Оценка степени метилирования ДНК в лимфоцитах после однократного облучения крови in vitro
- Авторы: Цымбал О.С.1, Исубакова Д.С.1, Брониковская Е.В.1, Николаева А.Ф.2, Сигин В.О.2, Калинкин А.И.2, Кириллов В.М.2, Старцева Ж.А.3, Литвяков Н.В.1,3, Мильто И.В.1,4, Тахауов Р.М.1,4
-
Учреждения:
- Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства
- Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова Министерства науки и высшего образования Российской Федерации
- Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
- Сибирский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации
- Выпуск: Том 64, № 2 (2024)
- Страницы: 126-135
- Раздел: Материалы VII Международной научно-практической конференции “Медицинские и экологические эффекты ионизирующего излучения” (Томск, 21–22 марта 2023 г.)
- URL: https://journals.rcsi.science/0869-8031/article/view/266990
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0869803124020021
- EDN: https://elibrary.ru/NBNXKS
- ID: 266990
Цитировать
Аннотация
Метилирование ДНК является одним из процессов эпигенетической регуляции генома, который чувствителен к влиянию эндогенных и экзогенных факторов. Воздействие ионизирующего излучения на геном сопровождается изменением степени метилирования ДНК, которое может иметь дозозависимый характер и сохраняться длительное время после радиационного воздействия. Задачей исследования являлась оценка степени метилирования ДНК лимфоцитов крови после однократного воздействия γ-излучения в дозе 1.5 Гр с использованием широкогеномного бисульфитного секвенирования. В исследование было включено десять условно здоровых мужчин — работников объекта использования ионизирующего излучения, не подвергавшихся радиационному воздействию и не страдающих хроническими заболеваниями. Материалом служила цельная кровь: 0 Гр (контрольные образцы) и 1.5 Гр (экспериментальные образцы после воздействия γ-излучения). После облучения с последующим культивированием цельной крови проводили выделение ДНК и бисульфитное секвенирование ограниченных наборов геномных локусов (Reduced representation bisulfite sequencing) с использованием фермента рестрикции XmaI (XmaI-RRBS). Выявлен 41 ген, среди которых 26 генов (HOXD4, PADI2, FOXK1, FTCD, PRDM16, TOM1, PPP1R14A, FLNB, OR1F1, RARA, CRTAC1, AP5B1, ARL5C, NOC2L, MAMDC4, FGFRL1, PPFIA3, CUX2, ANKRD20A19P, FAM83H-AS1, CBFA2T3, POLN, MIR4458HG, FNBP1, SPIRE2 и ZSCAN10) имеют тенденцию к гипометилированию ДНК, а 15 генов (CHRNA4, SEPTIN9, ZNF174, ELK3, NFAM1, ALG10, SOX8, KLHL30, URI1, HBZ, KLF14, MYO16, MYEOV, DMKN и PAX7) имеют тенденцию к гиперметилированию ДНК, отмеченных по крайней мере у 50٪ экспериментальных образцов. Таким образом, выявленные в настоящем исследовании гены могут быть перспективными маркерами радиационного воздействия и в дальнейшем использоваться для разработки нового вида биологической дозиметрии – эпигеномной дозиметрии персонала, контактирующего в ходе своей профессиональной деятельности с источниками ионизирующего излучения.
Полный текст

Об авторах
Ольга Сергеевна Цымбал
Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства
Автор, ответственный за переписку.
Email: olga-tsymbal@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2311-0451
Россия, Северск
Дарья Сергеевна Исубакова
Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства
Email: isubakova.daria@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5032-9096
Россия, Северск
Евгения Владимировна Брониковская
Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства
Email: Bronikev@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6486-5025
Россия, Северск
Александра Фёдоровна Николаева
Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова Министерства науки и высшего образования Российской Федерации
Email: alex.ru97@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-3805-8879
Россия, Москва
Владимир Олегович Сигин
Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова Министерства науки и высшего образования Российской Федерации
Email: sigin.vladimir@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8020-3577
Россия, Москва
Алексей Игоревич Калинкин
Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова Министерства науки и высшего образования Российской Федерации
Email: alexeika2@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9215-4581
Россия, Москва
Владимир Михайлович Кириллов
Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова Министерства науки и высшего образования Российской Федерации
Email: 96vladkiri96@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8762-1322
Россия, Москва
Жанна Александровна Старцева
Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Email: zhanna.alex@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-4345-7719
Россия, Томск
Николай Васильевич Литвяков
Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства; Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Email: nvlitv72@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-0714-8927
Россия, Северск; Томск
Иван Васильевич Мильто
Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства; Сибирский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: milto_bio@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9764-4392
Россия, Северск; Томск
Равиль Манихович Тахауов
Северский биофизический научный центр Федерального медико-биологического агентства; Сибирский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: niirm2007@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1994-957X
Россия, Северск; Томск
Список литературы
- Калинкин А.И., Сигин В.О., Немцова М.В. и др. Аномальное деметилирование и эктопическая экспрессия генов лейкотриеновых рецепторов LTB4R/LTB4R2 при раке молочной железы. Мед. генетика. 2021;20(8):21–30. [Kalinkin A.I., Sigin V.O., Nemtsova M.V. et al. Abnormal demethylation and ectopic expression of leukotriene receptors genes LTB4R/LTB4R2 in breast cancer. Medical Genetics. 2021;20(8):21–30. (In Russ.)]. https://doi.org/10.25557/2073-7998.2021.08.21-30
- Lee Y., Kim Y.J., Choi Y.J. et al. Radiation-induced changes in DNA methylation and their relationship to chromosome aberrations in nuclear power plant workers. Int. J. Radiat. Biol. 2015;91(2):142–149. https://doi.org/10.3109/09553002.2015.969847
- Кузьмина Н.С., Мязин А.Е., Лаптева Н.Ш., Рубанович А.В. Изучение аберрантного метилирования в лейкоцитах крови ликвидаторов аварии на ЧАЭС. Радиац. биология. Радиоэкология. 2014;54(2):127–139. [Kuzmina N.S., Myazin A.E., Lapteva N.S., Rubanovich A.V. Study of aberrant methylation in blood leukocytes of liquidators of the chernobyl accident. Radiat. Biology. Radioecology. 2014;54(2):127–139. (In Russ.)]. https://doi.org/10.7868/S0869803114020064
- Kuzmina N.S., Lapteva N.Sh., Rubanovich A.V. Hypermethylation of gene promoters in peripheral blood leukocytes in humans long term after radiation exposure. Environ. Res. 2016;146:10–17. https://doi.org/10.1016/ j.envres.2015.12.008
- Кузьмина Н.С., Лаптева Н.Ш., Русинова Г.Г. и др. Дозовая зависимость гиперметилирования промоторов генов в лейкоцитах крови лиц, подвергшихся облучению в результате профессиональной деятельности: Мат. Рос. конф. с междунар. участием “Современные проблемы радиационной генетики”. Дубна, 2019. Дубна: Изд-во Объединенный институт ядерных исследований, 2019. С. 76–78. [Kuzmina N.S., Lapteva N.Sh., Rusinova G.G. et al. Dose dependence of hypermethylation of gene promoters in blood leukocytes in humans occupationally exposed to radiation. Materials of the Russian conference with international participation “Modern problems of radiation genetics”: Conf. proc. Dubna, 2019. Dubna: Izd-vo Joint Institute for Nuclear Research, 2019. Р. 76–78. (In Russ.)].
- Цымбал О.С., Исубакова Д.С., Брониковская Е.В. и др. Роль метилирования Bak1 в индукции хромосомных аберраций при хроническом низкоинтенсивном внешнем облучении. Мед. радиология и радиац. безопасность. 2020;65(5):29–34. [Tsymbal O.S., Isubakova D.S., Bronikovskaya E.V., et al. The role of Bak1 methylation in the induction of chromosomal aberrations under chronic low-intensity external radiation. Medical Radiology and Radiation Safety. 2020;65(5):29–34. (In Russ.)]. https://doi.org/10.12737/1024-6177-2020-65-5-29-34
- Kennedy E.M., Powell D.R., Li Z. et al. Galactic cosmic radiation induces persistent epigenome alterations relevant to human lung cancer. Sci. Rep. 2018;8(1):6709. https://doi.org/10.1038/s41598-018-24755-8
- Tanas A.S., Borisova M.E., Kuznetsova E.B. et al. Rapid and affordable genome-wide bisulfite DNA sequencing by XmaI-reduced representation bisulfite sequencing. Epigenomics. 2017;9(6): 833–847. https://doi.org/10.2217/epi-2017-0031
- Suomi T., Seyednasrollah F., Jaakkola M.K. et al. ROTS: An R package for reproducibility-optimized statistical testing. PLoS Comput. Biol. 2017;13(5):e1005562. https://doi.org/10.1371/journal.pcbi.1005562
- Andrews S. FastQC: a quality control tool for high throughput sequence data. 2010. Available at: http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc. Accessed October 19, 2022.
- R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria. 2020. Available at: https://www.R-project.org/. Accessed December 20, 2022.
- Chen Y., Wu J., Liang G. et al. CHK2-FOXK axis promotes transcriptional control of autophagy programs. Sci. Advances. 2020;6(1):eaax5819. https://doi.org/10.1126/sciadv.aax5819
- Cao H., Chu X., Wang Zh. et al. High FOXK1 expression correlates with poor outcomes in hepatocellular carcinoma and regulates stemness of hepatocellular carcinoma cells. Life Sci. 2019;228:128–134. https://doi.org/10.1016/ j.lfs.2019.04.068
- Atsem St., Reichenbach J., Potabattula R. et al. Paternal age effects on sperm FOXK1 and KCNA7 methylation and transmission into the next generation. Hum. Mol. Genet. 2016;25(22):4996–5005. https://doi.org/10.1093/hmg/ddw328
- Reichenbach J.R. Paternal age effects on sperm DNA methylation and its impact on the next generation. [dissertation for Doctoral] Würzburg; 2020. 106 р. Available at: https://www.researchgate.net/publication/339375571_Paternal_age_effects_on_sperm_DNA_methylation_and_its_impact_on_the_next_generation Accessed February 2, 2023.
- Steinauer N., Guo Ch., Zhang J. The transcriptional corepressor CBFA2T3 inhibits all-trans-retinoic acid-induced myeloid gene expression and differentiation in acute myeloid leukemia. J. Biol. Chem. 2020;295(27):8887–8900. https://doi.org/10.1074/jbc.RA120.013042
- Calender A., Farnier P.A.R., Buisson A. et al. Whole exome sequencing in three families segregating a pediatric case of sarcoidosis. BMC Med. Genomics. 2018;11(1):23. https://doi.org/10.1186/s12920-018-0338-x
- [Matsuoka M. Mechanism of oncogenesis by human T-cell leukemia virus type 1. Gan To Kagaku Ryoho. 2010;37(1):10–13. (in Japan.)].
- [Fang F., Yu X.L., Niu D.S., Li J. Screening of candidate genes related to low-dose ionizing radiation based on transcriptome-proteome correlation research techniques. Chinese Journal of Industrial Hygiene and Occupational Diseases. 2021;39(10):738–743. (in Chinese)]. https://doi.org/0.3760cma.j.cn121094-20200518-00267
- Chaudhry M.A., Omaruddin R.A. Differential DNA methylation alterations in radiation-sensitive and -resistant cells. DNA Cell Biol. 2012;31(6):908–916. https://doi.org/10.1089/dna.2011.1509
- Bae J.-H., Kim J.-G., Heo K. et al. Identification of radiation-induced aberrant hypomethylation in colon cancer. BMC Genomics. 2015;16(1):56. https://doi.org/10.1186/s12864-015-1229-6
- Velpula K.K., Gogineni V.R., Nalla A.K. et al. Radiation-induced hypomethylation triggers urokinase plasminogen activator transcription in meningioma cells. Neoplasia. 2013;15(2):192–203 https://doi.org/10.1593/neo.121334
- Кузьмина Н.С., Лаптева Н.Ш., Русинова Г.Г. и др. Гиперметилирование промоторов генов в лейкоцитах крови человека в отдаленный период после перенесенного радиационного воздействия. Радиац. биология. Радиоэкология. 2017;54(4):341–356. [Kuzmina N.S., Lapteva N.Sh., Rusinova G.G., et al. Hypermethylation of gene promoters in blood leukocytes in humans in the remote period after radiation exposure. Radiat. Biology. Radioecology. 2017;54(4):341–356. (In Russ.)]. https://doi.org/10.7868/S0869803117040014
- Kuzmina N.S., Lapteva N.Sh., Rusinova G.G. et al. Gene hypermethylation in blood leukocytes in humans long term after radiation exposure – Validation set. Environ. Pollut. 2018;234:935–942. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2017.12.039
- Chen X., Liu L., Mims J. et al. Analysis of DNA methylation and gene expression in radiation-resistant head and neck tumors. Epigenetics. 2015;10(6):545–561. https://doi.org/10.1080/15592294.2015.1048953
- Zhao F., Olkhov-Mitsel E., van der Kwast T. et al. Urinary DNA methylation biomarkers for noninvasive prediction of aggressive disease in patients with prostate cancer on active surveillance. J. Urology. 2017;197(2):335–341. https://doi.org/10.1016/j.juro.2016.08.081
- Patel P.G., Wessel Th., Kawashima A. et al. A three-gene DNA methylation biomarker accurately classifies early stage prostate cancer. Prostate. 2019;79(14):1705–1714. https://doi.org/10.1002/pros.23895
- Mian O.Y., Khattab M.H., Hedayati M. et al. GSTP1 Loss results in accumulation of oxidative DNA base damage and promotes prostate cancer cell survival following exposure to protracted oxidative stress. Prostate. 2016;76(2):199–206. https://doi.org/10.1002/pros.23111
Дополнительные файлы
