Метод ДНК-комет в диагностике фиброза печени при хроническом вирусном гепатите С


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В исследовании приняли участие 100 человек, которые были разделены на 6 групп в зависимости от выраженности фиброза печени по данным эластометрии: 1-я - F0, 2-я - F1, 3-я - F2, 4-я - F3, 5-я - F4. 6-ю (контрольную) группу составили 43 здоровых добровольца. Проведенное исследование показало взаимосвязь между стадией выраженности фиброза и степенью деструкции ДНК лимфоцитов периферической крови. Максимально процесс деструкции ДНК лимфоцитов периферической крови установлен у пациентов с хроническим вирусным гепатитом С с исходом в цирроз. Это позволило рассматривать метод ДНК-комет как перспективный дополнительный вспомогательный метод в оценке формирования фиброза печени.

Ключевые слова

Об авторах

Александр Федорович Попов

ГБОУ ВПО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: doctor.popov@mail.ru
доктор мед. наук, проф., проф. каф. инфекционных болезней 690002, г. Владивосток, просп. Острякова, 2, Россия

Александр Олегович Михайлов

ГБОУ ВПО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: mao1991@mail.ru
клинический интерн кафедры терапии, функциональной и ультразвуковой диагностики ФПКиППС 690002, г. Владивосток, проспект Острякова, 2

Надежда Семеновна Иванова

ГБОУ ВПО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

кандидат химических наук, доц., заведующая кафедрой общей и биологической химии 690002, г. Владивосток, проспект Острякова, 2

Анна Ивановна Симакова

ГБОУ ВПО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: anna-inf@yandex.ru
доктор медицинских наук, доцент, заведующая кафедрой инфекционных болезней 690002, г. Владивосток, проспект Острякова, 2

Список литературы

  1. Ostling O., Johanson K.J. Microelectrophoretic study of radiation-induced DNA damages in individual mammalian cells. Biochem Biophys Res Commun. 1984; 123 (1): 291-8.
  2. Singh N.P., McCoy M.T., Tice R.R., Schneider E.L. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells. Exp. Cell Res. 1988; 175 (1): 184-91.
  3. Olive P.L., Banath J.P., Durand R.E. Detection of etoposide resistance by measuring DNA damage in individual Chinese hamster cells. J. Natl Cancer Inst. 1990; 82 (9): 779-83.
  4. Кропотов А.В., Челомин В.П., Солодова В.В., Слободскова В.В., Михайлов А.О. Оценка генотоксичности тетрахлорметана и защитного действия силибинина и хаурантина с помощью метода ДНК-комет. Тихоокеанский медицинский журнал. 2013. 2: 63-6.
  5. Liang L.D., He T., Du T.W., Fan Y.G., Chen D.S., Wang Y. Ginsenoside Rg5 induces apoptosis and DNA damage in human cervical cancer cells. Mol. Med. Rep. 2015; 11 (2): 940-6.
  6. Buchynska L., Brieieva O., Glushchenko N., Vorobyova L., Bilyk O. DNA repair deficiency in peripheral blood lymphocytes of endometrial cancer patients with a family history of cancer. BMC Cancer. 2014; 14: 765.
  7. Guttikonda V.R., Patil R., Kumar G. DNA damage in peripheral blood leukocytes in tobacco users. J. Oral Maxillofac. Pathol. 2014; 18 (Suppl 1): S16-20.
  8. Xavier D.J., Takahashi P., Manoel-Caetano F.S., Foss-Freitas M.C., Foss M.C., Donadi E.A. et al. One-week intervention period led to improvements in glycemic control and reduction in DNA damage levels in patients with type 2 diabetes mellitus. Diabet. Res. Clin. Pract. 2014; 105 (3): 356-63.
  9. Мороз В.В., Решетняк В.И., Муравьева М.Ю., Жанатаев А.К., Марченков Ю.В., Дурнев А.Д. Обмен холестерина, ДНК- повреждения, апоптоз и некроз клеток в крови при тяжелой сочетанной травме. Общая реаниматология. 2008; 1: 7-11.
  10. Shawki S.M., Meshaal S.S., El Dash A.S., Zayed N.A., Hanna M.O. Increased DNA damage in hepatitis c virus-related hepatocellular carcinoma. DNA Cell Biol. 2014; 33 (12): 884-90.
  11. Grossi S., Sumberaz A., Gosmar M., Mattioli F., Testino G., Martelli A. DNA damage in peripheral blood lymphocytes of patients with cirrhosis related to alcohol abuse or to hepatitis B and C viruses. Eur. J. Gastroenterol. Hepatol. 2008; 20 (1): 22-5.
  12. Sakae P.N., Ihara S.S., Ribeiro D.A., de Carvalho L., Parise E.R. Insulin resistance is associated with DNA damage in peripheral blood cells in non-diabetic patients with genotype 1 chronic hepatitis C. Free Radic. Res. 2013; 47 (9): 750-6.
  13. Решетняк В.И., Шарафанова Т.И., Ильченко Л.Ю., Порошенко Г.Г. Исследование структуры ДНК лимфоцитов периферической крови у больных хроническими вирусными поражениями печени. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2002. 4: 459-62.
  14. Reshetnyak V.I., Sharafanova T.I., Ilchenko L.U., Golovanova E.V, Poroshenko G.G. Peripheral blood lymphocytes DNA in patients with chronic liver diseases. World J. Gastroenterol. 2001; 7 (2): 235-7.
  15. Oliveira A.C., Parise E.R., Catarino R.M., Lanzoni V., Leite-Mor M.M., Simon K.A. et al. Insulin resistance and not steatosis is associated with modifications in oxidative stress markers in chronic hepatitis C, non-3 genotype. Free Radic. Res. 2009; 43 (12): 1187-94.
  16. Farinati F., Cardin R., Degan P., De Maria N., Floyd R.A., Van Thiel D.H. et al. Oxidative DNA damage in circulating leukocytes occurs as an early event in chronic HCV infection. Free Radic. Biol. Med. 1999; 27 (11-12): 1284-91.
  17. Буеверов А.О. Апоптоз гепатоцитов и лейкоцитов периферической крови при хронических гепатитах В и С: Дис.. мед. наук. М.; 2009.

© ООО "Эко-вектор", 2015


 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах