Физиологические особенности развития и варианты технологии получения плюрипотентных стволовых клеток
- Авторы: Москалев А.В.1, Гумилевский Б.Ю.2, Апчел В.Я.1,3, Цыган В.Н.1
-
Учреждения:
- Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
- Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова
- Российский государственный педагогический университет имени А.И. Герцена Минобрнауки России
- Выпуск: Том 24, № 3 (2022)
- Страницы: 581-592
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://journals.rcsi.science/1682-7392/article/view/81372
- DOI: https://doi.org/10.17816/brmma81372
- ID: 81372
Цитировать
Аннотация
Рассматриваются актуальные вопросы, связанные с технологией выделения и механизмами развития плюрипотентных стволовых клеток и их применением в медицине. Выделение, а также последующее использование стволовых клеток до настоящего времени остаются нерешенной проблемой как с научной точки зрения, так и, особенно, в практическом здравоохранении. Существует три способа получения плюрипотентных стволовых клеток. Во-первых, они могут быть получены in vitro из культуры клеток внутреннего слоя бластоцисты. Это эмбриональные стволовые клетки. Во-вторых, они могут быть получены из соматических клеток в результате введения группы генов, индуцирующих плюрипотентность. Это индуцированные плюрипотентные стволовые клетки. Наконец, они могут быть получены в результате трансплантации ядра соматических клеток в энуклеированный овоцит. Микроокружение яйцеклетки способствует перепрограммированию ядра до состояния близкого к зиготе. Мышиные эмбриональные стволовые клетки на своей поверхности имеют многие эмбриональные маркеры: углеводные рецепторы — CD15, щелочную фосфатазу, фактор 4, подобный Круппелю, рецептор, связанный с эстрогеном, транскриптационный фактор СР2, подобный 1, Т-бокс транскриптационный фактор и гаструляционный гомеобокс мозга 2. Эмбриональные стволовые клетки мыши дифференцируются из внутренней массы клеток на стадии преимплантации эпибласта. Это установлено на основании сравнения профилей экспрессии генов и на прямой изоляции эмбриональных стволовых клеток от эпибластов 4,5-дневных оплодотворенных яйцеклеток. Эмбриональные стволовые клетки, полученные из эмбрионов мыши более поздних стадий развития, теряют маркеры плюрипотентности. Примерно через 3 дня после элиминирования фактора ингибирования лейкемии экспрессия гена Осt4 приводит к потере маркеров специфичности клетками раннего эмбриона. В настоящее время перепрограммирование плюрипотентности является активной областью исследований, в которой достигнут значимый технический прогресс. Так, используется оригинальный генный коктейль, состоящий из четырех генов: Oct4, Sox2, Klf4 и cMyc. Получены эмбриональные стволовые клетки мыши и человека из оплодотворенных бластоцист и индуцированные плюрипотентные стволовые клетки. Однако это не касается плюрипотентных стволовых клеток, полученных от постнатальных животных, человека или из внеэмбриональных источников, таких как амниотическая жидкость или пуповинная кровь. Несмотря на то, что многие лаборатории работают над получением стволовых клеток из этих объектов, к сожалению, их воспроизводимость недостаточна, а свойства полученных клеток и даже их существование по-прежнему являются объектом споров.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Александр Витальевич Москалев
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
Автор, ответственный за переписку.
Email: alexmav195223@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3403-3850
SPIN-код: 8227-2647
доктор медицинских наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургБорис Юрьевич Гумилевский
Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова
Email: gumbu@mail.ru
SPIN-код: 3428-7704
Scopus Author ID: 6602391269
ResearcherId: J-1841-2017
доктор медицинских наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургВасилий Яковлевич Апчел
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова; Российский государственный педагогический университет имени А.И. Герцена Минобрнауки России
Email: apchelvya@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7658-4856
SPIN-код: 4978-0785
Scopus Author ID: 6507529350
ResearcherId: Е-8190-2019
доктор медицинских наук, профессор
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургВасилий Николаевич Цыган
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
Email: vn-t@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1199-0911
SPIN-код: 7215-6206
Scopus Author ID: 6603136317
доктор медицинских наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Москалев А.В., Сбойчаков В.Б., Рудой А.С. Общая иммунология с основами клинической иммунологии. Москва: Гэотар-Медиа, 2015. 351 с.
- Москалев А.В., Гумилевский Б.Ю., Сбойчаков В.Б. Медицинская иммунология с вопросами иммунной недостаточности и основами клинической иммунологии. Санкт-Петербург: ВМА, 2019. 327 с.
- Ярилин А.А. Иммунология. Москва: Гэотар-Медиа, 2010. 957 с.
- lson K., De Nardin E. Contemporary clinical immunology and serology. New Jersey: Upper Saddle River, 2013. 439 p.
- Duggal G., Warrier S., Ghimire S., et al. Alternative Routes to Induce Naïve Pluripotency in Human Embryonic Stem Cells // Stem Cells. 2015. Vol. 33, No. 9. P. 2686–2698. doi: 10.1002/stem.2071
- González F., Huangfu D. Mechanisms underlying the formation of induced pluripotent stem cells // Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2016. Vol. 5, No. 1. P. 39–65. doi: 10.1002/wdev.206
- Nichols J., Smith A. The origin and identity of embryonic stem cells // Development. 2011. Vol. 138, No. 1. P. 3–8. doi: 10.1242/dev.050831
- De Los Angeles A., Ferrari F., Xi R., et al. Hallmarks of pluripotency // Nature. 2015. Vol. 525, No. 7570. P. 469–478. doi: 10.1038/nature15515
- Dunn S.J., Martello G., Yordanov B., et al. Defining an essential transcription factor program for naïve pluripotency // Science. 2014. Vol. 344, No. 6188. P. 1156–1160. doi: 10.1126/science.1248882
- Augui S., Nora E.P., Heard E. Regulation of X-chromosome inactivation by the X-inactivation centre // Nat Rev Genet. 2011. Vol. 12, No. 6. P. 429–442. doi: 10.1038/nrg2987
- Rossant J., Tam P.P.L. New Insights into Early Human Development: Lessons for Stem Cell Derivation and Differentiation // Cell Stem Cell. 2017. Vol. 20, No. 1. P. 18–28. doi: 10.1016/j.stem.2016.12.004
- Abad M., Mosteiro L., Pantoja C., et al. Reprogramming in vivo produces teratomas and iPS cells with totipotency features // Nature. 2013. Vol. 502. P. 340–345. doi: 10.1038/nature12586
- Bulic-Jakus F., Katusic Bojanac A., Juric-Lekic G., et al. Teratoma: from spontaneous tumors to the pluripotency/malignancy assay // Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2016. Vol. 5, No. 2. P. 186–209. doi: 10.1002/wdev.219
- Silva M., Daheron L., Hurley H., et al. Generating iPSCs: translating cell reprogramming science into scalable and robust biomanufacturing strategies // Cell Stem Cell. 2015. Vol. 16, No. 1. P. 13–17. doi: 10.1016/j.stem.2014.12.013
- Sohni A., Verfaillie C.M. Multipotent adult progenitor cells // Best Pract Res Clin Haematol. 2011. Vol. 24, No. 1. P. 3–11. doi: 10.1016/j.beha.2011.01.006
- Stadtfeld M., Hochedlinger K. Induced pluripotency: history, mechanisms, and applications // Genes Dev. 2010. Vol. 24, No. 20. P. 2239–2263. doi: 10.1101/gad.1963910
- Tamm C., Pijuan Galitó S., Annerén C. A comparative study of protocols for mouse embryonic stem cell culturing // PLoS One. 2013. Vol. 8, No. 12. ID e81156. doi: 10.1371/journal.pone.0081156
- Ma H., Morey R., O’Neil R.C., et al. Abnormalities in human pluripotent cells due to reprogramming mechanisms // Nature. 2014. Vol. 511, No. 7508. P. 177–183. doi: 10.1038/nature13551
- Tachibana M., Amato P., Sparman M., et al. Human embryonic stem cells derived by somatic cell nuclear transfer // Cell. 2013. Vol. 153, No. 6. P. 1228–1238. doi: 10.1016/j.cell.2013.05.006
- McDonald J.I., Celik H., Rois L.E., et al. Reprogrammable CRISPR/Cas9-based system for inducing site-specific DNA methylation // Biol Open. 2016. Vol. 5, No. 6. P. 866–874. doi: 10.1242/bio.019067
- Abbas A.K., Lichtman A.N., Pillai S. Cellular and Molecular Immunology. 9-th edition. Philadelphia, Pennsylvania: W.B. Saunders Company, 2018. 565 p.
- Sternberg S.H., Redding S., Jinek M., et al. DNA interrogation by the CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9 // Nature. 2014. Vol. 507, No. 7490. P. 62–67. doi: 10.1038/nature13011
- Thakore P.I., D'Ippolito A.M., Song L., et al. Highly specific epigenome editing by CRISPR-Cas9 repressors for silencing of distal regulatory elements // Nat Methods. 2015. Vol. 12, No. 12. P. 1143–1149. doi: 10.1038/nmeth.3630
- Gjorevski N., Ranga A., Lutolf M.P. Bioengineering approaches to guide stem cell-based organogenesis // Development. 2014. Vol. 141, No. 9. P. 1794–1804. doi: 10.1242/dev.101048
- Kang H.-W., Lee S.J., Ko I.K., et al. A 3D bioprinting system to produce human-scale tissue constructs with structural integrity // Nat Biotechnol. 2016. Vol. 34, No. 3. P. 312–319. doi: 10.1038/nbt.3413
- Yamaguchi T., Sato H., Kato-Itoh M., et al. Interspecies organogenesis generates autologous functional islets // Nature. 2017. Vol. 542, No. 7640. P. 191–196. doi: 10.1038/nature21070
- Richardson B.E., Lehmann R. Mechanisms guiding primordial germ cell migration: strategies from different organisms // Nat Rev Mol Cell Biol. 2010. Vol. 11, No. 1. P. 37–49. doi: 10.1038/nrm2815
- Hilton I.B., D'Ippolito A.M., Vockley C.M., et al. Epigenome editing by a CRISPR-Cas9-based acetyltransferase activates genes from promoters and enhancers // Nat Biotechnol. 2015. Vol. 33, No. 5. P. 510–517. doi: 10.1038/nbt.3199
- Geraghty R.J., Capes-Davis A., Davis J.M., et al. Cancer Research UK. Guidelines for the use of cell lines in biomedical research // Br J Cancer. 2014. Vol. 111, No. 6. P. 1021–1046. doi: 10.1038/bjc.2014.166
- Liu N., Zang R., Yang S.T., Li Y. Stem cell engineering in bioreactors for large-scale bioprocessing // Eng Life Sci. 2014. Vol. 14. P. 4–15. doi: 10.1002/elsc.201300013
- Sasaki K., Nakamura T., Okamoto I., et al. The Germ Cell Fate of Cynomolgus Monkeys Is Specified in the Nascent Amnion // Dev Cell. 2016. Vol. 39, No. 2. P. 169–185. doi: 10.1016/j.devcel.2016.09.007
- Slack J.M.W. The science of stem cells. John Wiley and Sons Inc., 2018. 248 p. doi: 10.1002/9781119235293
- Sasai Y. Next-generation regenerative medicine: organogenesis from stem cells in 3D culture // Cell Stem Cell. 2013. Vol. 12, No. 5. P. 520–530. doi: 10.1016/j.stem.2013.04.009
- Wu Y., Chen L., Scott P.G., Tredget E.E. Mesenchymal stem cells enhance wound healing through differentiation and angiogenesis // Stem Cells. 2007. Vol. 25, No. 10. P. 2648–2659. doi: 10.1634/stemcells.2007-0226
- Gilbert L.A., Larson M.H., Morsut L., et al. CRISPR-mediated modular RNA-guided regulation of transcription in eukaryotes // Cell. 2013. Vol. 154, No. 2. P. 442–451. doi: 10.1016/j.cell.2013.06.044
- Zetsche B., Gootenberg J.S., Abudayyeh O.O., et al. Cpf1 is a single RNA-guided endonuclease of a class 2 CRISPR-Cas system // Cell. 2015. Vol. 163, No. 3. P. 759–771. doi: 10.1016/j.cell.2015.09.038
- Zia S., Mozafari M., Natasha G., et al. Hearts beating through decellularized scaffolds: whole-organ engineering for cardiac regeneration and transplantation // Crit Rev Biotechnol. 2016. Vol. 36, No. 4. P. 705–715. doi: 10.3109/07388551.2015.1007495
Дополнительные файлы
