ENVIRONMENTAL MONITORING USING ADOLESCENTS’ SALIVA IN OMSK

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

Introduction: An effective way to improve the quality of public health is to search for early, pre-pathological changes in the body under the influence of many technogenic factors, which will make it possible to make predictions of the pre-nosological state for the future. Aim: To assess the impact of the environment on the biochemical parameters of saliva in adolescents living in areas with different levels of environmental stress. Methods: The study involved 90 adolescents aged 14 to 16 years (39 boys, 51 girls), living in six administrative districts of Omsk with different levels of environmental pollution. Saliva samples were collected in the morning on an empty stomach, and the biochemical composition was determined using 22 parameters. Intergroup differences were assessed by a nonparametric criterion and principal component analysis (PCA). Results: None of the parameters measured in saliva can be used to characterize the area of residence. PCA showed that that the maximum contribution was made by electrolyte components, protein, and triene conjugates (TC). At the same time, the regions with the maximum differences in the studied biochemical parameters of saliva are geographically distant from each other. So, in ecologically unfavorable areas in saliva the TC level is the highest 0.954 (0.677; 1.019) c. u. and the chloride content is the lowest 8.4 (5.9; 10.6) mmol/L. The opposite trend is observed for ecologically safe areas: the TC level decreases 0.864 (0.792; 1.018) c. u., the chloride content increases 16.1 (9.7; 18.6) mmol/L. A combination of indicators of saliva was revealed, which allows characterizing the state of the body in an integral form. Conclusions: The use of PCA of biochemical parameters of saliva allows monitoring of the ecological situation in the areas of residence supporting the evidence from environmental monitoring in the study area.

About the authors

E. A. Sarf

Omsk State Pedagogical University

M. V. Dergacheva

Omsk State Pedagogical University

L. A. Zharkikh

Omsk State Pedagogical University

L. V. Bel'skaya

Omsk State Pedagogical University

Email: ludab2005@mail.ru
кандидат химических наук, заведующая научно-исследовательской лаборатории биохимии

References

  1. Бельская Л. В. Применение капиллярного электрофореза для определения минерального состава слюны человека // Бюллетень науки и практики. 2017. № 2. С. 132-140
  2. Бельская Л. В., Сарф Е. А., Косенок В. К. Биохимия слюны: методы исследования. Омск, 2015. 70 с
  3. Гаврилов В. Б., Бидула М. М., Фурманчук Д. А., Конев С. В., Алейникова О. В. Оценка интоксикации организма по нарушению баланса между накоплением и связыванием токсинов в плазме // Клиническая лабораторная диагностика. 1999. № 2. С. 13-17
  4. Гегерь Э. В., Золотникова Г. П. Оценка экологических рисков здоровью населения в районах, ранжированных по степени техногенного загрязнения // Экология человека. 2018. № 4. С. 10-15
  5. Доклад об экологической ситуации в Омской области за 2019 г. / Министерство природных ресурсов и экологии Омской области. Омск, 2020. 302 с
  6. Колесов С. А., Коркоташвили Л. В. Протеом слюны и его диагностические возможности // Клиническая лабораторная диагностика. 2015. № 5. С. 54-58
  7. Королюк М. А., Иванова Л. И., Майорова И. Г., Токарев В. Е. Метод определения активности каталазы // Лабораторное дело. 1988. № 1. С. 16-19
  8. Несмеянова Н. Н., Соседова Л. М. Состояние микроэкологии слизистых верхних дыхательных путей у подростков, проживающих в городах с химической промышленностью // Экология человека. 2015. № 4. С. 32-38
  9. Рембовский В. Р., Могиленкова Л. А., Радилов А. С., Савельева Е. И., Комбарова М. Ю. Перспективы биомониторинга для оценки здоровья при работах с опасными химическими веществами // Медицина экстремальных ситуаций. 2018. Т. 20, № 3. С. 398-407
  10. Семенова Н. В., Мадаева И. М., Даренская М. А., Колесникова Л. И. Процессы липопероксидации и система антиоксидантной зашиты у женщин в менопаузе в зависимости от этнической принадлежности // Экология человека. 2019. № 6. С. 30-38
  11. Соколов А. В., Костина Д. А., Мариничев С. С., Чаплыгин С. С., Колсанов А. В. Значимость определения нитритов в ротовой жидкости у здоровых людей // Клиническая лабораторная диагностика. 2018. Т. 63, № 4. С. 215-219
  12. Трофимчук А. А., Кабирова М. Ф., Гуляева О. А., Ларионова Т. К., Каримова Л. К., Саляхова Г. А. Уровень эссенциальных и токсичных элементов в биосредах полости рта у работников горно-обогатительного комбината, занятых добычей и переработкой медно-цинковых руд // Проблемы стоматологии. 2018. Т. 14, № 1. С. 33-36
  13. Федотова Т. А., Кушнир С. М., Антонова Л. К., Усова Е. В. Микро- и макроэлементный состав слюны у часто болеющих детей, проживающих в различных экологически неблагоприятных условиях // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2012. № 6. С. 74-77
  14. Ямбулатов А. М., Устинова О. Ю. Нарушение баланса витаминов у детей дошкольного возраста в условиях комплексного воздействия техногенных химических факторов // Здоровье населения и среда обитания. 2018. № 7 (304). С. 12-18
  15. Bel’skaya L. V, Kosenok V. K., Massard G. Endogenous Intoxication and Saliva Lipid Peroxidation in Patients with Lung Cancer. Diagnostics. 2016, 6 (4), pp. 39.
  16. Bel’skaya L. V., Kosenok V. K., Sarf E. A. Chronophysiological features of the normal mineral composition of human saliva. Archives of Oral Biology. 2017, 82, pp. 286292.
  17. Gegotek A., Niklinski J., Zarkovie N., Zarkovie K., Waeg G., Luczaj W., Charkiewiez R., Skrzydlewska E. Lipid mediators involved in the oxidative stress and antioxidant defense of human lung cancer cells. Redox Biology. 2016, 9, pp. 210-219.
  18. Le S., Josse J., Husson F. FactoMineR: An R Package for Multivariate Analysis. Journal of Statistical Software. 2008, 25 (1), pp. 1-18.
  19. Miller C. S., Foley J. D., Bailey A. L., Campell C. L., Humphries R. L., Christodoulides N., Floriano P. N. Current developments in salivary diagnostics. Biomark. Med. 2010, 4 (1), pp. 171-89.
  20. Morry J., Ngamcherdtrakul W., Yantasee W Oxidative stress in cancer and fibrosis: Opportunity for therapeutic intervention with antioxidant compounds, enzymes and nanoparticles. Redox Biology. 2017, 11, pp. 240-253.
  21. Nunes L. A., Mussavira S., Bindhu O. S. Clinical and diagnostic utility of saliva as a non-invasive diagnostic fluid: a systematic review. Biochemia Medica. 2015, 25 (2), pp. 177-92.
  22. Roblegg E., Coughran A., Sirjani D. Saliva: An allrounder of our body. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 2019, 142, pp. 133-141.
  23. Rodrigues V. P., Franco M. M., Marques C. P., de Carvalho R. C., Leite S. A., Pereira A. L., Benatti B. B. Salivary levels of calcium, phosphorus, potassium, albumin and correlation with serum biomarkers in hemodialysis patients. Archives of Oral Biology. 2016, 62, pp. 58-63.

Copyright (c) 2021 Sarf E.A., Dergacheva M.V., Zharkikh L.A., Bel'skaya L.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies