Фрагментация и гидроксиметилирование ДНК эякулированных сперматозоидов при нормозооспермии и патоспермии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Поиск новых критериев качества эякулята, основанных на оценке структурно-функционального состояния генома сперматозоидов — актуальная задача репродуктологии.

Цель исследования. Оценка целостности ДНК и содержания 5-гидроксиметилцитозина (5hmC) в одних и тех же эякулированных сперматозоидах, полученных от пациентов с нормозооспермией и патоспермией.

Методы. Исследование проведено на образцах эякулята 63 пациентов с нормозооспермией (n=33) и патоспермией (n=30). Из образцов готовили микроскопические препараты, на которых последовательно выявляли фрагментированную ДНК методом TUNEL, получали цифровые фотоизображения, выявляли 5hmC методом непрямой иммунофлуоресценции и снова получали цифровые фотоизображения тех же полей зрения. Всего проанализировано 126 000 сперматозоидов — по 2000 в каждом образце.

Результаты. Значительная доля сперматозоидов (72,8–94,2%) во всех образцах характеризовалась отсутствием нарушений целостности ДНК и низким (фоновым) уровнем 5hmC. Доля сперматозоидов, в которых были выявлены фрагментация ДНК, повышенный уровень гидроксиметилирования или обе характеристики одновременно составила 0,05–13,8, 0,15–11,5 и 0,99–13,38% соответственно. Доля сперматозоидов с фрагментацией и/или гипергидроксиметилированием ДНК не отличалась у пациентов с нормозооспермией и патоспермией. Установлено, что фрагментация и гипергидроксиметилирование ДНК в эякулированных сперматозоидах взаимозависимы, и их сочетание в гаметах носит неслучайный характер.

Заключение. Неслучайность сочетания в сперматозоидах фрагментации ДНК и ее гипергидроксиметилирования и взаимозависимость этих характеристик свидетельствует об их общем триггере, которым, вероятнее всего, является окислительный стресс. При этом наличие других факторов, приводящих к повреждению ДНК или изменению уровня ее гидроксиметилирования, объясняет не 100% совпадение этих характеристик в сперматозоидах. Оценка фрагментации ДНК и уровня ее гидроксиметилирования в сперматозоидах представляется перспективной для определения качества эякулята и выявления потенциальных причин идиопатического бесплодия.

Об авторах

Янина Максимовна Сагурова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: yanina.sagurova96@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4947-8171
SPIN-код: 8908-7033
Россия, Санкт-Петербург

Ольга Алексеевна Ефимова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: efimova_o82@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4495-0983
SPIN-код: 6959-5014

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Михаил Игоревич Крапивин

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: krapivin-mihail@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1693-5973
SPIN-код: 4989-1932
Россия, Санкт-Петербург

Мария Алексеевна Ищук

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: mashamazilina@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4443-4287
SPIN-код: 1237-6373
Россия, Санкт-Петербург

Дмитрий Александрович Староверов

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: st110982@student.spbu.ru
ORCID iD: 0009-0004-9716-4964
SPIN-код: 3438-7974
Россия, Санкт-Петербург

Екатерина Дмитриевна Трусова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: trusova.ek@mail.ru
ORCID iD: 0009-0005-6529-5799
Россия, Санкт-Петербург

Евгения Михайловна Комарова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: evgmkomarova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9988-9879
SPIN-код: 1056-7821

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Олеся Николаевна Беспалова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: shiggerra@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6542-5953
SPIN-код: 4732-8089

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Анна Андреевна Пендина

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: pendina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9182-9188
SPIN-код: 3123-2133

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Agarwal A, Bascaran S, Parekh N, et al. Male infertility. Lancet. 2021;397(10271):319–333. doi: 10.1016/S0140-6736(20)32667-2 EDN: QXRHSV
  2. Yatsenko SA, Rajkovic A. Genetics of human female infertility. Biol Reprod. 2019;101(3):549–566. doi: 10.1017/9781009197700.009 EDN: VFXDNV
  3. Eisenberg ML, Esteves SC, Lamb DJ, et al. Male infertility. Nat Rev Dis Primers. 2023;9(1):49. doi: 10.1038/s41572-023-00459-w EDN: PWSTST
  4. Bala R, Singh V, Rajender S, Singh K. Environment, lifestyle, and female infertility. Reprod Sci. 2021;28(3):617–638. doi: 10.1007/s43032-020-00279-3 EDN: HRNBPQ
  5. Matzuk MM, Lamb DJ. The biology of infertility: research advances and clinical challenges. Nat Med. 2008;14(11):1197–1213. doi: 10.1038/nm.f.1895
  6. Bracke A, Peeters K, Punjabi U, et al. A search for molecular mechanisms underlying male idiopathic infertility. Reprod Biomed online. 2018;36(3):327–339. doi: 10.1016/j.rbmo.2017.12.005
  7. Marinaro JA. Sperm DNA fragmentation and its interaction with female factors. Fertil Steril. 2023;120(4):715–719. doi: 10.1016/j.fertnstert.2023.06.001 EDN: BURRQB
  8. Dai Y, Liu J, Yuan E, et al. Relationship among traditional semen parameters, sperm DNA fragmentation, and unexplained recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;12:802632. doi: 10.3389/fendo.2021.802632 EDN: ZBMYND
  9. Malić Vončina S, Stenqvist A, Bungum M, et al. Sperm DNA fragmentation index and cumulative live birth rate in a cohort of 2,713 couples undergoing assisted reproduction treatment. Fertil Steril. 2021;116(6):1483–1490. doi: 10.1016/j.fertnstert.2021.06.049 EDN: UGVRVD
  10. Sunday OE, Nwogu A, Samue EE, et al. Single nucleotide polymorphisms in protamine 2 genes in fertile and infertile human males in Southwest, Nigeria. World J Adv Res Rev. 2024;23(1):1365–1373. doi: 10.30574/wjarr.2024.23.1.1834 EDN: OIHAGW
  11. Ni K, Spiess AN, Schuppe HC, Steger K. The impact of sperm protamine deficiency and sperm DNA damage on human male fertility: a systematic review and meta-analysis. Andrology. 2016;4(5):789–799. doi: 10.1111/andr.12216
  12. Aston KI, Uren PJ, Jenkins TG, et al. Aberrant sperm DNA methylation predicts male fertility status and embryo quality. Fertil Steril. 2015;104(6):1388–1397.e1–5. doi: 10.1016/j.juro.2016.07.015
  13. Du Y, Li M, Chen J, et al. Promoter targeted bisulfite sequencing reveals DNA methylation profiles associated with low sperm motility in asthenozoospermia. Hum Reprod. 2016;31(1):24–33. doi: 10.1093/humrep/dev283
  14. Urdinguio RG, Bayón GF, Dmitrijeva M, et al. Aberrant DNA methylation patterns of spermatozoa in men with unexplained infertility. Hum Reprod. 2015;30(5):1014–1028. doi: 10.1093/humrep/dev053 EDN: KRDPHU
  15. Olszewska M, Kordyl O, Kamieniczna M. Global 5mC and 5hmC DNA levels in human sperm subpopulations with differentially protaminated chromatin in normo- and oligoasthenozoospermic males. Int J Mol Sci. 2022;23(9):4516. doi: 10.3390/ijms23094516 EDN: KZINII
  16. Efimova OA, Krapivin MI, Parfenyev SE, et al. Differential distribution of 5-formylcytosine and 5-carboxylcytosine in human spermatogenic cells and spermatozoa. Ecological genetics. 2023;21(1):61–74. doi: 10.17816/ecogen120080 EDN: UVAHXT
  17. Wang XX, Sun BF, Jiao J, et al. Genome-wide 5-hydroxymethylcytosine modification pattern is a novel epigenetic feature of globozoospermia. Oncotarget. 2015;6(9):6535. doi: 10.18632/oncotarget.3163
  18. Mazilina MA, Komarova EM, Lesik EA, et al. The influence of sperm DNA fragmentation on the efficiency of fertilization and development of human embryos cultured in vitro. Obstetrics and gynecology. 2017;(3):69–74. doi: 10.18565/aig.2017.3.69-74 EDN: YHSRCV
  19. Efimova OA, Pendina AA, Tikhonov AV, et al. Genome-wide 5-hydroxymethylcytosine patterns in human spermatogenesis are associated with semen quality. Oncotarget. 2017;8(51):88294–88307. doi: 10.18632/oncotarget.18331 EDN: XNXTPK
  20. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. Sixth Edition. World Health Organization; 2021.
  21. Efimova OA, Pendina AA, Tikhonov AV, et al. Chromosome hydroxymethylation patterns in human zygotes and cleavage-stage embryos. Reproduction. 2015;149:223–233. doi: 10.1530/rep-14-0343 EDN: UEORLN
  22. Shcherbitskaia AD, Komarova EM, Milyutina YP, et al. Age-related COVID-19 influence on male fertility. Int J Mol Sci. 2023;24(21):15742. doi: 10.3390/ijms242115742 EDN: OCSBYV
  23. Hamilton TRDS, Assumpção MEOD. Sperm DNA fragmentation: causes and identification. Zygote. 2020;28(1):1–8. doi: 10.1017/s0967199419000595
  24. Sakkas D, Manicardi G, Bianchi PG, et al. Relationship between the presence of endogenous nicks and sperm chromatin packaging in maturing and fertilizing mouse spermatozoa. Biol Reprod. 1995;52(5):1149–1155. doi: 10.1095/biolreprod52.5.1149
  25. Marcon L, Boissonneault G. Transient DNA strand breaks during mouse and human spermiogenesis new insights in stage specificity and link to chromatin remodeling. Biol Reprod. 2004;70(4):910–918. doi: 10.1095/biolreprod.103.022541
  26. Sakkas D, Mariethoz E, Manicardi G, et al. Origin of DNA damage in ejaculated human spermatozoa. Rev Reprod. 1999;4(1):31–37. doi: 10.1530/ror.0.0040031 EDN: YCRUZZ
  27. Lopes S, Jurisicova A, Sun JG, Casper RF. Reactive oxygen species: potential cause for DNA fragmentation in human spermatozoa. Hum Reprod. 1998;13(4):896–900. doi: 10.1093/humrep/13.4.896 EDN: IPGOFV
  28. Fernández-Sánchez A, Madrigal-Santillán E, Bautista M, et al. Inflammation, oxidative stress, and obesity. Int J Mol Sci. 2011;12(5):3117–3132. doi: 10.3390/ijms12053117
  29. Elshal MF, El-Sayed IH, Elsaied MA, et al. Sperm head defects and disturbances in spermatozoal chromatin and DNA integrities in idiopathic infertile subjects: association with cigarette smoking. Clin Biochem. 2009;42(7–8):589–594. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2008.11.012 EDN: LXPTLZ
  30. Sanchez-Pena LC, Reyes BE, Lopez-Carrillo L, et al. Organophosphorous pesticide exposure alters sperm chromatin structure in Mexican agricultural workers. Toxicol Appl Pharmacol. 2004;196(1):108–113. doi: 10.1016/j.taap.2003.11.023
  31. Garolla A, Torino M, Sartini B, et al. Seminal and molecular evidence that sauna exposure affects human spermatogenesis. Hum Reprod. 2013;28(4):877–885. doi: 10.3410/f.717991598.793476086
  32. Meeker JD, Ehrlich S, Toth TL, et al. Semen quality and sperm DNA damage in relation to urinary bisphenol A among men from an infertility clinic. Reprod Toxicol. 2010;30(4):532–539. doi: 10.1016/j.reprotox.2010.07.005
  33. Desai NR, Kesari KK, Agarwal A. Pathophysiology of cell phone radiation: oxidative stress and carcinogenesis with focus on male reproductive system. Reprod Biol Endocrinol. 2009;7:114. doi: 10.1186/1477-7827-7-114 EDN: OBAJTP
  34. Wossidlo M, Nakamura T, Lepikhov K, et al. 5-Hydroxymethylcytosine in the mammalian zygote is linked with epigenetic reprogramming. Nat Commun. 2011;2:241. doi: 10.1038/ncomms1240 EDN: YAWDUR
  35. Hill PWS, Amouroux R, Hajkova P. DNA demethylation, Tet proteins and 5-hydroxymethylcytosine in epigenetic reprogramming: An emerging complex story. Genomics. 2014;104(5):324–333. doi: 10.1016/j.ygeno.2014.08.012
  36. Efimova OA, Pendina AA, Tikhonov AV, et al. Oxidized form of 5-methylcytosine-5-hydroxymethylcytosine: a new insight into the biological significance in the mammalian genome. Russian Journal of Genetics. 2015;5:75–81. doi: 10.1134/S2079059715020033 EDN: UFTKBT
  37. Zheng K, Lyu Z, Chen J, Chen G. 5-Hydroxymethylcytosine: Far Beyond the Intermediate of DNA Demethylation. Int J Mol Sci. 2024;25(21):11780. doi: 10.3390/ijms252111780 EDN: TVJZFY
  38. Efimova OA, Koltsova AS, Krapivin MI, et al. Environmental epigenetics and genome flexibility: Focus on 5-hydroxymethylcytosine. Int J Mol Sci. 2020;21(9):3223. doi: 10.3390/ijms21093223 EDN: WHHRKR
  39. Zheng H, Zhou X, Li DK, et al. Genome-wide alteration in DNA hydroxymethylation in the sperm from bisphenol A-exposed men. PLoS One. 2017;12(6):e0178535. doi: 10.1371/journal.pone.0178535
  40. Feng Q, Li Q, Hu Y, et al. TET1 overexpression affects cell proliferation and apoptosis in aging ovaries. J Assist Reprod Genet. 2024;41(12):3491–3502. doi: 10.1007/s10815-024-03271-x EDN: WZGQKY
  41. Luo Shanshan, Hu Chengyun, Li Xue, Tang Chaoliang. High S-adenosylmethionine-containing diet inhibits post-stroke neuronal apoptosis and ROS accumulation in mice through TET3-mediated DNA demethylation. Journal of Xuzhou Medical University. 2024;44(7):469–476. doi: 10.3969/j.issn.2096-3882.2024.07.001
  42. Madugundu GS, Cadet J, Wagner JR. Hydroxyl-radical-induced oxidation of 5-methylcytosine in isolated and cellular DNA. Nucleic Acids Res. 2014;42(11):7450–7460. doi: 10.1093/nar/gku334
  43. Cadet J, Wagner JR. Radiation-induced damage to cellular DNA: Chemical nature and mechanisms of lesion formation. Radiat Phys Chem. 2016;128:54–59. doi: 10.1016/j.radphyschem.2016.04.018 EDN: XYWEER

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).