Ex vivo исследование кинетики оптических свойств тканей яичников под действием 40%-глюкозы

Обложка
  • Авторы: Cелифонов А.А.1, Рыхлов А.С.2, Тучин В.В.3
  • Учреждения:
    1. Образовательно-научный институт наноструктур и биосистем, Саратовский национальный исследовательский государственный университет
    2. Клиника «Ветеринарная больница», Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова
    3. Научный медицинский центр, Саратовский национальный исследовательский государственный университет
  • Выпуск: Том 23, № 2 (2023)
  • Страницы: 120-127
  • Раздел: Статьи
  • URL: https://journals.rcsi.science/1817-3020/article/view/251103
  • DOI: https://doi.org/10.18500/1817-3020-2023-23-2-120-127
  • EDN: https://elibrary.ru/SHGJIM
  • ID: 251103

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Предыстория и цели. Репродуктивная система женщин является предметом разнообразных междисциплинарных исследований во всем мире – это онкологические заболевания, бесплодие неуточненной природы, криоконсервация яичников для сохранения фертильности, совершенствование ранней диагностики заболеваний и др. Выяснение механизмов диффузии тканевой воды и гиперосмотических агентов в тканях лютеиновой фазы яичников, контролируемых ангиогенными факторами роста, может приблизить нас к пониманию биофизических процессов в целом. Материалы и методы. В работе использовались спектроскопия диффузного отражения, модель свободной диффузии и модифицированный закон Бугера–Ламберта–Бера. Результаты. Определены коэффициент диффузии 40%-ной глюкозы/тканевая вода в ткань яичника лютеиновой фазы D и время диффузии τ, которое составило D = (8.6 ± 1.4)×107 см2 /с и τ = 50.4 ± 1.7 мин при толщине образца (0.8 ± 0.1) мм. Определена эффективность оптического просветления тканей яичников кошки при иммерсии 40%-ной глюкозы. Выводы. Исследования показали, что 40%-ная глюкоза является эффективным оптическим просветляющим агентом для местного применения при дифференциации нормальных и патологических тканей яичников и в клинических применениях.

Об авторах

Алексей Андреевич Cелифонов

Образовательно-научный институт наноструктур и биосистем, Саратовский национальный исследовательский государственный университет

Email: skripalav@info.sgu.ru
410012, г. Саратов, ул. Астраханская, д. 83, Россия

Андрей Сергеевич Рыхлов

Клиника «Ветеринарная больница», Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н. И. Вавилова

Email: skripalav@info.sgu.ru
ул. Большая Садовая, 220, Саратов 410012, Россия

Валерий Викторович Тучин

Научный медицинский центр, Саратовский национальный исследовательский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: skripalav@info.sgu.ru
410012, г. Саратов, ул. Астраханская, д. 83, Россия

Список литературы

  1. Pervaiz S., Naeem M., Ali A., John А., Batool N. Frequency of uterine anomalies associated with persistent miscarriages in pregnancy on ultrasound: Uterine anomalies associated with persistent miscarriages. Pakistan Journal of Health Sciences, 2022, vol. 4, pp. 55–58. https://doi.org/10.54393/pjhs.v3i01.54
  2. Tuchin V. V. Tissue Optics: Light Scattering Methods and Instruments for Medical Diagnostics. 3rd ed. Bellingham, SPIE Press, 2015. 988 p.
  3. Nian L., Yang D-H., Zhang J., Zhao H., Zhu C-F., Dong M-F., Ai Y. Analysis of the clinical efficacy of laparoscopy and hysteroscopy in the treatment of tubal-factor infertility. Front. Med., 2021, vol. 7, article no. 712222. https://doi.org/10.3389/fmed.2021.712222
  4. Khan M. H., Choi B., Chess S., Kelly K. M., McCullough D., Nelson D. S. Optical clearing of in vivo human skin: Implications for light-based diagnostic imaging and therapeutics. Lasers in Surgery and Medicine, 2004, vol. 34, no. 2, pp. 83–85.
  5. Tuchin V. V. Optical Clearing of Tissues and Blood. SPIE Press, Bellingham, USA, 2006. 254 p.
  6. Oliveira L. M. C., Tuchin V. V. The Optical Clearing Method – A New Tool for Clinical Practice and Biomedical Engineering. Springer, Cham, Switzerland, 2019. 188 p.
  7. Tuchina D. K., Timoshina P. A., Tuchin V. V., Bashkatov A. N., Genina E. A. Kinetics of Rat Skin Optical Clearing at Topical Application of 40% Glucose: Ex Vivo and In Vivo Studies. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics, 2019, vol. 25, no. 1, pp. 1–8. https://doi.org/10.1109/JSTQE.2018.2830500
  8. Oliveira L. R., Ferreira R. M., Pinheiro M. R., Silva H. F., Tuchin V. V., Oliveira L. M. Broadband spectral verification of optical clearing reversibility in lung tissue. Journal of Biophotonics, 2023, vol. 16, no. 1, pp. e202200185. https://doi.org/10.1002/jbio.202200185
  9. Carneiro I., Carvalho S., Henrique R., Selifonov A., Oliveira L., Tuchin V. V. Enhanced ultraviolet spectroscopy by optical clearing for biomedical applications. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics, 2021, vol. 27, no. 4, pp. 1–8. https://doi.org/10.1109/JSTQE.2020.3012350
  10. Tuchin V. V., Zhu D., Genina E. A. Handbook of Tissue Optical Clearing: New Prospects in Optical Imaging. Boca Raton, CRC Press, 2022. 688 p.
  11. Lee S., Ozkavukcu S., Ku S. Y. Current and future perspectives for improving ovarian tissue cryopreservation and transplantation outcomes for cancer patients. Reproductive Sciences, 2021, vol. 28, no. 6, pp. 1746–1758. https://doi.org/10.1007/s43032-021-00517-2
  12. Abbara A., Jayasena C. N., Christopoulos G., Narayanaswamy S., Izzi-Engbeaya C., Nijher G. M. K., Comninos A. N., Peters D., Buckley A., Ratnasabapathy R., Prague J. K., Salim R., Lavery S. A., Bloom S. R., Szigeti M., Ashby D. A., Trew G. H., Dhillo W. S. Efficacy of kisspeptin-54 to trigger oocyte maturation in women at high risk of ovarian hyperstimulation syndrome (OHSS) during in vitro fertilization (IVF) therapy. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 2015, vol. 100, no. 9, pp. 3322–3331. https://doi.org/10.1210/jc.2015-2332
  13. Burkman R. T. Atlas of pelvic anatomy and gynecologic surgery. The Journal of the American Medical Association, 2011, vol. 306, no. 18, pp. 2031–2038. https://doi.org/10.1001/jama.2011.1635
  14. Smith M. F., McIntush E. W., Smith G. W. Mechanisms associated with corpus luteum development. Journal of Animal Science, 1994, vol. 72, no. 7, pp. 1857–1872. https://doi.org/0.2527/1994.7271857x
  15. Genina E. A., Bashkatov A. N., Tuchin V. V. Tissue optical immersion clearing. Expert Review of Medical Devices, 2010, vol. 7, no. 6, pp. 825–842. https://doi.org/10.1586/erd.10.50
  16. Worne F. Color atlas of veterinary anatomy. Volume 3: The dog and cat. Australian Veterinary Journal, 2011, vol. 89, no. 5, pp. 124–136. https://doi.org/10.1111/j.1751-0813.2010.00675
  17. Carvalho S., Gueiral N., Nogueira E., Henrique R., Oliveira L., Tuchin V. V. Glucose diffusion in colorectal mucosa – a comparative study between normal and cancer tissues. Journal of Biomedical Optics, 2017, vol. 22, no. 9, pp. 91506. https://doi.org/10.1117/1.JBO.22.9.091506
  18. Selifonov A. A., Tuchin V. V. Determination of the diffusion coefficient of 40%-glucose in human gum tissue by optical method. Optics and Spectroscopy, 2020, vol. 128, no. 6, pp. 766–770.
  19. Carneiro I., Carvalho S., Henrique R., Oliveira L., Tuchin V. V. Simple multimodal optical technique for evaluation of free/bound water and dispersion of human liver tissue. Journal of Biomedical Optics, 2017, vol. 22, no. 12, рр. 1–10. https://doi.org/10.1117/1.JBO.22.12.125002

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах