Preparation of Phage Antibodies to Heat Shock Proteins and Studying the Dynamics of their Accumulation in Mice with Xenotransplant Tumors

L. A. Dykman; Дыкман Л. А.; S. A. Staroverov; Староверов С. А.; R. D. Vyrshchikov; Вырщиков Р. Д.; K. K. Fursova; Фурсова К. К.; F. A. Brovko; Бровко Ф. А.; D. A. Soldatov; Солдатов Д. А.; O. I. Guliy; Гулий О. И.

doi:10.31857/S0555109923040050

Получение фаговых антител на белки теплового шока, динамика накопления у мышей с ксенотрансплантированными опухолями

Авторы: Дыкман Л.А.¹, Староверов С.А.¹^,2, Вырщиков Р.Д.¹, Фурсова К.К.³, Бровко Ф.А.³, Солдатов Д.А.², Гулий О.И.¹
Учреждения:
1. Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов – обособленное структурное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки ФИЦ “Саратовский научный центр РАН”
2. Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии им. Н.И. Вавилова
3. Филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки Института биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН
Выпуск: Том 59, № 4 (2023)
Страницы: 410-417
Раздел: Статьи
URL: https://journals.rcsi.science/0555-1099/article/view/138797
DOI: https://doi.org/10.31857/S0555109923040050
EDN: https://elibrary.ru/QYSAXC
ID: 138797

Цитировать

Полный текст

Аннотация
Об авторах
Список литературы
Дополнительные файлы
Статистика

Аннотация

С использованием “наивной” фаговой библиотеки scFv человека проведена аффинная селекция миниантител, специфичных к белкам теплового шока, выделенным из клеток гепатомы линии МН22а и плазмоцитомы линии Sp2/0-Ag14 мыши. С помощью полученных фаговых антител методами дот-иммуноанализа и твердофазного иммуноферментного анализа изучена динамика концентрации белков теплового шока в сыворотке крови мышей с имплантированными опухолевыми клетками линии МН22а. Начиная с 14 сут после ксенотрасплантации, наблюдался постепенный рост уровня белков теплового шока в сыворотке крови. Установлено, что после имплантирования опухолевых клеток рост опухоли сопровождался достоверным повышением накопления белков теплового шока в сыворотке крови. Показано, что миниантитела, специфичные к белкам теплового шока, являются эффективным инструментом для определения и мониторинга накопления белков теплового шока в сыворотке крови животных.

Ключевые слова

белки теплового шока, фаговая библиотека антител, культуры опухолевых клеток, ксенотрансплантированные опухоли, иммуноанализ

Об авторах

Л. А. Дыкман

Email: guliy_olga@mail.ru
Россия, 410049, Саратов

С. А. Староверов

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов – обособленное
структурное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки
ФИЦ “Саратовский научный центр РАН”; Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии
и инженерии им. Н.И. Вавилова

Email: guliy_olga@mail.ru
Россия, 410049, Саратов; Россия, 410012, Саратов

Список литературы

Schlesinger M.J. // J. Biol. Chem. 1990. V. 265. № 21. P. 12111–12114.
Richter K., Haslbeck M., Buchner J. // Mol. Cell. 2010. V. 40. P. 253–266.
Albakova Z., Siam M.K.S., Sacitharan P.K., Ziganshin R.H., Ryazantsev D.Y., Sapozhnikov A.M. // Transl. Oncol. 2021. V. 14. № 2. 100995. https://doi.org/10.1016/j.tranon.2020.100995
Arrigo A.P., Gibert B. // Cancers. 2014. V. 6. P. 333–365.
Calderwood S.K., Gong J. // Trends Biochem. Sci. 2016. V. 41. P. 311–323.
Das J.K., Xiong X., Ren X., Yang J.-M., Song J. // J. Oncol. 2019. V. 2019. 3267207.https://doi.org/10.1155/2019/3267207
Hu C., Yang J., Qi Z., Wu H., Wang B., Zou F., Mei H., Liu J., Wang W., Liu Q. // MedComm. 2022. V. 3. № 3. e161. https://doi.org/10.1002/mco2.161
Staroverov S.A., Kozlov S.V., Brovko F.A., Fursova K.K., Shardin V.V., Fomin A.S. et al. // Biosens. Bioelectron. X. 2022. V. 11. 100211. https://doi.org/1.1016/j.biosx.2022.100211
Murshid A., Gong J., Stevenson M.A., Calderwood S.K. // Expert Rev. Vaccines. 2011. V. 10. № 11. P. 1553–1568.
Троицкая О.С., Новак Д.Д., Рихтер В.А., Коваль О.А. // Acta Naturae. 2022. Т. 14. № 1. С. 40–53.
Shevtsov M., Multhoff G. // Front. Immunol. 2016. V. 7. P. 171. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00171
Komarova E.Y., Suezov R.V., Nikotina A.D., Aksenov N.D., Garaeva L.A., Shtam T.A. et al // Sci. Rep. 2021. V. 11. 21314. https://doi.org/10.1038/s41598-021-00734-4
Tsan M.F., Gao B. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2004. V. 286. № 4. P. C739–C744.
Maki R.G., Livingston P.O., Lewis J.J., Janetzki S., Klimstra D., Desantis D., Srivastava P.K., Brennan M.F. // Dig. Dis. Sci. 2007. V. 52. № 8. P. 1964–1972.
Bolhassani A., Rafati S. // Expert Rev. Vaccines. 2008. V. 7. № 8. P. 1185–1199.
Kang J., Lee H.-J., Lee J., Hong J., Kim Y.H., Disis M.L., Gim J.-A., Park K.H. // J. Immunother. Cancer. 2022. V. 10. e004702. https://doi.org/10.1136/jitc-2022-004702
Alberti G., Vergilio G., Paladino L., Barone R., Cappello F., de Macario E.C. et al. // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. 7792. https://doi.org/10.3390/ijms23147792
Testori A., Richards J., Whitman E., Mann G.B., Lutzky J., Camacho L. et al. // J. Clin. Oncol. 2008. V. 26. № 6. P. 955–962.
Lin M.J., Svensson-Arvelund J., Lubitz G.S., Marabelle A., Melero I., Brown B.D., Brody J.D. // Nat. Cancer. 2022. V. 3. P. 911–926.
Fritah H., Rovelli R., Chiang C.L.-L., Kandalaft L.E. // Cancer Treat. Rev. 2022. V. 106. 102383. https://doi.org/10.1016/j.ctrv.2022.102383
Liu J., Fu M., Wang M., Wan D., Wie Y., Wei X. // J. Hematol. Oncol. 2022. V. 15. P. 28. https://doi.org/10.1186/s13045-022-01247-x
Dykman L.A., Staroverov S.A., Kozlov S.V., Fomin A.S., Chumakov D.S., Gabalov K.P. et al. // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. № 22. 14313. https://doi.org/10.3390/ijms232214313
Jolly C., Morimoto R.I. // J. Natl. Cancer Inst. 2000. V. 92. № 19. P. 1564–1572.
Yun C.W., Kim H.J., Lim J.H., Lee S.H. // Cells. 2020. V. 9. № 1. P. 60. https://doi.org/10.3390/cells9010060
Cornford P.A., Dodson A.R., Parsons K.F., Desmond A.D., Woolfenden A., Fordham M., Neoptolemos J.P., Ke Y. // Cancer Res. 2000. V. 60. № 24. P. 7099–7105.
Saini J., Sharma P.K. // Curr. Drug Targets. 2017. V. 19. № 13. P. 1478–1490.
Ciocca D.R., Calderwood S.K. // Cell Stress Chaperon. 2005. V. 10. № 2. P. 86–103.
Seigneuric R., Mjahed H., Gobbo J., Joly A.-L., Berthenet K., Shirley S., Garrido C. // Front. Oncol. 2011. V. 1. P. 37. https://doi.org/10.3389/fonc.2011.00037
Ramirez-Valles E.G., Rodríguez-Pulido A., Barraza-Salas M., Martínez-Velis I., Meneses-Morales I., Ayala-García V.M., Alba-Fierro C.A. // Technol. Cancer Res. Treat. 2020. V. 19. 1533033820957033. https://doi.org/10.1177/1533033820957033
Mahato K., Maurya P.K., Chandra P. // 3 Biotech. 2018. V. 8. P. 149. https://doi.org/10.1007/s13205-018-1148-8
Cavallaro S., Horak J., Hååg P., Gupta D., Stiller C., Sahu S.S., Görgens A. et al. // ACS Sens. 2019. V. 4. № 5. P. 1399–1408.
Baghbaderani S.S., Mokarian P., Moazzam P. // Curr. Anal. Chem. 2022. V. 18. № 1. P. 63–78.
Smith G.P. // Science. 1985. V. 228. № 4705. P. 1315–1317.
McCafferty J., Griffiths A.D., Winter G., Chiswell D.J. // Nature. 1990. V. 348. № 6301. P. 552–554.
Zhao F., Shi R., Liu R., Tian Y., Yang Z. // Food Chem. 2021. V. 339. 128084. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.128084
Ye J., Guo J., Li T., Tian J., Yu M., Wang X. et al. // Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 2022. V. 21. № 2. P. 1843–1867.
Guliy O.I., Evstigneeva S.S., Dykman L.A. // Biosens. Bioelectron. 2023. V. 222. 114909. https://doi.org/10.1016/j.bios.2022.114909
Trilling A.K., De Ronde H., Noteboom L., Van Houwelingen A., Roelse M., Srivastava S.K. et al // PLoS One. 2011. V. 6. № 10. e26754. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0026754
Vostakolaei M.A., Molavi O., Hejazi M.S., Kordi S., Rahmati S., Barzegari A., Abdolalizadeh J. // J. Cell. Biochem. 2019. V. 120. № 9. P. 14711–14724.
Skarga Y., Vrublevskaya V., Evdokimovskaya Y., Morenkov O. // Biomed. Chromatogr. 2009. V. 23. № 11. P. 1208–1216.
Aguilera R., Saffie C., Tittarelli A., Gonzalez F.E., Ramírez M., Reyes D. et al. // Clin. Cancer Res. 2011. V. 17. № 8. P. 2474–2483.
Улитин А.Б., Капралова М.В., Ламан А.Г., Шепеляковская А.О., Булгакова Е.В., Фурсова К.К. и др. // Доклады Академии наук. 2005. Т. 405. № 4. С. 555–558.
Staroverov S.A., Kozlov S.V., Fomin A.S., Gabalov K.P., Khanadeev V.A., Soldatov D.A. et al. // ADMET & DMPK. 2021. V. 9. № 4. P. 255–266.
Frens G. // Nature Phys. Sci. 1973. V. 241. P. 20–22.
Дыкман Л.А., Богатырев В.А. // Биохимия. 1997. Т. 62. № 4. С. 411–418.
Shah K., Maghsoudlou P. // Br. J. Hosp. Med. 2016. V. 77. № 7. P. C98–C101.
Gunther S., Ostheimer C., Stang S., Specht H.M., Mozes P., Jesinghaus M. et al // Front. Immunol. 2015. V. 6. P. 556. https://doi.org/10.3389/fimmu.2015.00556
Romanucci M., Bastow T., Della Salda L. // Cell Stress Chaperon. 2008. V. 13. № 3. P. 253–262.
Ramkaran, Preeti, Kumar R., Kumar S., Gera S. // Pharma Innov. J. 2019. V. 8. № 2. P. 431–434.
Petrenko V.A., Gillespie J.W., Xu H., O’Dell T., De Plano L.M. // Viruses. 2019. V. 11. 785. https://doi.org/10.3390/v11090785
Yu Q., Zhao Q., Wang S., Zhao S., Zhang S., Yin Y., Dong Y. // Anal. Biochem. 2020. V. 594. 113591. https://doi.org/10.1016/j.ab.2020.113591
Djebbi K., Xing J., Weng T., Bahri M., Elaguech M.A., Du C. et al // Anal. Chim. Acta. 2022. V. 1208. 339778. https://doi.org/10.1016/j.aca.2022.339778
Li Y., Hu K., Yu Y., Rotenberg S.A., Amatore C., Mirkin M.V. // J. Am. Chem. Soc. 2017. V. 139. № 37. P. 13055–13062.
Vaneev A.N., Gorelkin P.V., Garanina A.S., Lopatukhina H.V., Vodopyanov S.S., Alova A.V. et al. // Anal. Chem. 2020. V. 92. P. 8010−8014.