Экспрессия факторов дифференцировки CD44, CD29 и остеокальцина в альвеолярной кости при накостной фиксации свободного десне-вого трансплантата

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. «Золотым стандартом» для мягкотканных пластических операций полости рта является использование свободного десневого трансплантата из мягких тканей твердого нёба.

Цель — исследовать локализацию стволовых стромальных клеток на поверхности свободного десневого трансплантата.

Материал и методы. Изучали иммунолокализацию маркеров стволовых клеток CD29, CD44 и остеокальцина в собственной пластинке и костной ткани нижней челюсти беспородных миниатюрных свиней при накостной фиксации свободного десневого трансплантата.

Результаты. На третьем месяце после операции в области контакта образуется новая костная ткань, характеризующаяся сформированными костными пластинками, остеонами и системой гаверсовых и фолькмановых каналов. При исследовании иммунолокализации CD29, CD44 и остеокальцина обнаруживается их гетерогенное распределение. CD29-, CD44-иммунопозитивные клетки превалируют на границе новообразованной кости и собственной пластинки десны, а также в полости гаверсовых каналов. Остеокальцинпозитивные клетки локализуются преимущественно в слое общих пластин, на поверхности костных пластин молодых остеонов, окружающих гаверсов канал, и в его полости, находящихся в непосредственной близости к трансплантату.

Заключение. Накостная фиксация свободного десневого трансплантата ремоделирует альвеолярную кость, которая проявляет признаки репаративного процесса. Наличие экспрессии CD29 и CD44 в тканях кости указывает на активацию мезенхимальных камбиальных клеток, которые дифференцируются в остеокальцинсодержащие остеобласты. Индуцирующая роль свободного десневого трансплантата в формировании новой кости определяется способностью его клеток синтезировать трофические факторы, стимулирующие рост сосудов, пролиферацию и дифференцировку МСК, а модель на миниатюрных свиньях является полезным инструментом для изучения этого процесса.

Об авторах

С. С. Едранов

ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: nymatveeva@mail.ru
Россия, Владивосток

Наталья Юрьевна Матвеева

ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: nymatveeva@mail.ru

доктор медицинских наук, доцент, зав. кафедрой гистологии, эмбриологии, цитологии ФГБОУ ВО ТГМУ Минздрава России

Россия, Владивосток

С. Г. Калиниченко

ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: nymatveeva@mail.ru
Россия, Владивосток

Список литературы

  1. Едранов С.С. Клеточно-молекулярные аспекты посттравматической регенерации слизистой оболочки околоносовых пазух. Тихоокеанский медицинский журнал. 2016;(2):67–71.
  2. Souza A.B., Tormena M., Matarazzo F., Araújo M.G. The influence of peri-implant keratinized mucosa on brushing discomfort and peri-implant tissue health. Clin Oral Implants Res. 2016;27(6):650–5. doi: 10.1111/clr.13381.
  3. Hatzimanolakis P., Tsourounakis I., Kelekis-Cholakis A. Dental implant maintenance for the oral healthcare team. Compend Contin Educ Dent. 2019;40(7):424–9.
  4. Brito C., Tenenbaum H.C., Wong B.K., Schmitt C., Nogueira-Filho G. Is keratinized mucosa indispensable to maintain peri-implant health? A sys-tematic review of the literature. J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. 2014;102(3):643–50. doi: 10.1002/jbm.b.33042.
  5. Ladwein C., Schmelzeisen R., Nelson K., Fluegge T.V., Fretwurst T. Is the presence of keratinized mucosa associated with periimplant tissue health? A clinical cross-sectional analysis. Int J Implant Dent. 2015;1(1):11. doi: 10.1186/s40729–015-0009-z.
  6. Roccuzzo M., Grasso G., Dalmasso P. Keratinized mucosa around implants in partially edentulous posterior mandible: 10-year results of a pro-spective comparative study. Clin Oral Impl Res. 2016;27(4):491–6. doi: 10.1111/clr.12563.
  7. Puisys A., Linkevicius T. The influence of mucosal tissue thickening on crestal bone stability around bone-level implants. A prospective controlled clinical trial. Clin Oral lmpl Res. 2015;26(2):123–9. doi: 10.1111/clr.12301.
  8. Monje A., Galindo-Moreno P., Tözürm T.F., Suárez-López del Amo F., Wang H.L. Into the paradigm of local factors as contributors for peri-implant disease: a short communication. J Oral Maxillofac Impl. 2016;31(2):288–92. doi: 10.11607/jomi.4265.
  9. Barboza E.P., Stutz B., Mandarino D., Rodrigues D.M., Ferreira V.F. Evaluation of a dense polytetrafluoroethylene membrane to increase keratin-ized tissue: a randomized controlled clinical trial. Implant Dent. 2014;23(3):289–94. doi: 10.1097/ID.0000000000000060.
  10. Rojo L., Deb S. Polymer therapeutics in relation to dentistry. Front Oral Biol. 2015;17:13–22. doi: 10.1159/000381688.
  11. Cheon G.B., Kang K.L., Yoo M.K., Yu J.A., Lee D.W. Alveolar ridge preservation using allografts and dense polytetrafluoroethylene membranes with open membrane technique in unhealthy extraction socket. J Oral Implantol. 2017;43(4):267–73. doi: 10.1563/aaid-joi-D-17–00012.
  12. Едранов С.С., Керзиков Р.А. Морфогенез свободного десневого трансплантата. Российский стоматологический журнал. 2017;21(2):111–6.
  13. Sharpe P.T. Dental mesenchymal stem cells. Development. 2016;143:2273–80. doi: 10.1242/dev.134189.
  14. Aydin S., Şahin F. Stem cells derived from dental tissues. Adv. Exp. Med. Biol. 2019;1144:123–32. doi: 10.1007/5584–2018-333.
  15. Trubiani O., Orsini G., Caputi S., Piatelli A. Adult mesenchymal stem cells in dental research: a new approach for tissue engineering. Int J Im-munopathol Pharmacol. 2006;19(3):451–60. doi: 10.1177/039463200601900301.
  16. Dave J.R., Tomar G.B. Dental tissue-derived mesenchymal stem cells: applications in tissue engineering. Crit Rev Biomed Eng. 2018;46(5):429–68. doi: 10.1615/CritRevBiomedEng.2018027342.
  17. Wang X., Wang Y., Gou W., Lu Q., Peng J., Lu S. Role of mesenchymal stem cells in bone regeneration and fracture repair: a review. Int Orthop. 2013;37(12):2491–8. doi: 10.1007/s00264–013-2059–2.
  18. Капанадзе Г.Д. Использование миниатюрных свиней в биомедицинских экспериментах. Биомедицина. 2006;(2):40–51.
  19. Wang S., Liu Y., Fang D., Shi S. The miniature pig: a useful large animal model for dental and orofacial research. Oral Dis. 2007;13(6):530–7. doi: 10.1111/j.1601–0825.2006.01337.x.
  20. Borges T., Fernandes D., Almeida B., Pereira M., Martins D., Azevedo L., Marques T. Correlation between alveolar bone morphology and volu-metric dimensional changes in immediate maxillary implant placement: a 1-year prospective cohort study. J Periodontol. 2020; doi: 10.1002/JPER.19–0606.
  21. Fournier B.P., Ferre F.C., Couty L., Lataillade J.J., Gourven M., Naveau A. et al. Multipotent progenitor cells in gingival connective tissue. Tissue Eng Part A. 2010;16(9):2891–9. doi: 10.1089/ten.TEA.2009.0796.
  22. Калиниченко С.Г., Матвеева Н.Ю., Костив Р.Е., Пузь А.В. Сосудистый эндотелиальный фактор роста и трансформирующий фактор роста-b2 в костной ткани крыс при установке после перелома титановых имплантатов с биоактивными биорезорбируемыми покрытиями. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2016;162(11):626–31.
  23. Костив Р.Е., Калиниченко С.Г., Матвеева Н.Ю. Трофические факторы роста костной ткани, их морфогенетическая характеристика и клиниче-ское значение. Тихоокеанский медицинский журнал. 2017;(1):10–6.
  24. Матвеева Н.Ю., Костив Р.Е., Калиниченко С.Г., Пузь А.В., Плехова Н.Г. Динамика регенерации перелома бедренной кости крыс с примене-нием титанового имплантата с поверхностно активным покрытием. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследова-ний. 2015;(10–5):849–53.
  25. Плехова Н.Г., Ляпун И.Н., Калиниченко С.Г., Матвеева Н.Ю., Костив Р.Е., Гнеденков С.В., и др. Влияние биоинертных и биорезорбируемых металлических имплантатов на экспрессию мембранных рецепторов дендритных клеток. Современные проблемы науки и образования. 2015;(5):181.
  26. Grawish M.E. Gingival-derived mesenchymal stem cells: An endless resource for regenerative dentistry. World J Stem Cells. 2018;10(9):116–8. doi: 10.4252/wjsc.v10.i9.116.
  27. Franchi M., Orsini E., Trirè A., Quaranta, M., Martini D., Piccari G.G. et al. Osteogenesis and morphology of the peri-implant bone facing dental implants. Scientific World Journal. 2004;4:1083–95. doi: 10.1100/tsw.2004.211.
  28. Kalinichenko S.G., Matveeva N.Yu., Kostiv R.Ye, Edranov S.S. The topography and proliferative activity of cells immunoreactive to various growth factors in rat femoral bone tissues after experimental fracture and implantation of titanium implants with bioactive biodegradable coatings. Biomed Mater Eng. 2019;30(1):85–95. doi: 10.3233/BME-181035.
  29. Kantarci A., Hasturk H., Van Dyke T.E. Animal models for periodontal regeneration and peri-implant responses. Periodontol 2000. 2015;68(1):66–82. doi: 10.1111/prd.12052.
  30. Iorio-Siciliano V., Blasi A., Sammartino G., Salvi G.E., Sculean A. Soft tissue stability related to mucosal recession at dental implants: a systematic review. Quintessence Int. 2020;51(1):28–36. doi: 10.3290/j.qi.a43048.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Новообразованная компактная кость в области контакта СДТ нижней челюсти миниатюрной свиньи. Третий месяц послеоперационного периода. Стрелки указывают на новую кость. Крупные базофильные клетки формируют тяжи вдоль костных пластин (звездочка). Окраска гематоксилином и эозином.

Скачать (432KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Локализация CD29, CD44 и остеокальцина в костной ткани нижней челюсти беспородной миниатюрной свиньи в области контакта СДТ при накостной фиксации свободного десневого трансплантата. Третий месяц послеоперационного периода.

Скачать (1MB)
Метаданные

© ООО "Эко-Вектор", 2020


 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах