Colormetric system for monitoring the growth of microalgae Dunaliella salina under laboratory conditions
- Авторлар: Galitskaya A.1, Akopian A.1, Dykman L.2, Bogatyrev V.2
-
Мекемелер:
- Saratov State University
- Institute of Biochemistry and Physiology of Plants and Microorganisms of the Russian Academy of Sciences
- Шығарылым: Том 23, № 1 (2023)
- Беттер: 104-109
- Бөлім: Articles
- URL: https://journals.rcsi.science/1816-9775/article/view/252011
- DOI: https://doi.org/10.18500/1816-9775-2023-23-1-104-109
- EDN: https://elibrary.ru/DYIHLL
- ID: 252011
Дәйексөз келтіру
Толық мәтін
Аннотация
Негізгі сөздер
Авторлар туралы
Anna Galitskaya
Saratov State University83, Astrakhanskaya str., Saratov, 410012, Russia
Aram Akopian
Saratov State University
ORCID iD: 0000-0003-1510-6628
83, Astrakhanskaya str., Saratov, 410012, Russia
L. Dykman
Institute of Biochemistry and Physiology of Plants and Microorganisms of the Russian Academy of Sciences410049, Russia, Saratov, Entuziastov Avenue, 13
V. Bogatyrev
Institute of Biochemistry and Physiology of Plants and Microorganisms of the Russian Academy of Sciences410049, Russia, Saratov, Entuziastov Avenue, 13
Әдебиет тізімі
- Масюк Н. П. Морфология, систематика, экология, географическое распространение рода Dunaliella Teod. и перспективы его практического использования. Киев : Наук. думка, 1973. 245 с.
- Oren A. The ecology of Dunaliella in high-salt environments // J. Biol. Res. 2014. Vol. 21, № 1. P. 23–31. https:// doi.org/10.1186/s40709-014-0023-y
- Arun N., Singh D. P. A review on pharmacological applications of halophilic alga Dunaliella // Indian J. Geo-Mar. Sci. 2016. Vol. 45, № 3. P. 440–447.
- Захожий И. Г., Маталин Д. А., Попова Л. Г., Балнокин Ю. В. Ответные реакции фотосинтетического аппарата галотолерантной микроводоросли Dunaliella maritima на гиперосмотический солевой шок // Физиология растений. 2012. Т. 59, № 1. С. 48–56.
- Рабинович Е. Фотосинтез: в 3 т. Т. 2. М. : Изд-во иностр. лит., 1953. 652 с.
- Fujiki T., Taguchi S. Variability in chlorophyll a specifi c absorption coeffi cient in marine phytoplankton as a function of cell size and irradiance // J. Plankton Res. 2002. Vol. 24, № 9. P. 859–874. https://doi.org/10.1093/plankt/24.9.859
- Kubín Š. In vivo chlorophyll determination in suspensions of chlorococcal algae // Arch. Protistenkd. 1991. Vol. 139, № 1–4. P. 111–116. https://doi.org/10.1016/S00039365(11)80012-6
- Чеканов К. А., Соловченко А. Е. Возможности и ограничения недеструктивного оптического мониторинга культур одноклеточных зеленых водорослей при сбалансированном росте // Физиология растений. 2015. Т. 62, № 2. С. 291–300. https://doi.org/10.7868/S0015330315010030
- Golubev A. A., Prilepskii A. Y., Dykman L. A., Khlebtsov N. G., Bogatyrev V. A. Colorimetric evaluation of the viability of the microalga Dunaliella salina as a test tool for nanomaterial toxicity // Toxicol. Sci. 2016. Vol. 151, № 1. P. 115–125. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfw023
- Shaish A., Mavron A., Ben-Amotz A. Effect of inhibitors on the formation of stereoisomers in the biosynthesis of β-carotene in Dunaliella bardawil // Plant Cell Physiol. 1990. Vol. 31, № 5. P. 689–696.
- Farhat N., Rabhi M., Falleh H., Jouini J., Abdelly C., Smaoui A. Optimization of salt concentrations for a higher carotenoid production in Dunaliella salina (Chlorophyceae)(1) // J. Phycol. 2011. Vol. 47, iss. 5. P. 1072–1077. https://doi.org/10.1111/j.1529-8817.2011.01036.x
![](/img/style/loading.gif)