Сигнальная трансдукция в клетках иммунной системы и роль внеклеточного матрикса при вирусном клещевом энцефалите

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Вирус клещевого энцефалита, представитель рода Orthoflavivirus семейства Flaviviridae является возбудителем клещевого энцефалита. Клещевой энцефалит — нейровирусное заболевание, тяжесть которого варьируется от легкого течения (лихорадочная форма) болезни до тяжелого и опасного для жизни (менингоэнцефалитическая форма или энцефаломиелитическая форма). Вирус клещевого энцефалита распространен в странах Восточной, Центральной, Северной и Западной Европы, а также в Северном Китае, Монголии и России. На эндемичных территориях регистрируется порядка 12 000 случаев клещевого энцефалита в год, что оказывает влияние на социально-экономические факторы и представляет серьезную проблему для общественного здравоохранения. На сегодняшний день только вакцинация является единственной гарантированной мерой специфической профилактики клещевого энцефалита, а способов специфического лечения клещевого энцефалита не существует. Однако инактивированные вакцины, существующие на рынке и применяемые в настоящее время, обладают относительно короткой иммунологической памятью. В последние годы появляется все больше свидетельств о том, что восприимчивость к заболеванию, вызванному вирусом клещевого энцефалита, и тяжесть его течения зависят не только от свойств возбудителя, но и от генетических факторов хозяина. В этом обзоре были обобщены исследования предыдущих лет и предпринята попытка оценки влияния однонуклеотидных полиморфизмов в генах врожденного иммунитета и внеклеточного матрикса на предрасположенность к клещевому энцефалиту. Отмечены следующие маркеры восприимчивости к клещевому энцефалиту: TLR3 rs3775291; DDX58 rs3739674; OAS2 rs1293762; IFIT1 rs304478; CD209 rs2287886; CCR5 CCR5∆32; IL10 rs1800872; ABCB9 rs4148866; COL22A1 rs4909444; MMP9 rs17576. В обзоре приведены результаты исследований, которые подтверждают положение о значительном влиянии врожденного иммунитета при поражении инфекционными заболеваниями, выявлены потенциальные однонуклеотидные полиморфизмы в генах, ответственных за сигнальную иммунную трансдукцию, и оказывающие влияние на восприимчивость или устойчивость к вирусной инвазии. Однако для лучшего понимания необходимы дальнейшие валидированные исследования в более крупных когортах и исследования ассоциаций по всему геному (GWAS). Наличие информации о генетических маркерах, достоверно влияющих на инфицирование клещевым энцефалитом, позволит определять пациентов из группы риска, индивидуализировать вакцинопрофилактику и применять адекватные стратегии терапии в будущем, а также даст новые сведения для понимания патогенеза клещевого энцефалита и взаимодействия хозяин–вирус при инфицировании.

Об авторах

Жанна Павловна Белокрылова

ФГАНУ Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов им. М.П. Чумакова РАН (Институт полиомиелита)

Автор, ответственный за переписку.
Email: jsanchezpimentel@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7801-1840
SPIN-код: 7788-7339

научный сотрудник лаборатории клещевого энцефалита и других вирусных энцефалитов

Россия, Москва

Список литературы

  1. Бархаш А.В., Юрченко А.А., Юдин Н.С., Козлова И.В., Борищук И.А., Смольникова М.В., Зайцева О.И., Позднякова Л.Л., Воевода М.И., Ромащенко А.Г. Связь полиморфизма генов ABCB9 и COL22A1 с предрасположенностью человека к тяжелым формам клещевого энцефалита // Генетика. 2019. Т. 55, № 3. С. 337–347. [Barkhash A.V., Yurchenko A.A., Yudin N.S., Kozlova I.V., Borischuk I.A., Smolnikova M.V., Zaitseva O.I., Pozdnyakova L.L., Voevoda M.I., Romashchenko A.G. Association of ABCB9 and COL22A1 gene polymorphism with human predisposition to severe forms of tick-borne encephalitis. Genetika = Russian Journal of Genetics, 2019, vol. 55, no. 3, pp. 337–347. (In Russ.)] doi: 10.1134/S0016675819030032
  2. Бархаш А.В., Бабенко В.Н., Воевода М.И., Ромащенко А.Г. Полиморфизм генов CD209 и TLR3 в популяциях Северной Евразии // Генетика. 2016. Т. 52, № 6. С. 697–704. [Barkhash A.V., Babenko V.N., Voevoda M.I., Romaschenko A.G. Polymorphism of CD209 and TLR3 genes in populations of North Eurasia. Genetika = Russian Journal of Genetics, 2016, vol. 52, no. 6, pp. 697–704. (In Russ.)] doi: 10.7868/S0016675816040020
  3. Герасимов С.Г., Погодина В.В., Колясникова Н.М., Карань Л.С., Маленко Г.В., Левина Л.С. Взаимодействие сибирского и дальневосточного подтипов вируса клещевого энцефалита при микст-инфекции в организме млекопитающих. Конкуренция подтипов при острой и инаппарантной инфекции // Вопросы вирусологии. 2011. Т. 56, № 3. C. 41–44. [Gerasimov S.G., Pogodina V.V., Kolyasnikova N.M., Karan’ L.S., Malenko G.V., Levina L.S., Gerasimov S.G., Pogodina V.V., Kolyasnikova N.M., Karan L.S., Malenko G.V., Levina L.S. Interaction of the Siberian and Far Eastern subtypes of tick-borne encephalitis virus in mammals with mixed infection. Competition of the subtypes in acute and inapparent infection. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2011, vol. 56, no. 3, pp. 41–44. (In Russ.)]
  4. Злобин В.И., Беликов С.И., Джиоев Ю.П., Демина Т.В., Козлова И.В. Молекулярная эпидемиология клещевого энцефалита // Иркутск: РИО ВСНЦ СО РАМН, 2003. 271 с. [Zlobin V.I., Belikov S.I., Dzhioev Yu.P., Demina T.V., Kozlova I.V. Molecular epidemiology of tick-borne encephalitis. Irkutsk: RIO VSRC SB RAMS, 2003. 271 p. (In Russ.)]
  5. Погодина В.В. Мониторинг популяций вируса клещевого энцефалита и этиологической структуры заболеваемости за 60-летний период // Вопросы вирусологии. 2005. Т. 50, № 3. С. 7–13. [Pogodina V.V. Monitoring of tick-borne encephalitis virus populations and the etiological structure of morbidity over a 60-year period. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2005, vol. 50, no. 3, pp. 7–13. (In Russ.)]
  6. Погодина В.В., Бочкова Н.Г., Карань Л.С., Трухина А.Г., Левина Л.С., Маленко Г.В., Дружинина Т.А., Лукашенко З.С., Дулькейт О.Ф., Платонов А.Е. Сибирский и дальневосточный подтипы вируса клещевого энцефалита в европейских и азиатских регионах России: генетическая и антигенная характеристика штаммов // Вопросы вирусологии. 2004. Т. 49, № 4. С. 20–25. [Pogodina V.V., Bochkova N.G., Karan L.S., Trukhina A.G., Levina L.S., Malenko G.V., Druzhinina T.A., Lukashenko Z.S., Dulkeit O.F., Platonov A.E. The Siberian and Far-Eastern subtypes of tick-borne encephalitis virus registered in Russia’s Asian regions: genetic and antigen characteristic of the strains. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2004, vol. 49, no. 4, pp. 20–25. (In Russ.)]
  7. Погодина В.В., Левина Л.С., Скрынник С.М., Травина Н.С., Карань Л.С., Колясникова Н.М., Кармышева В.Я., Герасимов С.Г., Маленко Г.В., Перминов Л.В., Попов М.А., Бочкова Н.Г. Клещевой энцефалит с молниеносным течением и летальным исходом у многократно вакцинированного пациента // Вопросы вирусологии. 2013. № 2. С. 33–37. [Pogodina V.V., Levina L.S., Skrynnik S.M., Travina N.S., Karan L.S., Kolyasnikova N.M., Karmysheva V.Ya., Gerasimov S.G., Malenko G.V., Perminov L.V., Popov M.A., Bochkova N.G. Tick-borne encephalitis with fulminant course and lethal outcome in patients after plural vaccination. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2013, no. 2, pp. 33–37. (In Russ.)]
