Влияние новых антимикробных пептидов медицинской пиявки Hirudo medicinalis на функциональную активность белков гранул нейтрофилов
- Авторы: Григорьева Д.В.1, Горудко И.В.1, Графская Е.Н.2, Лацис И.А.2, Соколов А.В.2,3,4, Панасенко О.М.2,5, Лазарев В.Н.2
-
Учреждения:
- Белорусский государственный университет
- Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства
- Институт экспериментальной медицины
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
- Выпуск: Том 21, № 3 (2021)
- Страницы: 49-62
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.rcsi.science/MAJ/article/view/77649
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ77649
- ID: 77649
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Серьезной проблемой здравоохранения является резистентность к традиционным антибиотикам микроорганизмов, вызывающих опасные для здоровья человека инфекции. В связи с этим разработка новых эффективных антимикробных препаратов и терапевтических подходов представляется актуальной задачей. Антимикробные пептиды считают перспективной альтернативой традиционным антибиотикам в борьбе с резистентными микроорганизмами.
Цель — изучение влияния новых синтетических антимикробных пептидов медицинской пиявки Hirudo medicinalis на функциональную активность гранулярных белков нейтрофилов — основных эффекторных клеток иммунитета, в том числе в условиях развития окислительного/галогенирующего стресса.
Материалы и методы. Пероксидазную активность миелопероксидазы оценивали по скорости окисления o-дианизидина. Амидолитическую активность нейтрофильной эластазы определяли флуоресцентным методом с использованием специфического субстрата MeOSuc-AAPV-AMC. Железосвязывающую активность лактоферрина оценивали спектрофотометрическим методом по изменению поглощения раствора при добавлении соли Fe3+. Активность лизоцима определяли по скорости лизиса бактериальных клеток M. lysodeikticus.
Результаты. Нативные антимикробные пептиды 536_1 и 19347_2 ингибировали, а антимикробный пептид 12530 — усиливал пероксидазную активность миелопероксидазы, данная тенденция сохранялась и после модификации указанных пептидов хлорноватистой кислотой (HOCl). В отличие от нативного галогенированный антимикробный пептид 3967_1 усиливал ферментативную активность миелопероксидазы. В присутствии антимикробного пептида 3967_1 амидолитическая активность нейтрофильной эластазы незначительно увеличивалась, в то время как антимикробный пептид 19347_2 ингибировал активность фермента. После модификации HOCl данные соединения сохраняли свою способность регулировать активность нейтрофильной эластазы. Синергетические эффекты (~20 %) против грамположительных бактерий M. lysodeikticus выявлены для комбинации лизоцима с антимикробными пептидами 12530 и 3967_1. Ингибирование антимикробной активности лизоцима наблюдалось в присутствии антимикробных пептидов 19347_2 и 536_1, но выраженность данного эффекта снижалась после их модификации под действием HOCl. После модификации HOCl антимикробный пептид 3967_1 усиливал, в то время как 12530, наоборот, приобретал способность ингибировать муколитическую активность лизоцима.
Заключение. Использование препаратов на основе исследуемых антимикробных пептидов медицинской пиявки будет оказывать благоприятное влияние на борьбу организма с возбудителями инфекций не только за счет антимикробного действия самих антимикробных пептидов, но и за счет модуляции данными соединениями биологической активности собственных эндогенных антимикробных белков и пептидов: усиления — в случае необходимости элиминации патогена и ингибирования — для защиты от повреждения собственных тканей организма.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дарья Владимировна Григорьева
Белорусский государственный университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: dargr@tut.by
ORCID iD: 0000-0003-0210-5474
SPIN-код: 2479-7785
канд. биол. наук, доцент кафедры биофизики физического факультета
Белоруссия, МинскИрина Владимировна Горудко
Белорусский государственный университет
Email: irinagorudko@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4737-470X
SPIN-код: 8968-3125
канд. биол. наук, доцент, доцент кафедры биофизики физического факультета
Белоруссия, МинскЕкатерина Николаевна Графская
Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства
Email: grafskayacath@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8957-6142
SPIN-код: 1821-2746
лаборант лаборатории генной инженерии
Россия, МоскваИван Алексеевич Лацис
Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства
Email: lacis.ivan@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8292-0737
SPIN-код: 6775-1702
младший научный сотрудник лаборатории генной инженерии
Россия, МоскваАлексей Викторович Соколов
Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства; Институт экспериментальной медицины; Санкт-Петербургский государственный университет
Email: biochemsokolov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-9033-0537
SPIN-код: 7427-7395
д-р биол. наук, заведующий лабораторией биохимической генетики отдела молекулярной генетики, старший научный сотрудник отдела биофизики, профессор кафедры фундаментальных проблем медицины и медицинских технологий
Россия, Москва; Санкт-ПетербургОлег Михайлович Панасенко
Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства; Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
Email: o-panas@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5245-2285
SPIN-код: 3035-6808
д-р биол. наук, профессор, заведующий отделом биофизики; старший научный сотрудник отдела медицинской физики
Россия, МоскваВасилий Николаевич Лазарев
Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства
Email: lazar0@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0042-966X
SPIN-код: 1578-8932
д-р биол. наук, доцент, заведующий отделом клеточной биологии
Россия, МоскваСписок литературы
- Мусин Х.Г. Антимикробные пептиды — потенциальная замена традиционным антибиотикам // Инфекция и иммунитет. 2018. Т. 8, № 3. С. 295–308. doi: 10.15789/2220-7619-2018-3-295-308
- Жаркова М.С., Орлов Д.С., Кокряков В.Н., Шамова О.В. Антимикробные пептиды млекопитающих: классификация, биологическая роль, перспективы практического применения // Вестник Санкт-Петербургского университета. Серия 3. Биология. 2014. № 1. С. 98–114.
