Residues Analysis Nollet MLL, Rathore HS, editors. BocaRaton, FL: CRCPress; 2016.
  10. Государственный доклад «О состоянии санитарно- эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2019 году» // Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека: сайт. – URL: https://www.rospotrebnadzor.ru/documents/details.php?ELEMENT_ID=14933 (дата обращения: 06.05.2021).
  11. Gondo TT, Obuseng VC, Mmualefe LC, et al. Employing Solid Phase Micro extraction as Extraction Tool for Pesticide Residues in Traditional Medicinal Plants. Journal of Analytical Methodsin Chemistry. 2016: 2890219. doi: 10.1155/2016/2890219.
  12. Ежегодник «Состояние загрязнения пестицидами объектов природной среды Российской Федерации в 2019 году». – Обнинск: ФГБУ «НПО «Тайфун»», 2020. – 89 с.
  13. Hajou RMK. Determination of some pesticide residues in selected medicinal plants commonly used in Jordan [MSc thesis]. Amman, Jordan: University of Jordan; 2003.
  14. Abu-Hilal DA. Organochlorine pesticide and PCB pollution levels in the Gulf of Aqaba [MSc thesis]. Amman, Jordan: University of Jordan; 1994.15. ОФС 42B 0013B03 «Правила приемки лекарственного растительного сырья и методы отбора проб».
  15. Гибель пчел затронула 30 регионов России // Интерфакс: сайт. – URL: https://www.interfax.ru/russia/671272 (дата обращения 03.05.2021).
  16. Маркелов, Р. Гибель пчел коснулась 30 российских регионов / Р. Маркелов // Российская Газета: сайт. – URL: https://rg.ru/2019/08/01/gibel-pchel-kosnulas-30-rossijskih-regionov.html (дата обращения: 23.01.2020).
  17. Россельхознадзор обвинил Минэкономразвития в массовой гибели пчел // Интерфакс: сайт. – URL: https://www.interfax.ru/russia/668953 (дата обращения: 24.04.2021).
  18. Гигиенические нормативы содержания пестицидов в объектах окружающей среды (перечень): ГН 1.2.3539-18: утверждены постановлением Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 10 мая 2018 года № 33.
  19. Daka PS, Obuseng VC, Torto N, et al. Deltamethrin in sediment samples of the Okavango Delta, Botswana. Water SA. 2006; 32 (4): 483–8.
  20. Kgori PM, Modo S, Torr SJ. The use of aerial spraying to eliminate tsetse from the Okavango Delta of Botswana. Acta Tropica. 2006; 99 (2-3): 184–99. doi: 10.1016/j.actatropica.2006.07.007.
  21. Sarkhail P, Yunesian M, Ahmadkhaniha R, et al. Levels of organophosphorus pesticides in medicinal plants commonly consumed in Iran. DARU Journal of Pharmaceutical Sciences. 2012 Aug; 20(1): 9. doi: 10.1186/2008-2231-20-9.
  22. Ozbey A, Uygun U. Behaviour of some organophosphorus pesticide residues in thyme and stinging nettle tea during infusion process. International Journal of Food Science and Technology. 2007; 42 (3): 380–3. doi: 10.1111/j.1365-2621.2006.01237.x.
  23. World Health Organization Publications. Quality Control Methods for Medicinal Plant Materials. Geneva, Switzerland: WHO, 1998; p. 1–4; 47–60.
  24. Pluta J. Studies on contamination of vegetable drugs with halogen derivative pesticides. Part 1: Changes of concentrations of halogen derivatives in herbal raw materials within the period of 1980–1984. Die Pharmazie. 1988; 43: 121–3.
  25. Campillo N, Penalver R, Hernandez-Cordoba M. Pesticide analysis in herbal infusions by solidphase microextraction and gas chromatography with atomic emission detection. Talanta. 2007; 71: 1417–23.
  26. Ling YC, Teng HC, Cartwright C. Supercritical fluid extraction and clean-up of organochlorine pesticides in Chinese herbal medicine. Journal of Chromatography A. 1999; 835 (1-2): 145–57. doi: 10.1016/s0021-9673(98)01077-2.
  27. Ho WH, Hsieh SJ. Solid phase microextraction associated with microwave assisted extraction of organochlorine pesticides in medicinal plants. Analytica Chimica Acta. 2001; 428 (1): 111–20.
  28. Ji J, Deng C, Zhang H, Wu Y, et al. Microwave-assisted steam distillation for the determination of organochlorine pesticides and pyrethroids in Chinese teas. Talanta. 2007; 71 (3): 1068–74. doi: 10.1016/j.talanta.2006.05.087.
  29. Huang ZQ, Li YJ, Chen B, et al. Simultaneous determination of 102 pesticide residues in Chinese teas by gas chromatography-mass spectrometry. Journal of Chromatography B. 2007; 853 (1-2): 154–162. doi: 10.1016/j.jchromb.2007.03.013.
  30. Wang Y, QJin HY, Ma SC, et al. Determination of 195 pesticide residues in Chinese herbs by gas chromatography-mass spectrometry using analyte protectants. Journal of Chromatography A. 2011 Jan; 1218 (2): 334–42. doi: 10.1016/j.chroma.2010.11.036.
  31. Ahmadkhaniha R, Samadi N, Salimi M, et al. Simultaneous determination of parathion, malathion, diazinon, and pirimiphos methyl in dried medicinal plants using solid-phase microextractionfibre coated with single-walled carbon nanotubes. Scientific World Journal. 2012; 2012: 627607. doi: 10.1100/2012/627607.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Парамонов С.Г., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).