Макрофаги в коже: роль в физиологических процессах и в ответе на косметологические процедуры

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Макрофаги представляют собой гетерогенную популяцию иммунных клеток, происходящих преимущественно из костномозговых моноцитов и эмбриональных предшественников эритромиелоидных прогениторов желточного мешка, способных менять фенотип и функции в зависимости от микроокружения. В статье представлен обзор современных сведений о происхождении, строении и функции макрофагов дермы, включая исторические данные о первых наблюдениях И.А.Э. Гезе (1777), подтвержденных В.Ф. фон Гляйхен-Руссвурмом, термина Fresszellen К. Клауса и фагоцитарной теории И.И. Мечникова (1882–1884 гг.) до M1/M2-дихотомии Mills и соавт. (начало 2000-х гг.). Обобщены литературные данные о моноцитарно-макрофагальной системе человека как в норме, так и при патологических состояниях, с учетом гетерогенности моноцитов классических как предшественников тканевых макрофагов, неклассических для эндотелиального гомеостаза, промежуточных и органоспецифических макрофагов клетки Лангерганса в эпидермисе, микроглии центральной нервной системы, клетки Купфера печени. Приведены данные о различных фенотипах макрофагов от провоспалительных M1 с гликолитическим метаболизмом и индуцируемой синтазой оксида азота до репаративных M2 с митохондриальным дыханием и аргиназой-1, их участии в иммунном надзоре, защите кожи, регенерации, ангиогенезе и ремоделировании тканей. Представлен анализ роли макрофагов в ответе на косметологические процедуры – аблятивные и неаблятивные лазеры 10 600 и 1550 нм, микроигольчатый RF, SMAS-лифтинг, инъекции полимолочной кислоты, гидроксиапатита кальция, роли клеток Лангерганса в ответе на внешние стимулы ультрафиолетового облучения, косметики и др., роли макрофагов в развитии фиброза (M1-инициация, M2a-пролиферация, M2c-разрешение, SPP1+ с CXCL4 от тромбоцитов, PRP-гипотеза), регуляции популяции адипоцитов в дермально ассоциированной жировой ткани dWAT, элиминации биоматериалов. Уделено внимание резидентным макрофагам дермы, расположенным периваскулярно и периневрально в сосочковом и сетчатом слоях, их способности к пролиферации in situ для поддержания гомеостаза, синтеза ферментов коллагеназ, эластаз, гиалуронидазы и цитокинов, регулирующих функции клеток дермы и эпидермиса.

Об авторах

Леся Васильевна Кирсанова

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России; Институт красоты «Галактика»; Клиника косметологии Candela

Автор, ответственный за переписку.
Email: lvkirsanova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-4038-5630

канд. мед. наук, дерматолог амбулаторного отд-ния каф. дерматовенерологии с клиникой, зав. лазерным отд-нием, гл. врач

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Елена Роальдовна Аравийская

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России; Институт красоты «Галактика»

Email: lvkirsanova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6378-8582
SPIN-код: 9094-9688
Scopus Author ID: 56730990100
ResearcherId: AAL-7772-2020

д-р мед. наук, проф., проф. каф. дерматовенерологии с клиникой, эксперт

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Маргарита Григорьевна Рыбакова

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Email: lvkirsanova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8404-1859

д-р мед. наук, проф. каф. патологической анатомии

Россия, Санкт-Петербург

Евгений Владиславович Соколовский

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Email: lvkirsanova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7610-6061
SPIN-код: 6807-7137

д-р мед. наук, зав. каф. дерматовенерологии с клиникой

Россия, Санкт-Петербург

Алексей Игоревич Богатенков

Институт красоты «Галактика»

Email: lvkirsanova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8433-5446

глав. врач

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Stossel TP. On the crawling of animal cells. Science. 1993;260(5111):1086-94. doi: 10.1126/science.8493552
  2. Ельчанинов А.В., Фатхудинов Т.Х. Макрофаги. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2023. doi: 10.33029/9704-7780-9-EAM-2023-1-208
  3. Guan F, Wang R, Yi Z, et al. Tissue macrophages: origin, heterogenity, biological functions, diseases and therapeutic targets. Signal Transduct Target Ther. 2025;10(1):93. doi: 10.1038/s41392-025-02124-y
  4. Быков В.Л. Цитология и общая гистология. Функциональная морфология клеток и тканей человека. Учебник для студентов медицинских институтов. СПб: СОТИС, 2002 [Bykov VL. Tsitologiia i obshchaia gistologiia. Funktsionalnaia morfologiia kletok i tkanei cheloveka. Uchebnik dlia studentov meditsinskikh institutov. Saint Petersburg: SOTIS, 2002 (in Russian)].
  5. Taguchi K, Fukunaga A, Ogura K, Nishigori C. The role of epidermal Langerhans cells in NB-UVB-induced immunosuppression. Kobe J Med Sci. 2013;59(1):E1-9.
  6. Hoeffel G, Ginhoux F. Fetal monocytes and the origins of tissue-resident macrophages. Cell Immunol. 2018;330:5-15. doi: 10.1016/j.cellimm.2018.0
  7. Coillard A, Segura E. In vivo Differentiation of Human Monocytes. Front Immunol. 2019;10:1907. doi: 10.3389/fimmu.2019.01907
  8. Shapouri-Moghaddam A, Mohammadian S, Vazini H, et al. Macrophage plasticity, polarization, and function in health and disease. J Cell Physiol. 2018;233(9):6425-40. doi: 10.1002/jcp.26429
  9. Mills CD, Kincaid K, Alt JM, et al. M-1/M-2 macrophages and the Th1/Th2 paradigm. J Immunol. 2000;164(12):6166-73. doi: 10.4049/jimmunol.164.12.6166
  10. Mantovani A, Sica A. Macrophages, innate immunity and cancer: balance, tolerance, and diversity. Curr Opin Immunol. 2010;22(2):231-7. doi: 10.1016/j.coi.2010.01.009
  11. Nathan CF, Murray HW, Wiebe ME, Rubin BY. Identification of interferon-gamma as the lymphokine that activates human macrophage oxidative metabolism and antimicrobial activity. J Exp Med. 1983;158(3):670-89. doi: 10.1084/jem.158.3.670
  12. Lauterbach MA, Hanke JE, Serefidou M, et al. Toll-like receptor signaling rewires macrophage metabolism and promotes histone acetylation via ATP-citrate lyase. Immunity. 2019;51(6):997-1011.e7. doi: 10.1016/j.immuni.2019.11.009
  13. Murray PJ, Allen JE, Biswas SK, et al. Macrophage activation and polarization: nomenclature and experimental guidelines. Immunity. 2014;41(1):14-20. doi: 10.1016/j.immuni.2014.06.008
  14. Bailey JD, Diotallevi M, Nicol T, et al. Nitric oxide modulates metabolic remodeling in inflammatory macrophages through TCA cycle regulation and itaconate accumulation. Cell Rep. 2019;28(1):218-30.e7. doi: 10.1016/j.celrep.2019.06.018
  15. Van den Bossche J, Baardman J, Otto NA, et al. Mitochondrial dysfunction prevents repolarization of inflammatory macrophages. Cell Rep. 2016;17(3):684-96. doi: 10.1016/j.celrep.2016.09.008
  16. Wculek SK, Dunphy G, Heras-Murillo I, et al. Metabolism of tissue macrophages in homeostasis and pathology. Cell Mol Immunol. 2022;19(3):384-408. doi: 10.1038/s41423-021-00791-9.2021
  17. Yunna C, Mengru H, Lei W, Weidong C. Macrophage M1/M2 polarization. Eur J Pharmacol. 2020;877:173090. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173090
  18. Oren E, Banerji A, Camargo CJr. Vitamin D and atopic disorders in an obese population screened for vitamin D deficiency. J Allergy Clin Immunol. 2008;121(2):533-4. doi: 10.1016/j.jaci.2007.11.005
  19. Stein M, Keshav S, Harris N, Gordon S. Interleukin 4 potently enhances murine macrophage mannose receptor activity: a marker of alternative immunologic macrophage activation. J Exp Med. 1992;176(1):287-92. doi: 10.1084/jem.176.1.287
  20. Vats D, Mukundan L, Odegaard JI, et al. Oxidative metabolism and PGC-1β attenuate macrophage-mediated inflammation. Cell Metab. 2006;4(1):13-24. doi: 10.1016/j.cmet.2006.05.011
  21. Mantovani A, Sozzani S, Locati M, et al. Macrophage polarization: tumor-associated macrophages as a paradigm for polarized M2 mononuclear phagocytes. Trends Immunol. 2002;23(11):549-55. doi: 10.1016/S1471-4906(02)02302-5
  22. Gessain G, Bleriot C, Ginhoux F. Non-genetic Heterogeneity of Macrophages in Diseases – A Medical Perspective. Front Cell Dev Biol. 2020;8:613116. doi: 10.3389/fcell.2020.613116
  23. Cook DN, Nakano H. A new wrinkle for skin dendritic cell migration. Blood. 2021;137(20):2716-7. doi: 10.1182/blood.2020010619
  24. Ginhoux F, Schultze JL, Murray PJ, et al. New insights into the multidimensional concept of macrophage ontogeny, activation and function. Nat Immunol. 2016;17(1):34-40. doi: 10.1038/ni.3324
  25. Yu Y, Yue Z, Xu M, et al. Macrophages play a key role in tissue repair and regeneration. PeerJ. 2022;10:e14053. doi: 10.7717/peerj.14053
  26. Jain N, Moeller J, Vogel V. Mechanobiology of Macrophages: How Physical Factors Coregulate Macrophage Plasticity and Phagocytosis. Annu Rev Biomed Eng. 2019;21:267-97. doi: 10.1146/annurev-bioeng-062117-121224
  27. Hatakeyama M, Fukunaga A, Washio K, et al. Anti-Inflammatory Role of Langerhans Cells and Apoptotic Keratinocytes in Ultraviolet-B-Induced Cutaneous Inflammation. J Immunol. 2017;199(8):2937-47. doi: 10.4049/jimmunol.1601681
  28. Wang K, Wen D, Xu X, et al. Extracellular matrix stiffness – The central cue for skin fibrosis. Front Mol Biosci. 2023;10:1132353. doi: 10.3389/fmolb.2023.1132353
  29. Varga J, Lafyatis R. Etiology and pathogenesis of systemic sclerosis. Rheumatology: Sixth Edition. Elsevier Inc, 2014.
  30. Adhyatmika A, Putri KSS, Beljaars L, Melgert BN. The elusive antifibrotic macrophage. Front Med. 2015;2:81. doi: 10.3389/fmed.2015.00081
  31. Максимова А.А., Шевела Е.Я., Сахно Л.В., и др. Продукция факторов, участвующих в регуляции фиброза, различными типами макрофагов человека. Медицинская иммунология. 2020;22(4):625-32 [Maksimova AA, Shevela EYa, Sakhno LV. Production of factors involved into fibrosis regulation by various types of human macrophages. Medical Immunology. 2020;22(4):625-32 (in Russian)]. doi: 10.15789/1563-0625-POF-1954
  32. Craig VJ, Zhang L, Hagood JS, Owen CA. Matrix metalloproteinases as therapeutic targets for idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2015;53(5):585-600. doi: 10.1165/rcmb.2015-0020TR
  33. Gensel JC, Zhang B. Macrophage activation and its role in repair and pathology after spinal cord injury. Brain Res. 2015;1619:1-11. doi: 10.1016/j.brainres.2014.12.045
  34. Meng XM, Nikolic-Paterson DJ, Lan HY. TGF-β: the master regulator of fibrosis. Nat Rev Nephrol. 2016;12(6):325-38. doi: 10.1038/nrneph.2016.48
  35. Thomas AW, Kevin MV. Macrophages in Tissue Repair, Regeneration, and Fibrosis. Immunity. 2016;44(3):450-62. doi: 10.1016/j.immuni.2016.02.015.
  36. Hoeft K, Schaefer GJL, Kim H, et al. Platelet-instructed SPP1 + macrophages drive myofibroblast activation in fibrosis in a CXCL4-dependent manner. Cell Rep. 2023;42(2):112131. doi: 10.1016/j.celrep.2023.112131
  37. Liu M, Lu F, Feng J. Aging and homeostasis of the hypodermis in the age-related deterioration of skin function. Cell Death Dis. 2024;15(6):443. doi: 10.1038/s41419-024-06818-z
  38. Li Y, Long J, Zhang Z, Yin W. Insights into the unique roles of dermal white adipose tissue (dWAT) in wound healing. Front Physiol. 2024;15:1346612. doi: 10.3389/fphys.2024.1346612
  39. Boschi F, Negri A, Conti A, et al. The human dermal white adipose tissue (dWAT) morphology: A multimodal imaging approach. Ann Anat. 2024;255:152289. doi: 10.1016/j.aanat.2024.152289
  40. Park C, Jarnagin H, Whitfield M, Pioli P. Macrophages Regulate Adipocyte Differentiation and Proliferation in Skin Fibrosis [abstract]. Arthritis Rheumatol. 2023;75 (suppl 9). Available at: https://acrabstracts.org/abstract/macrophages-regulate-adipocyte-differentiation-and-proliferation-in-skin-fibrosis/ Accessed: 05.08.2025.
  41. Мураков С.В., Разумовская Е.А., Захаров Д.Ю., и др. Применение поли-L-молочной кислоты в эстетической медицине. Пластическая хирургия и эстетическая медицина. 2023;4:101-11 [Murakov SV, Razumovskaya EA, Zakharov DYu, et al. Poly-L-lactic acid in aesthetic medicine. Plastic Surgery and Aesthetic Medicine. 2023;(4):101-11 (in Russian)]. doi: 10.17116/plast.hirurgia2023041101
  42. Sheikh Z, Brooks P, Barzilay O. Macrophages, Foreign Body Giant Cells and Their Response to Implantable Biomaterials. Materials (Basel). 2015;8(9):5671-701. doi: 10.3390/ma8095269
  43. Baranov MV, Kumar M, Sacanna S, et al. Modulation of Immune Responses by Particle Size and Shape. Front Immunol. 2021;11:607945. doi: 10.3389/fimmu.2020.607945
  44. Anderson JM, Rodriguez A, Chang DT. Foreign Body Reaction to Biomaterials. Semin Immunol. 2008;20(2):86-100. doi: 10.1016/j.smim.2007.11.004
  45. Hu WJ, Eaton JW, Ugarova TP, Tang L. Molecular basis of biomaterial-mediated foreign body reactions. Blood. 2001;98(4):1231-8. doi: 10.1182/blood.v98.4.1231
  46. Klopfleisch R, Jung F. The pathology of the foreign body reaction against biomaterials. J Biomed Mater Res A. 2017;105(3):927-40. doi: 10.1002/jbm.a.35958
  47. Fitzgerald R, Lawrence MB, David JG, et al. Physiochemical Characteristics of Poly-L-Lactic Acid (PLLA). FACS. Aesthet Surg J. 2018;38(suppl_1):S13-7. doi: 10.1093/asj/sjy01247
  48. Lemperle G, Morhenn V, Charrier U. Human Histology and Persistence of Various Injectable Filler Substances for Soft Tissue Augmentation. Aesth Plast Surg. 2003;27(5):354-66. doi: 10.1007/s00266-003-3022-1
  49. Ray S, Ta H. Investigating the Effect of Biomaterials Such as Poly-(l-Lactic Acid) Particles on Collagen Synthesis In Vitro: Method Is Matter. J Funct Biomater. 2020;11(3):51. doi: 10.3390/jfb11030051
  50. Champion JA, Walker A, Mitragotri S. Role of particle size in phagocytosis of polymeric microspheres. Pharm Res. 2008;25(8):1815-21. doi: 10.1007/s11095-008-9562-y
  51. Champion JA, Mitragotri S. Shape induced inhibition of phagocytosis of polymer particles. Pharm Res. 2009;26(1):244-9. doi: 10.1007/s11095-008-9626-z
  52. Sharma G, Valenta DT, Altman Y, et al. Polymer particle shape independently influences binding and internalization by macrophages. J Control Release. 2010;147(3):408-12. doi: 10.1016/j.jconrel.2010.07.116
  53. Doshi N, Mitragotri S. Macrophages recognize size and shape of their targets. PLoS One. 2010;5(4):e10051. doi: 10.1371/journal.pone.0010051
  54. Могильная Г.М., Фомичева Е.В., Блатт Ю.Е. Иммуногистохимический профиль дермы при введении полимолочной кислоты. Морфологические ведомости. 2020;28(1):23-29 [Mogilnaya GM, Fomicheva EV, Blatt YuE. Immunohistochemical profile of the dermis at the injection of polylactic acid. Morphological newsletter. 2020;28(1):23-9 (in Russian)]. doi: 10.20340/mv-mn.2020.28(1):23-9

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Кирсанова Л.В., Аравийская Е.Р., Рыбакова М.Г., Соколовский Е.В., Богатенков А.И. ООО "Консилиум Медикум", 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).