  8. Погодина В.В., Щербинина М.С., Колясникова Н.М., Герасимов С.Г., Слезкина Т.В., Санчес-Пиментель Ж.П., Ишмухаметов А.А. Характеристика случаев клещевого энцефалита у вакцинированных // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2019. Т. 18, № 6. С. 90–97. [Pogodina V.V., Scherbinina M.S., Kolyasnikova N.M., Gerasimov S.G., Slezkina T.V., Sanchez-Pimentel J.P., Ishmuhametov A.A. Characteristics of Morbidity of the Tick-Borne Encephalitis in Vaccinated. Epidemiologiya i vaktsinoprofilaktika = Epidemiology and Vaccine Prophylaxis, 2019, vol. 18, no. 6, pp. 90–97. (In Russ.)] doi: 10.31631/2073-3046-2019-18-6-90-97
  9. Abbas Y.M., Pichlmair A., Górna M.W., Superti-Furga G., Nagar B. Structural basis for viral 5’-PPP-RNA recognition by human IFIT proteins. Nature, 2013, vol. 494, no. 7435, pp. 60–64. doi: 10.1038/nature11783
  10. Afroz S., Giddaluru J., Abbas M.M., Khan N. Transcriptome meta-analysis reveals a dysregulation in extra cellular matrix and cell junction associated gene signatures during Dengue virus infection. Sci. Rep., 2016, vol. 6: 33752. doi: 10.1038/srep33752
  11. Alagarasu K., Memane R.S., Shah P.S. Polymorphisms in the retinoic acid-1 like-receptor family of genes and their association with clinical outcome of dengue virus infection. Arch. Virol., 2015, vol. 160, no. 6, pp. 1555–1560. doi: 10.1007/s00705-015-2417-z
  12. Babon J.J., Nicola N.A. The biology and mechanism of action of suppressor of cytokine signaling 3. Growth Factors, 2012, vol. 30, no. 4, pp. 207–219. doi: 10.3109/08977194.2012.687375
  13. Baños-Lara M.R., Ghosh A., Guerrero-Plata A. Critical role of MDA5 in the interferon response induced by human metapneumovirus infection in dendritic cells and in vivo. J. Virol., 2013, vol. 87, no. 2, pp. 1242–1251. doi: 10.1128/JVI.01213-12
  14. Barkhash A.V., Kochneva G.V., Chub E.V., Romaschenko A.G. Single nucleotide polymorphism rs1800872 in the promoter region of the IL10 gene is associated with predisposition to chronic hepatitis C in Russian population. Microbes Infect., 2018, vol. 20, no. 3, pp. 212–216. doi: 10.1016/j.micinf.2017.11.012
  15. Barkhash A.V., Perelygin A.A., Babenko V.N., Brinton M.A., Voevoda M.I. Single nucleotide polymorphism in the promoter region of the CD209 gene is associated with human predisposition to severe forms of tick-borne encephalitis. Antiviral Res., 2012, vol. 93, no. 1, pp. 64–68. doi: 10.1016/j.antiviral.2011.10.017
  16. Barkhash A.V., Perelygin A.A., Babenko V.N., Myasnikova N.G., Pilipenko P.I., Romaschenko A.G., Voevoda M.I., Brinton M.A. Variability in the 2’-5’-Oligoadenylate Synthetase Gene Cluster Is Associated with Human Predisposition to Tick-Borne Encephalitis Virus-Induced Disease. J. Infect. Dis., 2010, vol. 202, no. 12, pp. 1813–1818. doi: 10.1086/657418
  17. Barkhash A.V., Yurchenko A.A., Yudin N.S., Ignatieva E.V., Kozlova I.V., Borishchuk I.A., Pozdnyakova L.L., Voevoda M.I., Romaschenko A.G. A matrix metalloproteinase 9 (MMP9) gene single nucleotide polymorphism is associated with predisposition to tick-borne encephalitis virus-induced severe central nervous system disease. Ticks Tick Borne Dis., 2018, vol. 9, no. 4, pp. 763–767. doi: 10.1016/j.ttbdis.2018.02.010
  18. Charvet B., Guiraud A., Malbouyres M., Zwolanek D., Guillon E., Bretaud S., Monnot C., Schulze J., Bader H.L., Allard B., Koch M., Ruggiero F. Knockdown of col22a1 gene in zebrafish induces a muscular dystrophy by disruption of the myotendinous junction. Development, 2013, vol. 140, no. 22, pp. 4602–4613. doi: 10.1242/dev.096024
  19. Chen Y., Mehmood K., Chang Y.F., Tang Z., Li Y., Zhang H. The molecular mechanisms of glycosaminoglycan biosynthesis regulating chondrogenesis and endochondral ossification. Life Sci., 2023, vol. 335: 122243. doi: 10.1016/j.lfs.2023.122243
  20. Chistiakov D.A. Interferon induced with helicase C domain 1 (IFIH1) and virus-induced autoimmunity: a review. Viral Immunol., 2010, vol. 23, no. 1, pp. 3–15. doi: 10.1089/vim.2009.0071
  21. Choi U.Y., Kang J.-S., Hwang Y.S., Kim Y.-J. Oligoadenylate synthase-like (OASL) proteins: dual functions and associations with diseases. Exp. Mol. Med., 2015, vol. 47, no. 3: e144. doi: 10.1038/emm.2014.110
  22. De Bruijn M., Van der Lely N., Marcelis J., Roks G. ‘Tick-borne’ encephalitis in an immunocompromised patient. Ned. Tijdschr. Geneeskd., 2015, vol. 159: A8604.
  23. Erber W., Schmitt H.-J., Vuković Janković T. Chapter 12a: Epidemiology by country an overview. The TBE book (second edition) / Eds. Dobler G., Erber W., Broker M., Schmitt H.-J. Singapore: Global Health Press, 2019, pp. 212–233.
  24. Fortova A., Barkhash A.V., Pychova M., Krbkova L., Palus M., Salat J., Ruzek D. Genetic polymorphisms in innate immunity genes influence predisposition to tick-borne encephalitis. J. Neurovirol., 2023, vol. 29, no. 6, pp. 699–705. doi: 10.1007/s13365-023-01182-8
  25. Füzik T., Formanová P., Růžek D., Yoshii K., Niedrig M., Plevka P. Structure of tick-borne encephalitis virus and its neutralization by a monoclonal antibody. Nat. Commun., 2018, vol. 9, no. 1: 436. doi: 10.1038/s41467-018-02882-0
  26. Gorman J.A., Hundhausen C., Errett J.S., Stone A.E., Allenspach E.J., Ge Y., Arkatkar T., Clough C., Dai X., Khim S., Pestal K., Liggitt D., Cerosaletti K., Stetson D.B., James R.G., Oukka M., Concannon P., Gale M. Jr., Buckner J.H., Rawlings D.J. The A946T variant of the RNA sensor IFIH1 mediates an interferon program that limits viral infection but increases the risk for autoimmunity. Nat. Immunol., 2017, vol. 18, no. 7, pp. 744–752. doi: 10.1038/ni.3766
  27. Heinz F.X., Mandl C.W. The molecular biology of tick-borne encephalitis virus. APMIS, 1993, vol. 101, no. 10, pp. 735–745. doi: 10.1111/j.1699-0463.1993.tb00174.x
  28. Heinz F.X., Stiasny K., Holzmann H., Grgic-Vitek M., Kriz B., Essl A., Kundi M. Vaccination and tick-borne encephalitis, central Europe. Emerg. Infect. Dis., 2013, vol. 19, no. 1, pp. 69–76. doi: 10.3201/eid1901.120458
  29. Herd C.S., Yu X., Cui Y., Franz A.W.E. Identification of the extracellular metallo-endopeptidases ADAM and ADAMTS in the yellow fever mosquito Aedes aegypti. Insect Biochem. Mol. Biol., 2022, vol. 148: 103815. doi: 10.1016/j.ibmb.2022.103815
  30. Järver P., Dondalska A., Poux C., Sandberg A., Bergenstråhle J., Sköld A.E., Dereuddre-Bosquet N., Martinon F., Pålsson S., Zaghloul E., Brodin D., Sander B., Kim A., Lennox K.A., Behlke M.A., El Andaloussi S., Lehtiö J., Lundeberg J., Le Grand R., Spetz A.L. Single-Stranded Nucleic Acids Regulate TLR3/4/7 Activation through Interference with Clathrin-Mediated Endocytosis. Sci. Rep., 2018, vol. 8: 15841. doi: 10.1038/s41598-018-33960-4
  31. Kemball C.C., Alirezaei M., Whitton J.L. Type B coxsackieviruses and their interactions with the innate and adaptive immune systems. Future Microbiol., 2010, vol. 5, no. 9, pp. 1329–1347. doi: 10.2217/fmb.10.101
  32. Kindberg E., Mickiene A., Ax C., Akerlind B., Vene S., Lindquist L., Lundkvist A., Svensson L. A deletion in the chemokine receptor 5 (CCR5) gene is associated with tick-borne encephalitis. J. Infect. Dis., 2008, vol. 197, no. 2, pp. 266–269. doi: 10.1086/524709
  33. Kindberg E., Vene S., Mickiene A., Lundkvist Å., Lindquist L., Svensson L. A functional Toll-like receptor 3 gene (TLR3) may be a risk factor for tick-borne encephalitis virus (TBEV) infection. J. Infect. Dis., 2011, vol. 203, no. 4, pp. 523–528. doi: 10.1093/infdis/jiq082
  34. King A., Adams M.J., Carstens E.B., Lefkowitz E.J. Virus taxonomy: classification and nomenclature of viruses: Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Amsterdam: Elsevier, 2012, pp. 1003–1020.
  35. Koch M., Schulze J., Hansen U., Ashwodt T., Keene D.R., Brunken W.J., Burgeson R.E., Bruckner P., Bruckner-Tuderman L. A novel marker of tissue junctions, collagen XXII. J. Biol. Chem., 2004, vol. 279, no. 21, pp. 22514–22521. doi: 10.1074/jbc.M400536200
  36. Kong K.F., Delroux K., Wang X., Qian F., Arjona A., Malawista S.E., Fikrig E., Montgomery R.R. Dysregulation of TLR3 impairs the innate immune response to West Nile virus in the elderly. J. Virol., 2008, vol. 82, no. 15, pp. 7613–7623. doi: 10.1128/JVI.00618-08
  37. Kumar H., Kawai T., Akira S. Pathogen Recognition by the Innate Immune System. Int. Rev. Immunol., 2011, vol. 30, no. 1, pp. 16–34. doi: 10.3109/08830185.2010.529976
  38. Kunze U. The international scientific working group on tick-borne encephalitis (ISW TBE): review of 17 years of activity and commitment. Ticks Tick Borne Dis., 2016, vol. 7, no. 3, pp. 399–404. doi: 10.1016/j.ttbdis.2015.12.018
  39. Lenhard T., Ott D., Jakob N.J., Pham M., Bäumer P., Martinez-Torres F., Meyding-Lamadé U. Predictors, Neuroimaging Characteristics and Long-Term Outcome of Severe European Tick-Borne Encephalitis: A Prospective Cohort Study. PLoS One, 2016, vol. 11, no. 4: e0154143. doi: 10.1371/journal.pone.0154143
  40. Lim J.K., Lim J.K., Lisco A., McDermott D.H., Huynh L., Ward J.M., Johnson B., Johnson H., Pape J., Foster G.A., Krysztof D., Follmann D., Stramer S.L., Margolis L.B., Murphy P.M. Genetic variation in OAS1 is a risk factor for initial infection with West Nile virus in man. PLoS Pathog., 2009, vol. 5, no. 2: e1000321. doi: 10.1371/journal.ppat.1000321
  41. Loo Y.M., Fornek J., Crochet N., Bajwa G., Perwitasari O., Martinez-Sobrido L., Akira S., Gill M.A., García-Sastre A., Katze M.G., Gale M. Jr. Distinct RIG-I and MDA5 signaling by RNA viruses in innate immunity. J. Virol., 2008, vol. 82, no. 1, pp. 335–345. doi: 10.1128/JVI.01080-07
  42. Mackenzie J.S., Gubler D.J., Petersen L.R. Emerging flaviviruses: the spread and resurgence of Japanese encephalitis, West Nile and dengue viruses. Nat. Med., 2004, vol. 10, no. 12, pp. 98–109. doi: 10.1038/nm1144
  43. Melik W., Ellencrona K., Wigerius M., Hedström C., Elväng A., Johansson M. Two PDZ binding motifs within NS5 have roles in tick-borne encephalitis virus replication. Virus Res., 2012, vol. 169, no. 1, pp. 54–62. doi: 10.1016/j.virusres.2012.07.001
  44. Mickienė A., Pakalnienė J., Nordgren J., Carlsson B., Hagbom M., Svensson L., Lindquist L. Polymorphisms in chemokine receptor 5 and Toll-like receptor 3 genes are risk factors for clinical tick-borne encephalitis in the Lithuanian population. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 9: e0106798. doi: 10.1371/journal.pone.0106798
  45. Mielcarska M.B., Bossowska-Nowicka M., Toka F.N. Functional failure of TLR3 and its signaling components contribute to herpes simplex encephalitis. J. Neuroimmunol., 2018, vol. 316, no. 15, pp. 65–73. doi: 10.1016/j.jneuroim.2017.12.011
  46. Morozova O.V., Bakhvalova V.N., Potapova O.F., Grishechkina A.E., Isaeva E.I., Aldarov K.V., Klinov D.V., Vorovich M.F. Evaluation of immune response and protective effect of four vaccines against the tick-borne encephalitis virus. Vaccine, 2014, vol. 32, no. 25, pp. 3101–3106. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.02.046
  47. Pabalan N., Chaisri S., Tabunhan S., Phumyen A., Jarjanazi H., Steiner T.S. Associations of DC-SIGN (CD209) promoter –336G/A polymorphism (rs4804803) with dengue infection: A systematic review and meta-analysis. Acta Trop., 2018, vol. 177, pp. 186–193. doi: 10.1016/j.actatropica.2017.10.017
  48. Radzišauskienė D., Žagminas K., Ašoklienė L., Jasionis A., Mameniškienė R., Ambrozaitis A., Jančorienė L., Jatužis D., Petraitytė I., Mockienė E. Epidemiological patterns of tick-borne encephalitis in Lithuania and clinical features in adults in the light of the high incidence in recent years: a retrospective study. Eur. J. Neurol., 2018, vol. 25, no. 2, pp. 268–274. doi: 10.1111/ene.13486
  49. Randall R.E., Goodbourn S. Interferons and viruses: an interplay between induction, signalling, antiviral responses and virus countermeasures. J. Gen. Virol., 2008, vol. 89, no. 1, pp. 1–47. doi: 10.1099/vir.0.83391-0
  50. Ruzek D., Avšič Županc T., Borde J., Chrdle A., Eyer L., Karganova G., Kholodilov I., Knap N., Kozlovskaya L., Matveev A., Miller A.D., Osolodkin D.I., Överby A.K., Tikunova N., Tkachev S., Zajkowska J. Tick-borne encephalitis in Europe and Russia: Review of pathogenesis, clinical features, therapy, and vaccines. Antiviral Res., 2019, vol. 164, pp. 23–51. doi: 10.1016/j.antiviral.2019.01.014
  51. Saito T., Owen D.M., Jiang F., Marcotrigiano J., Gale M. Jr. Innate immunity induced by composition-dependent RIG-I recognition of hepatitis C virus RNA. Nature, 2008, vol. 454, no. 7203, pp. 523–527. doi: 10.1038/nature07106
  52. Selinger M., Věchtová P., Tykalová H., Ošlejšková P., Rumlová M., Štěrba J., Grubhoffer L. Integrative RNA profiling of TBEV-infected neurons and astrocytes reveals potential pathogenic effectors. Comput. Struct. Biotechnol. J., 2022, vol. 20, pp. 2759–2777. doi: 10.1016/j.csbj.2022.05.052
  53. Schindler C., Levy D.E., Decker T. JAK-STAT Signaling: From Interferons to Cytokines. J. Biol. Chem., 2007, vol. 282, no. 28, pp. 20059–20063. doi: 10.1074/jbc.R700016200
  54. Simon-Loriere E., Lin R.J., Kalayanarooj S.M., Chuansumrit A., Casademont I., Lin S.Y., Yu H.P., Lert-Itthiporn W., Chaiyaratana W., Tangthawornchaikul N., Tangnararatchakit K., Vasanawathana S., Chang B.L., Suriyaphol P., Yoksan S., Malasit P., Despres P., Paul R., Lin Y.L., Sakuntabhai A. High Anti-Dengue Virus Activity of the OAS Gene Family Is Associated With Increased Severity of Dengue. J. Infect. Dis., 2015, vol. 212, no. 12, pp. 2011–2020. doi: 10.1093/infdis/jiv321
  55. Slater L., Bartlett N.W., Haas J.J., Zhu J., Message S.D., Walton R.P., Sykes A., Dahdaleh S., Clarke D.L., Belvski M.G., Kon O.M., Fujita T., Jeffery P.K., Johnston S.L., Edwards M.R. Co-ordinated role of TLR3, RIG-I and MDA5 in the innate response to rhinovirus in bronchial epithelium. PLoS Pathog., 2010, vol. 6, no. 11: e1001178. doi: 10.1371/journal.ppat.1001178
  56. Sui L., Zhao Y., Wang W., Chi H., Tian T., Wu P., Zhang J., Zhao Y., Wei Z.K., Hou Z., Zhou G., Wang G., Wang Z., Liu Q. Flavivirus prM interacts with MDA5 and MAVS to inhibit RLR antiviral signaling. Cell Biosci., 2023, vol. 13, no. 1: 9. doi: 10.1186/s13578-023-00957-0
  57. Tang D., Kang R., Coyne C.B., Zeh H.J., Lotze M.T. PAMPs and DAMPs: signal 0s that spur autophagy and immunity. Immunol. Rev., 2012, vol. 249, no. 1, pp. 158–175. doi: 10.1111/j.1600-065X.2012.01146.x
  58. Wang T., Town T., Alexopoulou L., Anderson J.F., Fikrig E., Flavell R.A. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat. Med., 2004, vol. 10, no. 12, pp. 1366–1373. doi: 10.1038/nm1140
  59. Werme K., Wigerius M., Johansson M. Tick-borne encephalitis virus NS5 associates with membrane protein scribble and impairs interferon-stimulated JAKSTAT signalling. Cell Microbiol., 2008, vol. 10, no. 3, pp. 696–712. doi: 10.1111/j.1462-5822.2007.01076.x
  60. Wilhelm S.M., Collier I.E., Marmer B.L., Eisen A.Z., Grant G.A., Goldberg G.I. SV40-transformed human lung fibroblasts secrete a 92-kDa type IV collagenase which is identical to that secreted by normal human macrophages. J. Biol. Chem., 1989, vol. 264, no. 29, pp. 17213–17221. doi: 10.1016/S0021-9258(18)71480-4
  61. Wolf H.M., Thon V., Litzman J., Eibl M.M. Detection of impaired IgG antibody formation facilitates the decision on early immunoglobulin replacement in hypogammaglobulinemic patients. Front. Immunol., 2015, vol. 6: 32. doi: 10.3389/fimmu.2015.00032
  62. Xu J., Dai X., Shang G., Lu S., Yang J. A new subtype of eastern tick-borne encephalitis virus discovered in Qinghai-Tibet Plateau, China. Emerg. Microbes Infect., 2018, vol. 7, no. 1: 74. doi: 10.1038/s41426-018-0081-6
  63. Zaitsev B.N., Benedetti F., Mikhaylov A.G., Korneev D.V., Sekatskii S.K., Karakouz T., Belav P.A., Netesova N.A., Protopopova E.V., Konovalova S.N., Dietler G., Loktev V. Force-induced globule-coil transition in laminin binding protein and its role for viral-cell membrane fusion. J. Mol. Recognit., 2014, vol. 27, no. 12, pp. 727–738. doi: 10.1002/jmr.2345
  64. Zhang D., Zheng N., Liu X. The role and mechanism of NF-κB in viral encephalitis of children. Exp. Ther. Med., 2017, vol. 13, no. 6, pp. 3489–3493. doi: 10.3892/etm.2017.4396

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Белокрылова Ж.П., 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).