Участие PAR2 в выходе медиаторов воспаления из эозинофилов крови человека

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Активируемые протеиназами рецепторы (PAR) относятся к семейству рецепторов, связанных с G-белками, и могут расщепляться некоторыми сериновыми протеазами с экспозицией фиксированного домена-лиганда, который связывает и активирует рецепторы, инициируя множественные сигнальные каскады. Имеются доказательства того, что некоторые протеазы могут регулировать клетки-мишени, активируя PAR, и есть много исследований, в которых показана важная роль PAR при воспалении. В одной из работ обнаружено, что ингибирование и делеция PAR2 значительно подавляют степень воспаления из-за снижения уровней IL-6 и IL-1β. Другое исследование также показало, что активация PAR может способствовать продукции активных форм кислорода и передаче сигналов MAPK, что приводит к альвеолярному воспалению. Кроме того, CAPN1 тромбоцитарного происхождения может инициировать воспаление сосудов, связанное с диабетом, посредством расщепления PAR1 и высвобождения TNFα с поверхности эндотелиальных клеток, а сарсасапогенин может ослаблять диабетическую нефропатию путем подавления PAR1. Показано, что экстракт коры Phellodendron amurense может подавлять индуцированный твердыми частицами приток Ca2+, что вызвано прямым воздействием на PAR2, ослабляет воспаление и поддерживает гомеостатические уровни факторов клеточной адгезии. Существуют также два других антагониста I-287 и GB88, которые могут уменьшать воспалительную реакцию, опосредованную PAR2. В настоящем исследовании мы оценивали экспрессию PAR и высвобождение IL-5, IL-6, RANTES и ECP из эозинофилов крови человека с использованием различных ферментов и агонистов PAR. Экспрессию PARs оценивали в эозинофилах крови человека с помощью проточной цитометрии и ОТ-ПЦР, а уровни цитокинов и эозинофильного катионного белка (ECP) в культивируемых супернатантах определяли с помощью наборов ELISA. Результаты проточной цитометрии показыва.т, что эозинофилы человека экспрессируют белок PAR2 и не экспрессируют белки PAR1, PAR3 и PAR4. Анализ с помощью ОТ-ПЦР выявил экспрессию генов PAR2 и PAR3 в эозинофилах человека. Триптаза, трипсин и эластаза могут индуцировать высвобождение IL-5, IL-6 и ЕСР в значительных количествах. Трипсин и эластаза также могут стимулировать секрецию RANTES, но триптаза неспособна индуцировать секрецию RANTES. Индуцированное триптазой, трипсином и эластазой высвобождение цитокинов и ЕСР из эозинофилов крови человека, скорее всего, происходит посредством активации PAR2.

Об авторах

Цинью Ху

Второй Народный Госпиталь

Email: wzy0222@gmail.com

бакалавр наук, директор Клинического лабораторного центра, постоянный сотрудник Второго Народного Госпиталя, Даньянг, Цзянсу, Китай

Китайская республика, Даньянг, Цзянсу

Хаоян Ванг

Департамент педиатрии, Университет Лаваль

Автор, ответственный за переписку.
Email: why1027cn@gmail.com

к.м.н., директор Исследовательского центра CHUL (CHUQ), постоянный сотрудник кафедры педиатрии, Университет Лаваль, Квебек, Канада

Канада, Квебек

Список литературы

  1. Avet C., Sturino C., Grastilleur S., Gouill C.L., Semache M., Gross F., Gendron L., Bennani Y., Mancini J.A., Sayegh C.E., Bouvier M. The PAR2 inhibitor I-287 selectively targets Gαq and Gα12/13 signaling and has anti-inflammatory effects. Commun. Biol., 2020, Vol. 3, no. 1, 719. doi: 10.1038/s42003-020-01453-8.
  2. Bagher M., Larsson-Callerfelt A.K., Rosmark O., Hallgren O., Bjermer L., Westergren-Thorsson G. Mast cells and mast cell tryptase enhance migration of human lung fibroblasts through protease-activated receptor 2. Cell Commun. Signal., 2018, Vol. 16, no. 1, 59. doi: 10.1186/s12964-018-0269-3.
  3. Bang E., Kim D.H., Chung H.Y. Protease-activated receptor 2 induces ROS-mediated inflammation through Akt-mediated NF-B and FoxO6 modulation during skin photoaging. Redox Biol., 2021, Vol. 44, 102022. doi: 10.1016/j.redox.2021.102022.
  4. Belibasakis G.N., Bostanci N., Reddi D. Regulation of protease-activated receptor-2 expression in gingival fibroblasts and Jurkat T cells by Porphyromonas gingivalis. Cell Biol. Int., 2010, Vol. 34, no. 3, pp. 287-292.
  5. Bolton S.J., McNulty C.A., Thomas R.J., Hewitt C.R., Wardlaw A.J. Expression of andfunctional responses to protease-activated receptors on human eosinophils. J. Leukoc. Biol.,2003, Vol. 74, no. 1, pp. 60-68.
  6. Brass L.F., Molino M. Protease-activated G protein-coupled receptors on human platelets and endothelial cells. Thromb. Haemost., 1997, Vol. 78, no. 1, pp. 234-241.
  7. Chhabra J., Li Y.Z., Alkhouri H., Blake A.E., Ge Q., Armour C.L., Hughes J.M. Histamine and tryptase modulate asthmatic smooth muscle GM-CSF and RANTES release. Eur. Respir. J., 2007, Vol. 29, no. 5, pp. 861-870.
  8. Choi J., Moon M.Y., Han G.Y., Chang M.S., Yang D., Cha J. Phellodendronamurense extract protects human keratinocytes from PM2.5-induced inflammation via PAR-2 Signaling. Biomolecules, 2020, Vol. 11, no. 1, 23. doi: 10.3390/biom11010023.
  9. de Almeida A.D., Silva I.S., Fernandes-Braga W., imaFilho A.C.M., Florentino R.O.M., Barra A., de Oliveira Andrade L., Leite M.F., Cassali G.D., Klein A. A role for mast cells and mast cell tryptase in driving neutrophil recruitment in LPS-induced lung inflammation via protease-activated receptor 2 in mice. Inflamm. Res., 2020, Vol. 69, no. 10, pp. 1059-1070.
  10. Dinh Q.T., Cryer A., Trevisani M., Dinh S., Wu S., Cifuentes L.B., Feleszko W.K., Williams A., Geppetti P., Fan Chung K., Heppt W., Klapp B.F., Fischer A. Gene and protein expression of protease-activated receptor 2 in structural and inflammatory cells in the nasal mucosa in seasonal allergic rhinitis. Clin. Exp. Allergy, 2006, Vol. 36, no. 8, pp. 1039-1048.
  11. Hansel T.T., de Vries I.J., Iff T., Rihs S., Wandzilak M., Betz S., Blaser K., Walker C. An improved immunomagnetic procedure for the isolation of highly purified human blood eosinophils. J. Immunol. Methods, 1991, Vol. 145, no. 1-2, pp. 105-110.
  12. He S., Zhang Z., Zhang H., Wei J., Yang L., Yang H., Sun W., Zeng X., Yang P. Analysis ofproperties and proinflammatory functions of cockroach allergens Per a 1.01s. Scand. J. Immunol., 2011, Vol. 74, no. 3, pp. 288-295.
  13. Hurley A., Smith M., Karpova T., Hasley R.B., Belkina N., Shaw S., Balenga N., Druey K.M., Nickel E., Packard B., Imamichi H., Hu Z., Follmann D., McNally J., Higgins J., Sneller M., Lane H.C., Catalfamo M. Enhanced effector function of CD8(+) T cells fromhealthy controls and HIV-infected patients occurs through thrombin activation of protease-activated receptor 1. J. Infect. Dis., 2013, Vol. 207, no. 4, pp. 638-650.
  14. Ishihara H., Connolly A.J., Zeng D., Kahn M.L., Zheng Y.W., Timmons C., Tram T., Coughlin S.R. Protease-activated receptor 3 is a second thrombin receptor in humans. Nature.,1997, Vol. 386, no. 6624, pp. 502-506.
  15. Kahn M.L., Zheng Y.W., Huang W., Bigornia V., Zeng D., Moff S., Farese R.V., Jr, Tam C,, Coughlin S.R. A dual thrombin receptor system for platelet activation. Nature, 1998, Vol. 394, no. 6694, pp. 690-694.
  16. Kalashnyk O., Petrova Y., Lykhmus O., Mikhalovska L., Mikhalovsky S., Zhukova A.,Gnatenko D., Bahou W., Komisarenko S., Skok M. Expression, function and cooperatingpartners of protease-activated receptor type 3 in vascular endothelial cells and B lymphocytes studied with specific monoclonal antibody. Mol. Immunol., 2013, Vol. 54, no. 3-4, pp. 319-326.
  17. Kim J.Y., Sohn J.H., Choi J.M., Lee J.H., Hong C.S., Lee J.S., Park J.W. Alveolar macrophages play a key role in cockroach-induced allergic inflammation via TNF- pathway. PLoS One, 2012, Vol. 7, no. 10, e47971. doi: 10.1371/journal.pone.0047971.
  18. Kim K.K., Turner R., Khazan N., Kodza A., Jones A., Singh R.K., Moore R.G. Role of trypsin and protease-activated receptor-2 in ovarian cancer. PLoS One, 2020, Vol. 15, no. 5, pp. e0232253. doi: 10.1371/journal.pone.0232253.
  19. Kim Y.H., Kang M.K., Lee E.J., Kim D.Y., Oh H., Kim S.I., Oh S.Y., Na W., Shim J.H., Kang I.J., Kang Y.H. Astragalin Inhibits Cigarette Smoke-Induced Pulmonary Thrombosis and Alveolar Inflammation and Disrupts PAR Activation and Oxidative Stress-Responsive MAPK-Signaling. Int. J. Mol. Sci., 2021, Vol. 22, no. 7, 3692. doi: 10.3390/ijms22073692.
  20. Koga H., Miyahara N., Fuchimoto Y., Ikeda G., Waseda K., Ono K., Tanimoto Y., Kataoka M., Gelfand E.W., Tanimoto M., Kanehiro A. Inhibition of neutrophil elastase attenuates airway hyperresponsiveness and inflammation in a mouse model of secondary allergen challenge: neutrophil elastase inhibition attenuates allergic airway responses. Respir. Res. 2013, Vol. 14, no. 1, 8. doi: 10.1186/1465-9921-14-8.
  21. Kyselova A., Elgheznawy A., Wittig I., Heidler J., Mann A.W., Ruf W., Fleming I., Randriamboavonjy V. Platelet-derived calpain cleaves the endothelial protease-activated receptor 1 to induce vascular inflammation in diabetes. Basic Res. Cardiol., 2020, Vol. 115, no. 6, 75. doi: 10.1007/s00395-020-00833-9.
  22. Luo J., Wu X., Liu H., Cui W., Guo W., Guo K., Guo H., Tao K., Li F., Shi Y., Feng D., Yan H., Gao G., Qu Y. Antagonism of Protease-Activated Receptor 4 Protects Against Traumatic Brain Injury by Suppressing Neuroinflammation via Inhibition of Tab2/NF-B Signaling. Neurosci. Bull., 2021, Vol. 37, no. 2, pp. 242-254.
  23. Matos N.A., Silva J.F., Matsui T.C., Damasceno K.A., Duarte I.D., Lemos V.S., Cassali G.D., Klein A. Mast cell tryptase induces eosinophil recruitment in the pleural cavity of mice via proteinase-activated receptor 2. Inflammation., 2013, Vol. 36, no. 6, pp. 1260-1267.
  24. Miike S., McWilliam A.S., Kita H. Trypsin induces activation and inflammatory mediator release from human eosinophils through protease-activated receptor-2. J. Immunol.,2001, Vol. 167, no. 11, pp. 6615-6622.
  25. Nystedt S., Emilsson K., Wahlestedt C., Sundelin J. Molecular cloning of a potential Proteinase activated receptor. Proc. Natl Acad. Sci. USA., 1994, Vol. 91, no. 20, pp. 9208-9212.
  26. Qiao L., Zhang H., Wu S., He S. Downregulation of protease activated receptor expression and cytokine production in P815 cells by RNA interference. BMC Cell Biol., 2009, Vol. 10, 62. doi: 10.1186/1471-2121-10-62.
  27. Rasmussen U.B., Vouret-Craviari V., Jallat S., Schlesinger Y., Pagès G., Pavirani A., LecocqJ.P., Pouysségur J., van Obberghen-Schilling E. cDNA cloning and expression of a hamster alpha-thrombin receptor coupled to Ca2+ mobilization. FEBS Lett., 1991, Vol. 288, no. 1-2, pp. 123-128.
  28. Roche N., Stirling R.G., Lim S., Oliver B.G., Oates T., Jazrawi E., Caramori G., Chung K.F. Effect of acute and chronic inflammatory stimuli on expression of protease-activated receptors 1 and 2 in alveolar macrophages. J. Allergy Clin. Immunol., 2003, Vol. 111, no. 2, pp. 367-373.
  29. Tang Z.Z., Zhang Y.M., Zheng T., Huang T.T., Ma T.F., Liu Y.W. Sarsasapogenin alleviatesdiabetic nephropathy through suppression of chronic inflammation by down-regulating PAR-1: In vivo and in vitro study. Phytomedicine, 2020, Vol. 78, 153314. doi: 10.1016/j.phymed.2020.153314.
  30. Vliagoftis H., Lacy P., Luy B., Adamko D., Hollenberg M., Befus D., Moqbel R. Mast cell tryptase activates peripheral blood eosinophils to release granule-associated enzymes. Int. Arch. Allergy Immunol., 2004, Vol. 135, no. 3, pp. 196-204.
  31. Vu T.K., Hung D.T., Wheaton V.I., Coughlin SR. Molecular cloning of a functional thrombin receptor reveals a novel proteolytic mechanism of receptor activation. Cell, 1991, Vol. 64, no. 6, pp. 1057-1068.
  32. Wang H., He S. Induction of lactoferrin and IL-8 release from human neutrophils by tryptic enzymes via proteinase activated receptor-2. Cell Biol. Int., 2006, Vol. 30, no. 9, pp. 688-697.
  33. Wang Y.J., Yu S.J., Tsai J.J., Yu C.H., Liao E.C. Antagonism of Protease Activated Receptor-2 by GB88 Reduces Inflammation Triggered by Protease Allergen Tyr-p3. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 557433. doi: 10.3389/fimmu.2021.557433.
  34. Wardlaw A.J., Brightling C., Green R., Woltmann G., Pavord I. Eosinophils in asthma and other allergic diseases. Br. Med. Bull., 2000, Vol. 56, no. 4, pp. 985-1003.
  35. Xu W.F., Andersen H., Whitmore T.E., Presnell S.R., Yee D.P., Ching A., Gilbert T., Davie E.W., Foster D.C. Cloning and characterization of human protease-activated receptor 4. Proc. Natl Acad. Sci. USA., 1998, Vol. 95, no. 12, pp. 6642-6646.
  36. Zhang H., Yang X., Yang H., Zhang Z., Lin Q., Zheng Y., Chen S., Yang P., He S. Modulation of mast cell proteinase-activated receptor expression and IL-4 release by IL-12. Immunol. Cell Biol., 2007, Vol. 85, no. 7, pp. 558-566.
  37. Zhu J., Miao X.R., Tao K.M., Zhu H., Liu Z.Y., Yu D.W., Chen Q.B., Qiu H.B., Lu Z.J. Trypsin-protease activated receptor-2 signaling contributes to pancreatic cancer pain. Oncotarget, 2017, Vol. 8, no. 37, pp. 61810-61823.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рисунок 1. Экспрессия белка PARs при анализе методом проточной цитометрии на эозинофилах человека.

Скачать (337KB)
Метаданные
3. Рисунок 2. Экспрессия мРНК PAR с помощью анализа ОТ-ПЦР в эозинофилах человека.

Скачать (232KB)
Метаданные
4. Рисунок 3. Влияние триптазы на высвобождение IL-5 из эозинофилов человека.

Скачать (105KB)
Метаданные
5. Рисунок 4. Влияние триптазы на высвобождение IL-6 из эозинофилов человека.

Скачать (107KB)
Метаданные
6. Рисунок 5. Влияние триптазы на высвобождение ЕСР из эозинофилов человека.

Скачать (107KB)
Метаданные
7. Рисунок 6. Влияние трипсина на высвобождение IL-5 из эозинофилов человека.

Скачать (111KB)
Метаданные
8. Рисунок 7. Влияние трипсина на высвобождение IL-6 из эозинофилов человека.

Скачать (112KB)
Метаданные
9. Рисунок 8. Влияние трипсина на высвобождение RANTES из эозинофилов человека.

Скачать (114KB)
Метаданные
10. Рисунок 9. Влияние трипсина на высвобождение ЕСР из эозинофилов человека.

Скачать (108KB)
Метаданные
11. Рисунок 10. Влияние эластазы на высвобождение IL-5 из эозинофилов человека.

Скачать (96KB)
Метаданные
12. Рисунок 11. Влияние эластазы на высвобождение IL-6 из эозинофилов человека.

Скачать (95KB)
Метаданные
13. Рисунок 12. Влияние эластазы на высвобождение RANTES из эозинофилов человека.

Скачать (103KB)
Метаданные
14. Рисунок 13. Влияние эластазы на высвобождение ЕСР из эозинофилов человека.

Скачать (104KB)
Метаданные
15. Рисунок 14. Влияние пептидов-агонистов PAR2 на высвобождение IL-5 из эозинофилов человека.

Скачать (135KB)
Метаданные
16. Рисунок 15. Влияние пептидов-агонистов PAR2 на высвобождение IL-6 из эозинофилов человека.

Скачать (137KB)
Метаданные
17. Рисунок 16. Влияние пептидов-агонистов PAR2 на высвобождение RANTES из эозинофилов человека.

Скачать (145KB)
Метаданные
18. Рисунок 17. Влияние пептидов-агонистов PAR2 на высвобождение ЕСР из эозинофилов человека.

Скачать (139KB)
Метаданные

© Ху Ц., Ванг Х., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах