Эффекты влияний рекомбинантного IFNα2b на уровень экспрессии CD16, CD66b, CD33, CD11b рецепторов нейтрофильных гранулоцитов условно-здоровых детей в эксперименте in vitro
- Авторы: Чудилова Г.А.1, Нестерова И.В.1,2, Русинова Т.В.1, Ковалева С.В.1, Ломтатидзе Л.В.1, Тараканов В.А.1, Веревкина В.С.1, Павленко В.1
-
Учреждения:
- Кубанский государственный медицинский университет
- Российский университет дружбы народов
- Выпуск: Том 21, № 3 (2018)
- Страницы: 486-492
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://journals.rcsi.science/1028-7221/article/view/119965
- DOI: https://doi.org/10.31857/S102872210002432-0
- ID: 119965
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Полифункциональность нейтрофильных гранулоцитов (НГ) является результатом богатой экипировки НГ структурами, тонко реагирующими на изменения экстрацеллюлярного окружения и внутриклеточных процессов. В настоящее время идет волна публикаций, отмечающих важность полноценного участия НГ в каскаде иммунологических реакций. При этом авторы отводят ключевую роль именно НГ как при запуске, так и последующей регуляции и реализации иммунного ответа. Показано существование различных популяций НГ, отличающихся по профилю оснащения мембранными антигенами и проявляющих различные фукциональные возможности. Целью настоящего исследования явилось изучение влияний рекомбинантного ИФНα2b (rIFNα2b) на нетрансформированную и экспериментально трансформированную в системе in vitro CD16+CD66b+CD33+CD11b+ субпопуляцию НГ в образцах периферической крови ус лов но-здо ро вых детей. Уровень экспрессии мембранных рецепторов НГ определяли методом проточной цитометрии. Проведена оценка изучаемых показателей нетрансформированных НГ (контроль) и НГ после инкубации с rIFNα2b и N-формил-метионил-лейцил-фенилаланином (fMLP). Установлено иммунорегуляторное влияние rIFNα2b на нетрансформированный фенотип CD16+CD66b+CD33+CD11b+НГ и иммуномодулирующие эффекты rIFNα2b в отношении fMLP-трансформированного фенотипа НГ периферической крови условно-здоровых детей.
Об авторах
Г. А. Чудилова
Кубанский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия
И. В. Нестерова
Кубанский государственный медицинский университет; Российский университет дружбы народов
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Т. В. Русинова
Кубанский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
С. В. Ковалева
Кубанский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Л. В. Ломтатидзе
Кубанский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
В. А. Тараканов
Кубанский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
В. С. Веревкина
Кубанский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
В. Павленко
Кубанский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Список литературы
- Scapini P., Marini O., Tecchio C., Cassatella M. A. Human neutrophils in the saga of cellular heterogeneity: insights and open questions. Immunol. Rev. 2016, 273(1) 48–60. doi: 10.1111/imr.12448.
- Kobayashi Y. Neutrophil biology: an update. EXCLI J. 2015, 14, 220–227. doi: 10.17179/excli2015–102.
- Нестерова И. В., Колесникова Н. В., Чудилова Г. А., Ломтатидзе Л. В., Ковалева С. В., Евглевский А. А., Нгуен Т. З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. (Часть 1). Инфекция и Иммунитет 2017, 7(3), 219– 230. doi: 10.15789/2220–7619–2017–3–219–230. [Nesterova I. V., Kolesnikova N. V., Chudilova G. A., Lomtatidze L. V., Kovaleva S. V., Yevglevsky A. A., Nguyen T. Z.L. A new look at neutrophilic granulocytes: rethinking old dogmas. (Part 1). Infection and immunity 2017, 7(3), 219–230. doi: 10.15789/2220–7619–2017–3–219–230. Russian].
- Garley M., Jablonska E. Heterogeneity among neutrophils. Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 2018, 66(1), 21–30. doi: 10.1007/s00005–017–0476–4.
- Нестерова И. В., Колесникова Н. В., Чудилова Г. А., Ломтатидзе Л. В., Ковалева С. В., Евглевский А. А., Нгуен Т. З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. (Часть 2). Инфекция и иммунитет 2018, 8(1), 7–18. doi: 10.15789/2220–7619–2018–1–7–18. [Nesterova I. V., Kolesnikova N. V., Chudilova G. A., Lomtatidze L. V., Kovaleva S. V., Yevglevsky A. A., Nguyen T. Z.L. A new look at neutrophilic granulocytes: rethinking old dogmas. (Part 2). Infection and immunity 2017, 7(3), 219–230. doi: 10.15789/2220–7619–2018–1–7–18. Russian].
- Elghetany M. Surface antigen changes during normal neutrophilic development: a critical review. Blood Cells Mol. Dis. 2002, 28 (2): 260–274. PMID: 12064921.
- Garnache-Ottou F., Chaperot L., Biichle S., Ferrand C., Remy-Martin J. P., Deconinck E., de Tailly P. D., Bulabois B., Poulet J., Kuhlein E., Jacob M. C., Salaun V., Arock M., Drenou B., Schillinger F., Seilles E., Tiberghien P., Bensa J. C., Plumas J., Saas P. Expression of the myeloid-associated marker CD33 is not an exclusive factor for leukemic plasmacytoid dendritic cells. Blood 2005, 105(3), 1256–1264. doi: 10.1182/blood-2004–06–2416.
- Hernandez-Caselles T., Martinez-Esparza M., Perez-Oliva A. B., Quintanilla-Cecconi A. M., Garcia-Alonso A., Alvarez-Lopez D. M., Garcia-Penarrubia P. A study of CD33 (SIGLEC-3) antigen expression and function on activated human T and NK cells: two isoforms of CD33 are generated by alternative splicing. Journal of Leukocyte Biology 2006, 79(1), 46–58. doi: 10.1189/jlb.0205096.
- Crocker P. R., Zhang J. New I-type lectins of the CD33- related siglec subgroup identifi ed through genomics. Biochemical Society Symposia 2002, 69; 83–94. doi: 10.1042/bss0690083.
- Bandura D. R., Baranov V. I., Ornatsky O. I., Antonov A., Kinach R., Udong Lou X., Pavlov S., Vorobiev S., Dick J. E. Mass cytometry: technique for real time single cell multitarget immunoassay based on inductively coupled plasma time-of-fl ight mass spectrometry. Analytical Chemistry 2009, 81, 6813–6822. doi: 10.1021/ac901049w.
- Ornatsky O., Bandura D., Baranov V., Nitz M., Winnik M. A., Tanner S. Highly multiparametric analysis by mass cytometry. J. Immunol. Methods 2010, 361(1–2), 1–20. doi: 10.1016/j.jim.2010.07.002.
- Schroder A. K., Uciechowski P., Fleischer D., Rink L. Crosslinking of CD66b on peripheral blood neutrophils mediates the release of interleukin-8 from intracellular storage. Hum. Immunol. 2006, 67(9), 676–682. doi: 10.1016/j.humimm.2006.05.004.
- Mandruzzato S., Brandau S., Britten C. M., Bronte V., Damuzzo V., Gouttefangeas C., Maurer D., Ottensmeier C., van der Burg S. H., Welters M. J., Walter S. Toward harmonized phenotyping of human myeloidderived suppressor cells by fl ow cytometry: results from an interim study. Cancer Immunol. Immunother. 2016, 65(2), 161–169. doi: 10.1007/s00262–015–1782–5.
- Zhang Y., Boesen C. C., Radaev S., Brooks A. G., Fridman W. H., Sautes-Fridman C., Sun P. D. Crystal structure of the extracellular domain of a human Fc?RIII”. Immunity. 2000, 13 (3), 387–95. doi: 10.1016/S1074–7613(00)00038–8.
- Нестерова И. В. Препараты интерферона альфа в клинической практике: когда и как. Лечащий врач 2017, 9, 66–76. https://www.lvrach.ru/2017/9/ [Nesterova I. V. Interferon alfa preparations in clinical practice: when and how. Treatment doctor 2017, 9, 66–76. https://www.lvrach.ru/2017/9/. Russian].
- Brandacher G., Margreiter D., Fuchs D. Implications of IFN-gamma-mediated tryptophan catabolism on solid organ transplantation. Curr. Drug Metab. 2007, 8(3), 273–282. PMID: 17430115.
- Sato T., Hongu T., Sakamoto M., Funakoshi Y., Kanaho Y. Molecular mechanisms of N-Formyl-Methionylleucyl- phenylalanine-induced superoxide generation and degranulation in mouse neutrophils: phospholipase D is dispensable. Mol. Cell Biol. 2013, 33(1), 136–145. doi: 10.1128/MCB.00869–12.
- Schmidt T., Brodesser A., Schnitzler N., Gruger T., Brandenburg K., Zinserling J., Zundorf J. CD66b overexpression and loss of C5a receptors as surface markers for Staphylococcus aureus-induced neutrophil dysfunction. PLoS ONE2015, 10(7), e0132703. doi: 10.1371/journal.pone.0132703.
