Сравнение цитометрических методов оценки жизнеспособности нативных и криоконсервированных сперматозоидов человека
- Авторы: Доценко А.А.1, Серебрякова М.К.1, Кудрявцев И.В.1, Сухачев А.Н.1, Полевщиков А.В.1
-
Учреждения:
- Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
- Выпуск: Том 20, № 1 (2020)
- Страницы: 83-92
- Раздел: Новые технологии
- URL: https://journals.rcsi.science/MAJ/article/view/19286
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ19286
- ID: 19286
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель исследования заключалась в сопоставлении с использованием метода проточной цитометрии способности различных сред для криоконсервации сперматозоидов обеспечивать их жизнеспособность после размораживания и оценке возможности использования лектина луковиц нарцисса ложного (Narcissus pseudonarcissus) для определения жизнеспособности нативных и криоконсервированных сперматозоидов человека.
Материалы и методы. Исcледовали эякулят 54 мужчин в возрасте от 26 до 47 лет, проходивших лечение по поводу бесплодия. Контролем служил нативный эякулят, который также использовали для процедуры экстракорпорального оплодотворения. Четыре параллельных образца замораживали с применением различных коммерческих сред. После хранения и размораживания жизнеспособность сперматозоидов оценивали методом проточной цитометрии с помощью трех витальных красителей и меченого лектина луковиц нарцисса ложного.
Результаты. Все красители показали, что криоконсервация приводит к двукратному снижению жизнеспособности сперматозоидов, причиной которого является изменение состава и свойств поверхностного аппарата клетки, снижение потенциала ее митохондрии, повреждение акросомального комплекса и ядра. Наименьшее снижение жизнеспособности сперматозоидов было отмечено для усовершенствованной для заморозки спермы среды Квина.
Заключение. Проточная цитометрия позволяет с высокой эффективностью оценить жизнеспособность сперматозоидов в рамках проведения экстракорпорального оплодотворения. Результаты оценки жизнеспособности, полученные с применением лектина нарцисса, позволяют наиболее точно предсказать результат экстракорпорального оплодотворения.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Анна Андреевна Доценко
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: annadotsenkoem@gmail.com
соискатель отдела иммунологии; руководитель лаборатории клинической эмбриологии Отделения вспомогательных репродуктивных технологий
Россия, Санкт-ПетербургМария Константиновна Серебрякова
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: m-serebryakova@yandex.ru
научный сотрудник отдела иммунологии
Россия, Санкт-ПетербургИгорь Владимирович Кудрявцев
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: igorek1981@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7204-7850
SPIN-код: 4903-7636
канд. биол. наук, заведующий лабораторией иммунорегуляции
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Николаевич Сухачев
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: 3606940@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3458-2331
SPIN-код: 8704-3466
канд. биол. наук, научный сотрудник отдела иммунологии
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Витальевич Полевщиков
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Автор, ответственный за переписку.
Email: ALEXPOL512@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3342-178X
SPIN-код: 9627-6694
ResearcherId: H-9530-2014
д-р биол. наук, профессор, заведующий отделом иммунологии
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Suarez SS, Pacey AA. Sperm transport in the female reproductive tract. Hum Reprod Update. 2006;12(1):23-37. https://doi.org/10.1093/humupd/dmi047.
- World Health Organization, Department of Reproductive Health and Research. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. Geneva: WHO; 2010. 287 p.
- Björndahl L, Söderlund I, Kvist U. Evaluation of the one-step eosin-nigrosin staining technique for human sperm vitality assessment. Hum Reprod. 2003;18(4):813-816. https://doi.org/10.1093/humrep/deg199.
- Björndahl L, Söderlund I, Johansson S, et al. Why the WHO recommendations for eosin-nigrosin staining techniques for human sperm vitality assessment must change. J Androl. 2004;25(5):671-678. https://doi.org/10.1002/ j.1939-4640.2004.tb02839.x
- Jeyendran RS, Van der Ven HH, Perez-Pelaez M, et al. Development of an assay to assess the functional integrity of the human sperm membrane and its relationship to other semen characteristics. J Reprod Fertil. 1984;70(1):219-228. https://doi.org/10.1530/jrf.0.0700219.
- Hossain AM, Rizk B, Barik S, et al. Time course of hypo-osmotic swellings of human spermatozoa: evidence of ordered transition between swelling subtypes. Hum Reprod. 1998;13(6):1578-1583. https://doi.org/10.1093/humrep/ 13.6.1578.
- Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. – Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2018. [Zurochka AV, Khaydukov SV, Kudryavtsev IV, Chereshnev VA. Protochnaya tsitometriya v biomeditsinskikh issledovaniyakh. Ekaterinburg: RIO UrO RAN; 2018. (In Russ.)]
- Batisse C, Marquet J, Greffard A, et al. Lectin-based three-color flow cytometric approach for studying cell surface glycosylation changes that occur during apoptosis. Cytometry A. 2004;62(2):81-88. https://doi.org/10.1002/cyto. a.20094.
- Серебрякова М.К., Доценко А.А., Кудрявцев И.В., Полевщиков А.В. Скрининг панели лектинов для оценки стадий апоптоза тимоцитов мыши // Медицинский академический журнал. – 2019. – Т. 19. – № 3. – С. 57–70. [Serebriakova MK, Dotsenko AA, Kudryavtsev IV, Polevshchikov AV. Lectin panel screening for evaluating of murine thymocytes apoptosis stages. Medical academic journal. 2019;19(3):57-70. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17816/MAJ19357-70.
- Castedo M, Ferri K, Roumier T, et al. Quantitation of mitochondrial alterations associated with apoptosis. J Immunol Methods. 2002;265(1-2):39-47. https://doi.org/10.1016/s0022-1759(02)00069-8.
- Mindukshev I, Kudryavtsev I, Serebriakova M, et al. Chapter 24 – Flow cytometry and light scattering technique in evaluation of nutraceuticals. In: Nutraceuticals: Efficacy, Safety and Toxicity. Elsevier; 2016. P. 319-332. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-802147-7.00024-3.
- Wlodkowic D, Skommer J, Darzynkiewicz Z. SYTO probes in the cytometry of tumor cell death. Cytometry A. 2008;73(6):496-507. https://doi.org/10.1002/cyto.a.20535.
- Кудрявцев И.В., Головкин А.С., Зурочка А.В., Хайдуков С.В. Современные методы и подходы к изучению апоптоза в экспериментальной биологии // Медицинская иммунология. – 2012. – Т. 14. – № 6. – С. 461–482. [Kudravtsev IV, Golovkin AS, Zurochka AV, Khaidukov SV. Modern technologies and approaches to apoptosis studies in experimental biology. Medical Immunology (Russia). 2012;14(6):461-482. (In Russ.)]. https://doi.org/ 10.15789/1563-0625-2012-6-461-482.
- Патент РФ на изобретение № 2689791/ 29.05.18. Доценко А.А., Кудрявцев И.В., Серебрякова М.В., Полевщиков А.В. Способ определения жизнеспособности сперматозоидов человека. [Patent RUS No 2689791/ 29.05.10. Dotsenko AA, Kudryavtsev IV, Serebryakova MV, Polevshchikov AV. Sposob opredeleniya zhiznesposobnosti spermatozoidov cheloveka. (In Russ.)]
- Glantz SA. Primer of Biostatistics. 7th ed. New York: McGraw-Hill; 2011.
- Petri A, Sabin C. Medical statistics at a glance 3rd ed. London: Wiley-Blackwell; 2013.
- Плавинский С.Л. Биостатистика: планирование, обработка и представление результатов биомедицинских исследований при помощи системы SAS. – СПб.: СПбМАПО, 2005. [Plavinskiy SL. Biostatistika: planirovanie, obrabotka i predstavlenie rezul’tatov biomeditsinskikh issledovaniy pri pomoshchi sistemy SAS. Saint Petersburg: SPbMAPO; 2005. (In Russ.)]
- Зайцев В.М., Лифляндский В.Г., Маринкин В.И. Прикладная медицинская статистика. – М.: Фолиант, 2006. [Zaytsev VM, Liflyandskiy VG, Marinkin VI. Prikladnaya meditsinskaya statistika. Moscow: Foliant, 2006. (In Russ.)]
- Наследов А.Д. SPSS 19: профессиональный статистический анализ данных. – СПб.: Питер, 2011. [Nasledov AD. SPSS 19: professional’nyy statisticheskiy analiz dannykh. Saint Petersburg: Piter; 2011. (In Russ.)]
- Aitken RJ, Gibb Z, Mitchell LA, et al. Sperm motility is lost in vitro as a consequence of mitochondrial free radical production and the generation of electrophilic aldehydes but can be significantly rescued by the presence of nucleophilic thiols. Biol Reprod. 2012;87(5):110. https://doi.org/10.1095/biolreprod.112.102020.
- Castro LS, Hamilton TRS, Mendes CM, et al. Sperm cryodamage occurs after rapid freezing phase: flow cytometry approach and antioxidant enzymes activity at different stages of cryopreservation. J Anim Sci Biotechnol. 2016;7:17. https://doi.org/10.1186/s40104-016-0076-x.
- Duru NK, Morshedi M, Schuffner A, Oehninger S. Cryopreservation-thawing of fractionated human spermatozoa and plasma membrane translocation of phosphatidylserine. Fertil Steril. 2001;75(2):263-268. https://doi.org/10.1016/s0015-0282(00)01694-0.
Дополнительные файлы