- Lei J., Sun L., Huang S. et al. The antimicrobial peptides and their potential clinical applications // Am. J. Transl. Res. 2019. Vol. 11, No. 7. P. 3919–3931.
- Mahlapuu M., Håkansson J., Ringstad L., Björn C. Antimicrobial peptides: an emerging category of therapeutic agents // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2016. Vol. 6. P. 194. doi: 10.3389/fcimb.2016.00194
- Huerta-Cantillo J., Navarro-García F. Properties and design of antimicrobial peptides as potential tools against pathogens and malignant cells // Investigación en Discapacidad. 2016. Vol. 5, No. 2. P. 96–115.
- Павлова И.Б., Юдина Т.Г., Баскова И.П. и др. Изучение перспектив использования секрета слюнных клеток медицинской пиявки Hirudo medicinalis и препарата «Пиявит» как антимикробных комплексов, не вызывающих резистентности у микроорганизмов // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2–3. С. 252.
- Баскова И.П., Харитонова О.В., Завалова Л.Л. Лизоцимная активность секрета слюнных желез медицинской пиявки видов: H. verbana, H. medicinalis и H. orientalis // Биомедицинская химия. 2011. Т. 57, № 5. C. 511–518. doi: 10.18097/pbmc20115705511
- Grafskaia E.N., Nadezhdin K.D., Talyzina I.A. et al. Medicinal leech antimicrobial peptides lacking toxicity represent a promising alternative strategy to combat antibiotic-resistant pathogens // Eur. J. Med. Chem. 2019. Vol. 180. P. 143–153. doi: 10.1016/j.ejmech.2019.06.080
- Шамова О.В., Сакута Г.А., Орлов Д.С. и др. Действие антимикробных пептидов из нейтрофильных гранулоцитов на опухолевые и нормальные клетки в культуре // Цитология. 2007. Т. 49, № 12. С. 1000–1010.
- Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А. и др. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 2 // Инфекция и иммунитет. 2018. Т. 8, № 1. С. 7–18. doi: 10.15789/2220-7619-2018-1-7-18
- Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А. и др. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 1 // Инфекция и иммунитет. 2017. Т. 7, № 3. С. 219–230. doi: 10.15789/2220-7619-2017-3-219-230
- Panyutich A.V., Hiemstra P.S., van Wetering S., Ganz T. Human neutrophil defensin and serpins form complexes and inactivate each other // Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 1995. Vol. 12, No. 3. P. 351–357. doi: 10.1165/ajrcmb.12.3.7873202
- Шамова О.В., Орлов Д.С., Ямщикова Е.В. и др. Изучение взаимодействия антимикробных пептидов с белками из семейства ингибиторов сериновых протеиназ // Фундаментальные исследования. 2011. № 9–2. С. 344–348.
- Vissers M.C., Winterbourn C.C. Myeloperoxidase-dependent oxidative inactivation of neutrophil neutral proteinases and microbicidal enzymes // Biochem. J. 1987. Vol. 245, No. 1. P. 277–280. doi: 10.1042/bj2450277
- Hawkins C.L., Davies M.J. Inactivation of protease inhibitors and lysozyme by hypochlorous acid: role of side-chain oxidation and protein unfolding in loss of biological function // Chem. Res. Toxicol. 2005. Vol. 18, No. 10. P. 1600–1610. doi: 10.1021/tx050207b
- Vakhrusheva T.V., Grigorieva D.V., Gorudko I.V. et al. Enzymatic and bactericidal activity of myeloperoxidase in conditions of halogenative stress // Biochem. Cell. Biol. 2018. Vol. 96, No. 5. P. 580–591. doi: 10.1139/bcb-2017-0292
- Терехова М.С., Горудко И.В., Григорьева Д.В. и др. Железосвязывающая способность лактоферрина при воспалении // Доклады БГУИР. 2018. № 7(117). С. 80–84.
- Григорьева Д.В., Горудко И.В., Костевич В.А. и др. Экзоцитоз миелопероксидазы при активации нейтрофилов в присутствии гепарина // Биомедицинская химия. 2018. Т. 64, № 1. С. 16–22. doi: 10.18097/PBMC20186401016
- Sokolov A.V., Ageeva K.V., Kostevich V.A. et al. Study of interaction of ceruloplasmin with serprocidins // Biochemistry (Mosc). 2010. Vol. 75, No. 11. P. 1361–1367. doi: 10.1134/S0006297910110076
- Sokolov A.V., Kostevich V.A., Zakharova E.T. et al. Interaction of ceruloplasmin with eosinophil peroxidase as compared to its interplay with myeloperoxidase: reciprocal effect on enzymatic properties // Free Radic. Res. 2015. Vol. 49, No. 6. P. 800–811. doi: 10.3109/10715762.2015.1005615
- Semak I., Budzevich A., Maliushkova E. et al. Development of dairy herd of transgenic goats as biofactory for large-scale production of biologically active recombinant human lactoferrin // Transgenic Res. 2019. Vol. 28, No. 5–6. P. 465–478. doi: 10.1007/s11248-019-00165-y
- Лукашевич В.С., Будевич А.И., Семак И.В. и др. Получение рекомбинантного лактоферрина человека из молока коз-продуцентов и его физиологические эффекты // Доклады НАН Беларуси. 2016. Т. 60, № 1. С. 72–81.
- Горудко И.В., Черкалина О.С., Соколов А.В. и др. Новые подходы к определению концентрации и пероксидазной активности миелопероксидазы в плазме крови человека // Биоорганическая химия. 2009. Т. 35, № 5. С. 629–639. doi: 10.1134/s1068162009050057
- Григорьева Д.В., Горудко И.В., Соколов А.В. и др. Миелопероксидаза стимулирует дегрануляцию нейтрофилов // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2016. Т. 161, № 4. С. 483–488. doi: 10.1007/s10517-016-3446-7
- Panasenko O.M., Gorudko I.V., Sokolov A.V. Hypochlorous acid as a precursor of free radicals in living systems // Biochemistry (Mosc). 2013. Vol. 78, No. 13. P. 1466–1489. doi: 10.1134/S0006297913130075
- Панасенко О.М., Сергиенко В.И. Галогенирующий стресс и его биомаркеры // Вестник Российской академии медицинских наук. 2010. № 1. С. 27–39.
- Golenkina E.A., Livenskyi A.D., Viryasova G.M. et al. Ceruloplasmin-derived peptide is the strongest regulator of oxidative stress and leukotriene synthesis in neutrophils // Biochem. Cell. Biol. 2017. Vol. 95, No. 3. P. 445–449. doi: 10.1139/bcb-2016-0180
- Jugniot N., Voisin P., Bentaher A., Mellet P. Neutrophil elastase activity imaging: recent approaches in the design and applications of activity-based probes and substrate-based probes // Contrast Media Mol. Imaging. 2019. Vol. 2019. P. 7417192. doi: 10.1155/2019/7417192
- Парамонова Н.С., Гурина Л.Н., Волкова О.А. и др. Состояние эластаза-ингибиторной системы у детей в норме и при отдельных патологических состояниях. Гродно, 2017.
- Kell D.B., Heyden E.L., Pretorius E. The biology of lactoferrin, an iron-binding protein that can help defend against viruses and bacteria // Front. Immunol. 2020. Vol. 11. P. 1221. doi: 10.3389/fimmu.2020.01221
- Борзенкова Н.В., Балабушевич Н.Г., Ларионова Н.И. Лактоферрин: физико-химические свойства, биологические функции, системы доставки, лекарственные препараты и биологически активные добавки (обзор) // Биофармацевтический журнал. 2010. Т. 2, № 3. С. 3–19.
- Калюжин О.В. Антибактериальные, противогрибковые, противовирусные и иммуномодулирующие эффекты лизоцима: от механизмов к фармакологическому применению [Электронный ресурс]. Эффективная фармакотерапия. Педиатрия. № 1. 2018. Режим доступа: https://umedp.ru/articles/antibakterialnye_protivogribkovye_protivovirusnye_i_immunomoduliruyushchie_effekty_lizotsima_ot_mekh.html. Дата обращения: 22.08.2021.
- Гончарова А.И., Земко В.Ю., Окулич В.К. Определение лизоцима с использованием пептидогликана из клеточной стенки культуры Micrococcus lysodeikticus // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2018. № 1. С. 48–55.
Дополнительные файлы
