Исследование функциональной роли in vivo мутаций в ВТВ домене белка СР190 Drosophila melanogaster

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Транскрипционный фактор СР190 дрозофилы является одним из ключевых белков, определяющих активность промоторов генов домашнего хозяйства и инсуляторов. CP190 имеет N-концевой ВТВ домен, обеспечивающий димеризацию. Большая часть из известных архитектурных белков дрозофилы взаимодействуют с гидрофобной пептид-связывающей бороздкой в ВТВ домене, что, как предполагается, является одним из механизмов привлечения СР190 на регуляторные элементы. Для исследования роли ВТВ домена во взаимодействии с архитектурными белками были получены трансгенные линии, экспрессирующие варианты СР190 с мутациями в пептид-связывающей бороздке, что нарушает их взаимодействие с архитектурными белками. В результате проведенных исследований было выяснено, что мутации в ВТВ домене не влияют на связывание белка СР190 с политенными хромосомами. Таким образом, наши исследования подтверждают полученные ранее данные о том, что СР190 привлекается на регуляторные элементы при помощи нескольких транскрипционных факторов, взаимодействующих помимо ВТВ с другими доменами СР190.

Об авторах

А. А. Федотова

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)

Email: bonchuk_a@genebiology.ru
Россия, Москва

П. Г. Георгиев

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)

Email: bonchuk_a@genebiology.ru
Россия, Москва

А. Н. Бончук

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)

Автор, ответственный за переписку.
Email: bonchuk_a@genebiology.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Kyrchanova O., Georgiev P. // Int J Mol Sci. 2021. V. 22. № 2. P. 671.
  2. Pai C.Y., Lei E.P., Ghosh D., Corces V.G. // Mol. Cell. 2004. V. 16. P. 737–748.
  3. Cubenas-Potts C., Rowley M.J., Lyu X., et al. // Nucleic Acids Res. 2017. V. 45. № 4. P. 1714–1730.
  4. Bartkuhn M., Straub T., Herold M., et al. // EMBO J. 2009. V. 28. P. 877–888.
  5. Sabirov M., Kyrchanova O., Pokholkova G., et al. // Epigenetics Chromatin. 2021. V. 22. № 14 (1). P. 16.
  6. Plevock K.M., Galletta B.J., Slep K.C., Rusan N.M. // PLoS One. 2015. V. 10. e0144174.
  7. Bonchuk A., Denisov S., Georgiev P., Maksimenko O. // J Mol Biol. 2011. V. 23. № 412 (3). P. 423–36.
  8. Oliver D., Sheehan B., South H. et al. // BMC Cell Biol. 2010. V. 11. P. 101.
  9. Maksimenko O., Bartkuhn M., Stakhov V. et al. // Genome Res. 2015. V. 25. P. 89–99.
  10. Kyrchanova O., Klimenko N., Postika N., et al. // Biochim Biophys Acta Gene Regul Mech. 2021. V. 1864. № 10. 194733.
  11. Melnikova L., Kostyuchenko M., Molodina V., et al. // Chromosoma. 2018. V. 127. № 1. P. 59–71.
  12. Bag I., Chen S., Rosin L.F., et al. // Nat. Commun. 2021. V. 12. P. 4170.
  13. Sabirov M., Popovich A., Boyko K., et al. // Int J Mol Sci. 2021. V. 22. № 22. 12400.
  14. Ahmad K., Melnick A., Lax S., et al. // Mol. Cell. 2003. V. 12. P. 1551–1564.
  15. Ghetu A., Corcoran C., Cerchietti L., et al. // Mol. Cell. 2008. V. 29. P. 384–391.
  16. Bischof J., Maeda R., Hediger M., et al. // Proc Natl Acad Sci U S A. 2007. V. 27. № 104 (9). P. 3312–7.
  17. Butcher R., Chodagam S., Basto R., et al. // J Cell Sci. 2004. V. 117. Pt. 7. P. 1191–9.
  18. Demakova O., Demakov S., Boldyreva L., et al. // Chromosoma. 2020. V. 129. № 1. P. 25–44.
  19. Zykova T., Levitsky V., Belyaeva E., et al. // Curr. Genomics. 2018. V. 19. № 3. P. 179–191.
  20. Bertolini M. et al. // Science. 2021. V. 371. P. 57–64.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.


© А.А. Федотова, П.Г. Георгиев, А.Н. Бончук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах