ИЗОЛИКВИРИТИГЕНИН ВЛИЯЕТ НА ФУНКЦИИ ФАГОЦИТОВ И ПОВЫШАЕТ ВЫЖИВАЕМОСТЬ МЫШЕЙ ПРИ СТАФИЛОКОККОВОЙ ИНФЕКЦИИ


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В данной статье представлены результаты изучения влияния изоликвиритигенина на выживаемость животных в модели стафилококковой инфекции и функции фагоцитов человека и животных.Цель. Изучить влияние предварительного введения изоликвиритигенина на выживаемость животных на фоне стафилококковой инфекции, а также на функции фагоцитов мышей и человека.Материалы и методы. Для оценки выживаемости мышей линии Balb/C использовали модель инфекции, вызванной Staphylococcus aureus J49 ATCC 25923, с построением кривых Каплан-Мейера. Влияние на функции фагоцитов изучали, оценивая пептон-индуцированную миграцию фагоцитов в брюшную полость мышей Balb/C, поглотительную активность фагоцитов (нейтрофилами и моноцитами) крови человека, а также продукцию ими активных форм кислорода с помощью проточной цитометрии.Результаты. Установлено, что предварительное трехкратное внутрибрюшинное введение изоликвиритигенина (30 мг/кг) увеличивает выживаемость мышей Balb/C при стафилококковой инфекции, вызванной Staphylococcus aureus J49 ATCC 25923. При этом изоликвиритигенин дозозависимо активирует продукцию активных форм кислорода нейтрофилами и моноцитами крови человека, статистически значимо не подавляя фагоцитарную активность моноцитов и нейтрофилов в отношении флюоресцеинизотиоцианат-меченого S. aureus J 49 ATCC 25923, а также пептон-индуцированную миграцию фагоцитов в брюшную полость мышей.Заключение. Таким образом, предварительное введение изоликвиритигенина повышает выживаемость мышей при стафилококковой инфекции и увеличивает продукцию активных форм кислорода фагоцитами. Полученные данные могут стать основой для дальнейшего исследования антибактериальных и иммунотропных эффектов изоликвиритигенина с целью изыскания новых лекарственных средств для лечения стафилококковой инфекции.

Об авторах

Е. А. Солёнова

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Чувашский государственный университет им. И.Н. Ульянова»

Email: elensoul@mail.ru
428015, Россия, Чувашская Республика, г. Чебоксары, пр-т. Московский, д. 15

С. И. Павлова

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Чувашский государственный университет им. И.Н. Ульянова»

Email: flavonoid@yandex.ru
428015, Россия, Чувашская Республика, г. Чебоксары, пр-т. Московский, д. 15

Список литературы

  1. Medzhitov R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response // Nature. - 2007. - Vol. 449, No. 7164. - P. 819-826. doi: 10.1038/nature06246.
  2. Солёнова Е.А., Павлова С.И. Антибактериальные и иммуномодулирующие эффекты флавоноидов // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 2020. - Т.83, №10. - С. 33-39. doi: 10.30906/0869-2092-2020-83-10-33-39
  3. Павлова С.И., Албегова Д.З., Кягова А.А., Козлов И.Г. Механизмы иммуносупрессивной активности флавоноидов корня солодки при контактной чувствительности у мышей: угнетение функций Т-лимфоцитов-эффекторов опосредуется неэффекторными клетками // Медицинская иммунология. - 2010. - Т. 12, № 6. - С. 503-510. doi: 10.15789/1563-0625-2010-6-503-510.
  4. Павлова С.И., Албегова Д.З., Дмитриева Н.В., Дибирова Г.О., Козлов И.Г. Флавоноиды корня солодки влияют на функции активированных Т-лимфоцитов мыши и человека // Российский иммунологический журнал. - 2011. - Т. 5, № 14. - С. 62-68.
  5. Солёнова Е.А., Павлова С.И. Антибактериальные и иммунотропные свойства изоликвиритигенина при генерализованной стафилококковой инфекции у мышей // Фармация и фармакология. - 2020. - Vol.8, No.3. - P.78-85. doi: 10.19163/2307-9266-2020-8-3-78-85.
  6. Percie du Sert N., Hurst V., Ahluwalia A., Alam S., Avey M.T., Baker M., Browne W.J., Clark A., Cuthill I.C., Dirnagl U., Emerson M., Garner P., Holgate S.T., Howells D.W., Karp N.A., Lazic S.E., Lidster K., MacCallum C.J., Macleod M., Pearl E.J., Petersen O., Rawle F., Peynolds P., Rooney K., Sena E.S., Silberberg S.D., Steckler T., Wurbel H. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research // PLoS Biol. 2020. - Vol.18, No.7. - e3000410. doi: 10.1371/journal.pbio.3000410.
  7. Lehmann A. K., Sornes S., Halstensen A. Phagocytosis: measurement by flow cytometry // J Immunol Methods. - 2000. - Vol. 243, No. 1-2. - P. 229-242. doi: 10.1016/s0022-1759(00)00237-4.
  8. Miyazaki S., Ishikawa F., Fujikawa T., Nagata S., Yamaguchi K. Intraperitoneal Injection of Lipopolysaccharide Induces Dynamic Migration of Gr-1high Polymorphonuclear Neutrophils in the Murine Abdominal Cavity // Clinical Diagn Lab Immunol. - 2004. - Vol.11, No.3. - P.452-457.doi: 10.1128/CDLI.11.3.452-457.2004.
  9. Qiao H., Zhang X., Wang T., Liang L., Chang W., Xia H. Pharmacokinetics, biodistribution and bioavailability of isoliquiritigenin after intravenous and oral administration // Comparative Study Pharm Biol. - 2014. - Vol. 52, No.2. - P.228-236. doi: 10.3109/13880209.2013.832334.
  10. Han Y.J., Kang B., Yang E.-J., Choi M.-K., I.-S. Song . Simultaneous Determination and Pharmacokinetic Characterization of Glycyrrhizin, Isoliquiritigenin, Liquiritigenin, and Liquiritin in Rat Plasma Following Oral Administration of Glycyrrhizae Radix Extract // Molecules. - 2019. - Vol. 24, No. 9. - P. 1816. DOI: 0.3390/molecules24091816.
  11. Yang Y., BazhinA.V., Werner J., Karakhanova S. Reactive oxygen species in the immune system // Int Rev Immunol. - 2013. - Vol. 32, No.3. - P. 249-270. doi: 10.3109/08830185.2012.755176.
  12. Preiser J.-C. Oxidative stress //JPEN J Parenter Enteral Nutr. - 2012. - Vol. 36, No.2. - Р. 147-154.doi: 10.1177/0148607111434963.
  13. Segal A.W. How neutrophils kill microbes // Annu Rev Immunol. - 2005. - Vol. 23. - P. 197-223. doi: 10.1146/annurev.immunol.23.021704.115653.
  14. Tauber A.I., Brettler D.B., Kennington E.A., Blumberg P. M. Relation of Human Neutrophil Phorbol Ester Receptor Occupancy and NADPH-Oxidase Activity //Blood. - 1982. - Vol. 60, No.2. - P. 333-339.
  15. Winterbourn С.С. Reconciling the chemistry and biology of reactive oxygen species //Nat Chem Biol. - 2008. - Vol. 4, No.5. - P. 278-286.doi: 10.1038/nchembio.85.
  16. Delgado-Rizo V., Martínez-Guzmán M.A., Iñiguez-Gutierrez L., García-Orozco A., Alvarado-Navarro A., Fafutis-Morris M. Neutrophil Extracellular Traps and Its Implications in Inflammation: An Overview //Front Immunol. - 2017. - Vol. 8, No.81. doi: 10.3389/fimmu.2017.00081.
  17. Vong L., Lorentz R.J., Assa A., Glogauer M., Sherman P.M. Probiotic Lactobacillus rhamnosus inhibits the formation of neutrophil extracellular traps // J Immunol. - 2014. - Vol. 192. - P. 1870-1877. doi: 10.4049/jimmunol.1302286.
  18. Fadini G.P., Menegazzo L., Rigato M., Scattolini V., Poncina N., Bruttocao A., Ciciliot S., Mammano F., Ciubotaru C.D., Brocco E., Marescotti M.C., Cappellari R., Arrigoni G., Millioni R., Vigili de Kreutzenberg S., Albiero M., Avogaro A. NETosis delays diabetic wound healing in mice and humans // Diabetes. - 2016. - Vol. 65. - P.1061-1071. doi: 10.2337/db15-0863.
  19. Beiter K., Wartha F., Albiger B., Normark S., Zychlinsky A., Henriques-Normark B. An endonuclease allows Streptococcus pneumoniae to escape from neutrophil extracellular traps // Curr Biol. - 2006. - Vol. 16. - P.401-407. doi: 10.1016/j.cub.2006.01.056.
  20. Kirchner T., Hermann E., Möller S., Klinger M., Solbach W., Laskay T., Behnen M. Flavonoids and 5-aminosalicylic acid inhibit the formation of neutrophil extracellular traps //Mediators Inflamm. - 2013. - Vol.2013. doi: 10.1155/2013/710239.
  21. Yang S.-C., Chen P.-J., Chang S.-H., Weng Y.-T., Chang F.R., Chang K.Y., Chen C.-Y., Kao T.-I., Hwang T.-L. Luteolin attenuates neutrophilic oxidative stress and inflammatory arthritis by inhibiting Raf1 activity // Biochem Pharmacol. - 2018. - Vol. 154. - P. 384-396. doi: 10.1016/j.bcp.2018.06.003.
  22. Vargas J.E., Souto A.A., Pitrez P.M.C., Stein R.T., Porto B.N. Modulatory potential of resveratrol during lung inflammatory disease // Med Hypotheses. - 2016. - Vol. 96. - P. 61-65. doi: 10.1016/j.mehy.2016.09.023.
  23. de la Lastra C.A., Villegas I. Resveratrol as an antioxidant and pro-oxidant agent: mechanisms and clinical implications // Biochemical Society Transactions. 2007. Vol. 35, Pt 5. - P.1156-1560. doi: 10.1042/BST0351156.
  24. Galati G., Sabzevari O., Wilson J. X. , O'Brien P.J. Prooxidant activity and cellular effects of the phenoxyl radicals of dietary flavonoids and other polyphenolics // Toxicology. - 2002. - Vol.177, No.1. - P. 91-104. doi: 10.1016/s0300-483x (02)00198-1.
  25. Madrigal-Perez L.A., Ramos-Gomez M. Resveratrol Inhibition of Cellular Respiration: New Paradigm for an Old Mechanism // Int J Mol Sci. - 2016. - Vol.17, No.3. - P. 368. doi: 10.3390/ijms17030368.
  26. Eghbaliferiz S., Iranshahi M. Prooxidant Activity of Polyphenols, Flavonoids, Anthocyanins and Carotenoids: Updated Review of Mechanisms and Catalyzing Metals // Phytother Res. - 2016. - Vol. 30, No.9. - P. 1379-1391. doi: 10.1002/ptr.5643.
  27. Yuan X., Zhang B., Chen N., Chen X.-Y., Liu L.-L., Zheng Q.-S., Wang Z.P. Isoliquiritigenin treatment induces apoptosis by increasing intracellular ROS levels in HeLa cells //J Asian Nat Prod Res. - 2012. Vol.14, No.8. - P. 789-798. doi: 10.1080/10286020.2012.694873.
  28. Calabrese E.J., Mattson M. P., Calabrese V. Resveratrol commonly displays hormesis: occurrence and biomedical significance // Hum Exp Toxicol. - 2010. - Vol. 29, No.12. - P.980-1015. doi: 10.1177/0960327110383625.

© Солёнова Е.А., Павлова С.И., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах