Роль вирусов в трансформации клеток и онкогенезе
- Авторы: Москалев А.В.1, Гумилевский Б.Ю.1, Апчел В.Я.1,2, Цыган В.Н.1
-
Учреждения:
- Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
- Российский государственный педагогический университет имени А.И. Герцена
- Выпуск: Том 25, № 1 (2023)
- Страницы: 133-144
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://journals.rcsi.science/1682-7392/article/view/134094
- DOI: https://doi.org/10.17816/brmma121327
- ID: 134094
Цитировать
Аннотация
Анализируются данные современной научной литературы, характеризующие отдельные механизмы трансформации нормальных клеток и различные этапы онкогенеза, связанного с вирусами. Данные секвенирования геномов опухолей, аминокислотных последовательностей свидетельствуют, что большинство опухолей — это следствие накопления последовательных мутаций, значимый вклад в формирование которых внесли онкогенные вирусы. Процессы, которые изменяют или ухудшают функционирование сигнальных путей, могут способствовать трансформации и онкогенезу. Большое значение в процессах онкогенеза играет фосфорилирование рибосомального белка S6 протеинкиназой В, увеличивающее скорость и удлиняющее время трансляции. Протеинкиназа В ингибирует процессы апоптоза, принимает участие в регуляции клеточного цикла, регулирует рост тканей, повышенный уровень этого белка обнаруживается во многих опухолях. Трансформация и опухолеассоциированные процессы являются результатом комбинации доминантных мутаций с усилением функции протоонкогенов и рецессивных мутаций с потерей функций генов-супрессоров опухолей, кодирующих белки, блокирующие прогрессирование клеточного цикла. Функции любого генного продукта могут изменяться онкогенными вирусами. Трансформирующие белки изменяют пролиферацию клеток ограниченным набором молекулярных механизмов. Интеграция провирусной дезоксирибонуклеиновой кислоты в определенном участке клеточного генома способствует индукции опухолеассоциированных процессов нетрансдуцирующими вирусами. Клеточные онкогены индуцируют передачу сигналов на различных стадиях клеточного цикла, что, в конечном итоге, приводит к его дисрегуляции и прогрессированию. Для процессов трансформации клеток необходимо взаимодействие вирусных белков Е1А с супрессорами опухолей RB, гистонацетилтрансферазой р300/СВР и ингибиторами циклин-зависимой киназы р27 и р21. Вирус-трансформирующие белки обладают разнообразными свойствами от изменения последовательностей первичных аминокислот до индукции различных вариантов биохимической активности. Большинство опухолей, индуцированных нетрансдуцирующими ретровирусами, возникают в результате повышенной транскрипции клеточных генов (myc), расположенных в непосредственной близости от интегрированных провирусов. Латентный мембранный белок 1 является интегральным белком плазматической мембраны, функционирует как конститутивно активный рецептор и облегчает переход от латентного течения инфекции к литическому. При отсутствии лиганда этот белок олигомеризуется и активирует белки, контролирующие пролиферацию и выживание клеток.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Александр Витальевич Москалев
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
Автор, ответственный за переписку.
Email: alexmav195223@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3403-3850
SPIN-код: 8227-2647
д-р мед. наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургБорис Юриевич Гумилевский
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
Email: alexmav195223@yandex.ru
SPIN-код: 3428-7704
Scopus Author ID: 6602391269
ResearcherId: J-1841-2017
д-р мед. наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургВасилий Яковлевич Апчел
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова; Российский государственный педагогический университет имени А.И. Герцена
Email: alexmav195223@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7658-4856
SPIN-код: 4978-0785
Scopus Author ID: 6507529350
ResearcherId: Е-8190-2019
д-р мед. наук, профессор
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургВасилий Николаевич Цыган
Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова
Email: alexmav195223@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1199-0911
SPIN-код: 7215-6206
д-р мед. наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Griffin D.E. The Immune Response in Measles: Virus Control, Clearance and Protective Immunity // Viruses. 2016. Vol. 10, No. 8. P. 282–291. doi: 10.3390/v8100282
- Katze M.G., Korth M.J., Law G.L., et al. Viral Pathogenesis: From Basics to Systems Biology. San Diego, CA: Academic Press, 2016. 422 p.
- Stecca B., Rovida E. Impact of ERK5 on the Hallmarks of Cancer // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20, No. 6. ID 1426. doi: 10.3390/ijms20061426
- Guo Y.-J., Pan W.-W., Liu S.-B., et al. ERK/MAPK signaling pathway and tumorigenesis // Exp Ther Med. 2020. Vol. 19, No. 3. P. 1997–2007. doi: 10.3892/etm.2020.8454
- Lee H.-J., Kim M.-Y., Park H.-S. Phosphorylation-dependent regulation of Notch1 signaling: the fulcrum of Notch1 signaling // BMB Rep. 2015. Vol. 48, No. 8. P. 431–437. doi: 10.5483/bmbrep.2015.48.8.107
- Luoa L.Y., Hahnb W.C. Oncogenic Signaling Adaptor Proteins // J Genet Genomics. 2015. Vol. 42, No. 10. P. 521–529. doi: 10.1016/j.jgg.2015.09.001
- Gong B.-L., Mao R.-Q., Xiao Y., et al. Improvement of enzyme activity and soluble expression of an alkaline protease isolated from oil-polluted mud flat metagenome by random mutagenesis // Enzyme Microb Technol. 2017. Vol. 106. P. 97–105. doi: 10.1016/j.enzmictec.2017.06.015
- MacDonald B.T., He X. Frizzled and LRP5/6 Receptors for Wnt/β-Catenin Signaling // Cold Spring Harb Perspect Biol. 2012. Vol. 12, No. 4. P. 1–23. doi: 10.1101/cshperspect.a007880
- Burrell C., Howard C., Murphy F. Fenner and White’s Medical Virology, 5th ed. San Diego, CA: Academic Press, 2016. 454 p.
- Mok Y.K., Swaminathan K., Zeeshan N. Engineering of serine protease for improved thermostability and catalytic activity using rational design // Int. J. Biol. Macromol. 2019. Vol. 126. P. 229–237. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.12.218
- Ashraf N.M., Krishnagopal A., Hussain A., et al. Engineering of serine protease for improved thermo stability and catalytic activity using rational design // Int J Biol Macromol. 2019. Vol. 126. P. 229–237. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.12.18
- Garcia-Sastre A. Ten strategies of interferon evasion by viruses // Cell Host Microbe. 2017. Vol. 22. P. 176–184. doi: 10.1016/j.chom.2017.07.012
- Lee S., Liu H., Wilen C.B., et al. A secreted viral nonstructural protein deters intestinal norovirus pathogenesis // Cell Host Microbe. 2019. Vol. 25, No. 6. P. 845–857.E5. doi: 10.1016/j.chom.2019.04.005845–857
- Thapa R.J., Ingram J.P., Ragan K.B., et al. DAI Senses Influenza A Virus Genomic RNA and Activates RIPK3-Dependent Cell Death // Cell Host Microbe. 2016. Vol. 20, No. 5. P. 674–681. doi: 10.1016/j.chom.2016.09.014
- Ahmad L., Mostowy S., Sancho-Shimizu S. Autophagy-Virus Interplay: From Cell Biology to Human Disease // Front Cell Dev Biol. 2018. Vol. 6. ID 155. doi: 10.3389/fcell.2018.00155
- Yang L., Shi P., Zhao G., et al. Targeting cancer stem cell pathways for cancer therapy // Signal Transduct Target Ther. 2020. Vol. 5. ID 8. doi: 10.1038/s41392-020-0110-5
- Tubita А., Lombardi Z., Tusa I., et al Beyond Kinase Activity: ERK5 Nucleo-cytoplasmic shuttling as a novel target for anticancer therapy // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, No. 3. ID 938. doi: 10.3390/ijms21030938
- Xu X., Zhang M., Xu F., Jiang S. Wnt signaling in breast cancer: biological mechanisms, challenges and opportunities // Mol Cancer. 2020. Vol. 19. ID 165. doi: 10.1186/s12943-020-01276-5
- Wang B., Li X., Liu L., Wang M. β-Catenin: oncogenic role and therapeutic target in cervical cancer // Biol Res. 2020. Vol. 53. ID 33. doi: 10.1186/s40659-020-00301-7
- Reizis B. Plasmacytoid Dendritic Cells: Development, Regulation, and Function // Immunity. 2019. Vol. 50, No. 1. P. 37–50. doi: 10.1016/j.immuni.2018.12.027
- Takata M.A., Gonçalves-Carneiro D., Zang T.M., et al. CG dinucleotide suppression enables antiviral defence targeting non-self RNA // Nature. 2017. Vol. 550, No. 7674. P. 124–127. doi: 10.1038/nature24039
- Nash A., Dalziel R., Fitzgerald J. Mims’ Pathogenesis of Infectious Disease, 6th ed. San Diego, CA: Academic Press, 2015. 348 p.
- Maillard P.V., van der Veen A.G., Poirier E.Z., e Sousa C.R. Slicing and dicing viruses: antiviral RNA interference in mammals // EMBO J. 2019. Vol. 38, No. 8. ID e100941. doi: 10.15252/embj.2018100941
- Ma Z., Damania B. The cGAS-STING defense pathway and its counteraction by viruses // Cell Host Microbe. 2016. Vol. 19, No. 2. P. 150–158. doi: 10.1016/j.chom.2016.01.010
- Diner B.A., Lum K.K., Javitt A., Cristea I.M. Interactions of the Antiviral Factor Interferon Gamma-Inducible Protein 16. NIFI16 Mediate Immune Signaling and Herpes Simplex Virus-1 Immunosuppression // Mol Cell Proteomics. 2015. Vol. 14, No. 9. P. 2341–2356. doi: 10.1074/mcp.M114.047068
- van Gent M., Braem S.G.E., de Jong A., et al. Epstein-Barr virus large tegument protein BPLF1 contributes to innate immune evasion through interference with toll-like receptor signaling // PLoS Pathog. 2014. Vol. 10, No. 2. ID e1003960. doi: 10.1371/journal.ppat.1003960
- Hemann E.A., Green R., Turnbull J.B., et al. Interferon-λ modulates dendritic cells to facilitate T cell immunity ion with influenza A virus // Nat Immunol. 2019. Vol. 20. P. 1035–1045. doi: 10.1038/s41590-019-0408-z
- Hadjidj R., Badis A., Mechri S., et al. Purification, biochemical, and molecular characterization of novel protease from Bacillus licheniformis strain K7A // Int J Biol Macromol. 2018. Vol. 114. P. 1033–1048. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.03.167
- Behzadi P., García-Perdomo H.A., Karpiński T.M. Toll-Like Receptors: General Molecular and Structural Biology // J Immunol Res. 2021. Vol. 2021. ID 9914854. doi: 10.1155/2021/9914854
- Jeong Y.J., Baek S.C., Kim H. Cloning and characterization of a novel intracellular serine protease (IspK) from Bacillus megaterium with a potential additive for detergents // Int J Biol Macromol. 2018. Vol. 108. P. 808–816. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.10.173
Дополнительные файлы
