АНАЛИЗ НЕОПРЕДЕЛЕННОСТЕЙ РАСЧЕТОВ ЭФФЕКТИВНОСТИ РАДИАЦИОННЫХ ПОВРЕЖДЕНИЙ ДНК

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Компьютерные вычисления эффективности образования радиационно-индуцированных повреждений ДНК достаточно широко востребованы в радиобиологии и биомедицине. Методы расчета основаны на молекулярных представлениях об образовании разрывов, структуре ДНК и информации о распределении поглощенной энергии излучения в ядре клетки. Поскольку расчетные данные используют разные предпосылки, постулаты и алгоритмы, сопоставление точности расчетов по разным схемам часто затруднено, как и определение параметров моделей разрывов с учетом разброса экспериментальных данных. В данной работе проведен сравнительный анализ предсказаний двух базовых моделей структуры ДНК, молекулярной и субобъемной, использующих различные предположения о механизме образования одно- и двунитевых разрывов ДНК, на примере облучения фрагментов ДНК протонами и α-частицами. Расчеты эффективности радиационных повреждений ДНК, учитывающие вклады прямого и квазипрямого действия, молекулярную структуру ДНК и стохастическую структуру трека заряженных частиц, показывают зависимость частот повреждений ДНК от параметров моделей. Найдены области параметров, где предсказания моделей согласуются или отличаются друг от друга.

Об авторах

Ю. А. Эйдельман

Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН; Национальный исследовательский ядерный университет МИФИ

Email: andreev_sg@mail.ru
Россия, Москва; Россия, Москва

И. В. Сальников

Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН

Email: andreev_sg@mail.ru
Россия, Москва

С. Г. Андреев

Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН; Национальный исследовательский ядерный университет МИФИ

Автор, ответственный за переписку.
Email: andreev_sg@mail.ru
Россия, Москва; Россия, Москва

Список литературы

  1. Fairbairn D.W., Olive P.L., O’Neill K.L. The comet assay: a comprehensive review // Mutat. Res. 1995. V. 339. № 1. P. 37–59. https://doi.org/10.1016/0165-1110(94)00013-3
  2. Stenerlöw B., Blomquist E., Grusell E. et al. Rejoining of DNA double-strand breaks induced by accelerated nitrogen ions // Int. J. Radiat. Biol. 1996. V. 70. № 4. P. 413–420. https://doi.org/10.1080/095530096144888
  3. Stenerlöw B., Höglund E., Carlsson J., Blomquist E. Rejoining of DNA fragments produced by radiations of different linear energy transfer // Int. J. Radiat. Biol. 2000. V. 76. № 4. P. 549–57.https://doi.org/10.1080/095530000138565
  4. Ivashkevich A.N., Martin O.A., Smith A.J. et al. γH2AX foci as a measure of DNA damage: a computational approach to automatic analysis // Mutat. Res. 2011. V. 711. № 1–2. P. 49–60. https://doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2010.12.015
  5. Charlton D.E., Nikjoo H., Humm J.L. Calculation of initial yields of single- and double-strand breaks in cell nuclei from electrons, protons and alpha particles // Int. J. Radiat. Biol. 1989. V. 56. № 1. P. 1–19. https://doi.org/10.1080/09553008914551141
  6. Pomplun E. A new DNA target model for track structure calculations and its first application to I–125 Auger electrons // Int. J. Radiat. Biol. 1991. V. 59. № 3. P. 625–642. https://doi.org/10.1080/09553009114550561
  7. Khvostunov I.K., Andreev S.G., Pitkevich V.A., Chepel V.Yu. Novel algorithm for analysis of DNA and chromatin damage induced by ionising with different quality // Proc. of 10th Int. Congr. Radiation Research / Eds U. Hagen, D. Harder, H. Jung, C.S. Streffer. Wurzburg, 1995. V. 2. P. 254–257.
  8. Friedland W., Jacob P., Paretzke H.G., Stork T. Monte Carlo simulation of the production of short DNA fragments by low-linear energy transfer radiation using higher-order DNA models // Radiat. Res. 1998. V. 150. № 2. P. 170–182. https://doi.org/10.2307/3579852
  9. Nikjoo H., O’Neill P., Wilson W.E., Goodhead D.T. Computational approach for determining the spectrum of dNA Damage induced by ionizing radiation // Radiat. Res. 2001. V. 156. №5. Part 2. P. 577–583. https://doi.org/10.1667/0033-7587(2001)156[0577:cafdts]2.0.co;2
  10. Henthorn N.T., Warmenhoven J.W., Sotiropoulos M. et al. Nanodosimetric simulation of direct ion-induced DNA damage using different chromatin geometry models // Radiat. Res. 2017. V. 188. № 6. P. 690–703. https://doi.org/10.1667/RR14755.1
  11. Zhu H., McNamara A.L., McMahon S.J. et al. Cellular response to proton irradiation: a simulation study with TOPAS-nBio // Radiat. Res. 2020. V. 194. № 1. P. 9–21. https://doi.org/10.1667/RR15531.1
  12. Kyriakou I., Sakata D., Tran H.N. et al. Review of the Geant4-DNA Simulation toolkit for radiobiological applications at the cellular and DNA level // Cancers (Basel). 2021. V. 14. № 1. P. 35. https://doi.org/10.3390/cancers14010035
  13. Shin W.-G., Sakata D., Lampe N. et al. A Geant4-DNA evaluation of radiation-induced DNA damage on a human fibroblast // Cancers (Basel). 2021. V. 13. № 19. P. 4940. https://doi.org/10.3390/cancers13194940
  14. Mokari M., Moeini H., Soleimani M. et al. Calculation of microdosimetric spectra for protons using Geant4-DNA and a μ-randomness sampling algorithm for the nanometric structures // Int. J. Radiat. Biol. 2021. V. 97. № 2. P. 208–218. https://doi.org/10.1080/09553002.2021.1854488
  15. Friedland W., Jacob P., Bernhardt P. et al. Simulation of DNA damage after proton irradiation // Radiat. Res. 2003. V. 159. № 3. P. 401–410. https://doi.org/10.1667/0033-7587(2003)159[0401:soddap]2.0.co;2
  16. Incerti S., Baldacchino G., Bernal M. et al. The Geant4-DNA project // Int. J. Model. Simul. Sci. Comput. 2010. V. 1. № 2. P. 157–178. https://doi.org/10.1142/S1793962310000122
  17. Chandrasekaran R., Arnott S. The structure of B-DNA in oriented fibers // J. Biomolec. Struct. Dynam. 1996. V. 13. № 6. P. 1015–1027. https://doi.org/10.1080/07391102.1996.10508916
  18. ICRU report 49. Stopping powers and ranges for protons and alpha particles. International Commission on Radiation Units and Measurements, Bethesda, Maryland, USA, 1993. 295 p.
  19. Андреев С.Г., Эйдельман Ю.А., Хвостунов И.К. и др. Биофизическое моделирование радиационных повреждений генетических структур клетки // Радиац. биология. Радиоэкология. 2005. Т. 45. № 5. С. 549–560. [Andreev S.G., Eidelman Yu.A., Salnikov I.V., Khvostunov I.K. et al. The biophysical modeling of radiation induced genetic damage // Radiats. Biol. Radioecol. 2005. V. 45. № 5. P. 549–560. (In Russ.)]
  20. Andreev S.G., Eidelman Yu.A., Salnikov I.V., Khvostu-nov I.K. Mechanistic modelling of genetic and epigenetic events in radiation carcinogenesis // Radiat. Prot. Dosim. 2006. V. 122. № 1–4. P. 335–339. https://doi.org/10.1093/rpd/ncl463
  21. Prise K.M., Ahnström G., Belli M. et al. A review of dsb induction data for varying quality radiations // Int. J. Radiat. Biol. 1998. V. 74. № 2. P. 173–184. https://doi.org/10.1080/095530098141564
  22. Frankenberg D., Brede H.J., Schrewe U.J. et al. Induction of DNA double-strand breaks by 1H and 4He lons in primary human skin fibroblasts in the LET range of 8 to 124 keV/microm// Radiat. Res. 1999. V. 151. № 5. P. 540–549. https://doi.org/10.2307/3580030
  23. Belli M., Cherubini R., Dalla Vecchia M. et al. DNA DSB induction and rejoining in V79 cells irradiated with light ions: a constant field gel electrophoresis study // Int. J. Radiat. Biol. 2000. V. 76. № 8. P. 1095–1104. https://doi.org/10.1080/09553000050111569

Дополнительные файлы


© Ю.А. Эйдельман, И.В. Сальников, С.Г. Андреев, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах