Влияние S-нитрозоглутатиона на количество и активность эритроидного ядерного фактора Nrf2 в клетках гепатоцеллюлярной карциномы человека

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

S-нитрозоглутатион (GSNO) является эндогенным донором оксида азота (NO), который, в свою очередь, может выступать как в качестве сигнальной молекулы, так и токсического агента, образуя активные формы азота (АФА). Целью данного исследования было изучение механизма участия NO в регуляции функционирования эритроидного ядерного фактора 2 (Nrf2), являющегося редокс-чувствительным транскрипционным фактором. Показано, что при воздействии GSNO на клетки линии гепатоцеллюлярной карциномы человека (HepG2) уровень внутриклеточного NO дозозависимо возрастал при инкубации в течение 24 и 72 ч. Максимальное увеличение уровня NO при концентрации 100 мкМ приводило к снижению уровня небелковых SH-групп, максимальному возрастанию уровня 3-нитротирозина и дитирозина, что способствовало снижению жизнеспособности клеток. Донор NO — S-нитрозоглутатион при экспозиции в течение 24 ч активировал Nrf2, скорее всего, за счет нитрозилирования белка Keap1, а при воздействии в течение 72 ч не только активировал Nrf2, но и приводил к повышению его количества. Этот процесс осуществлялся через NO-цГМФ-сигнальный путь. Активация Nrf2 является ключевым фактором в обеспечении защиты клеток от токсического воздействия продуктов нитрозативного стресса.

Об авторах

Ю. В. Абаленихина

Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова

Email: abalenihina88@mail.ru
Рязань, 390026 Россия

О. Н. Сучкова

Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова

Рязань, 390026 Россия

Е. В. Костюкова

Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова

Рязань, 390026 Россия

А. В. Щулькин

Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова

Рязань, 390026 Россия

А. Ф. Топунов

Институт биохимии им. А.Н. Баха, Федеральный исследовательский центр “Фундаментальные основы биотехнологии” Российской академии наук

Москва, 119071 Россия

Список литературы

  1. Thomas D.D., Ridnour L.A., Isenberg J.S., Flores-Santana W., Switzer C.H., Donzelli S. et al. // Free Radic. Biol. Med. 2008. V. 45. № 1. P. 18–31. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2008.03.020
  2. Сучкова О.Н., Абаленихина Ю.В., Костюкова Е.В., Щулькин А.В., Кочанова П.Д., Гаджиева Ф.Т. и др. // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2024. Т. 9. № 27. С. 50–56. https://doi.org/10.29296/25877313-2024-09-07
  3. Калинин Р.Е., Сучков И.А., Мжаванадзе Н.Д., Короткова Н В., Климентова Э.А., Поваров В.О. // Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2021. Т. 9. № 3. С. 407–414. https://doi.org/10.23888/HMJ202193407-414
  4. Abalenikhina Yu.V., Kosmachevskaya O.V., Topunov A.F. // Appl. Biochem. Microbiol. 2020. V. 56. № 6. P. 611–623. https://doi.org/10.1134/S0003683820060022
  5. He F., Ru X., Wen T. // Int. J. Mol. Sci. 2020. V. 21. № 13. e4777. https://doi.org/10.3390/ijms21134777
  6. Турпаев К.Т. // Биохимия. 2013. Т. 78. № 2. С. 147–166
  7. McMahon M., Lamont D.J., Beattie K.A., Hayes J.D. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010. V. 107. № 44. Р. 18838–18843. https://doi.org/10.1073/pnas.1007387107
  8. Fourquet S., Guerois R., Biard D., Toledano M.B // J. Biol. Chem. 2010. V. 285. № 11. С. 8463–8471. https://doi.org/10.1074/jbc. М109.051714
  9. Um H.-C., Jang J.-H., Kim D.-H., Lee C., Surh Y.-J. // Nitric Oxide. 2011. V. 25. № 2. Р. 161–168. https://doi.org/10.1016/j.niox.2011.06.001
  10. Cortese-Krott M.M., Pullmann D., Feelisch M. // Pharmacol. Res. 2016. V. 113. Pt. A. Р. 490–499. https://doi.org/10.1016/j.phrs.2016.09.022
  11. Sun Z., Zhang S., Chan J.Y., Zhang D.D. // Mol. Cell. Biol. 2007. V. 27. № 18. Р. 6334-6349. https://doi.org/10.1128/MCB.00630-07
  12. Kim S.-R., Seong K.-J., Kim W.-J., Jung J.-Y. // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. № 7. e4004. https://doi.org/10.3390/ijms23074004
  13. Gorska-Arcisz M., Popeda M., Braun M., Piasecka D., Nowak J.I., Kitowska K. et al. // Cell. Mol. Biol. Lett. 2024. V. 29. № 1. e71. https://doi.org/10.1186/s11658-024-00586-6
  14. Menegon S., Columbano A., Giordano S. // Trends Mol. Med. 2016. V. 22. № 7. P. 578–593. https://doi.org/10.1016/j.molmed.2016.05.002
  15. Gjorgieva Ackova D., Maksimova V., Smilkov K., Buttari B., Arese M., Saso L. // Pharmaceuticals. 2023. V. 16. № 6. e850. https://doi.org/10.3390/ph16060850
  16. Kryszczuk M., Kowalczuk O. // Arch. Biochem. Biophys. 2022. V. 15. № 730. e109417. https://doi.org/10.1016/j.abb.2022.109417
  17. Kalantari L., Ghotbabadi Z.R., Gholipour A., Ehymayed H.M., Najafiyan B., Amirlou P. et al. // Cell. Commun. Signal. 2023. V. 21. № 1. e318. https://doi.org/10.1186/s12964-023-01351-6
  18. Song Y., Lu Q., Jiang D., Lan X. // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2023. V. 50. № 3. Р. 639–641. https://doi.org/10.1007/s00259-022-06043-w
  19. Hwang T.L. // Br. J. Pharmacol. 1998. V. 125. № 6. Р. 1158–1163.
  20. Bollong M.J., Yun H., Sherwood L., Woods A.K., Lairson L.L., Schultz P.G. // ACS Chem. Biol. 2015. V. 10. № 10. Р. 2193–2198. https://doi.org/10.1021/acschembio.5b00448
  21. Balcerczyk A., Soszynski M., Bartosz G. // Free Radic. Biol. Med. 2005. V. 39. № 3. Р. 327–335. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2005.03.017
  22. Kumar P., Nagarajan A., Uchil P.D. // Cold Spring Harb. Protoc. 2018. V. 2018. № 6. https://doi.org/10.1101/pdb.prot095505
  23. Kosmachevskaya O.V., Nasybullina E.I., Shumaev K.B., Novikova N.N., Topunov A.F. // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 24. e13649. https://doi.org/10.3390/ijms222413649
  24. Kojima S., Nakayama K., Ishida H. // J. Radiat. Res. 2024. V. 45. № 1. Р. 33–39. https://doi.org/10.1269/jrr.45.33
  25. Pravkin S.K., Yakusheva E.N., Uzbekova D.G. // Bull. Exp. Biol. Med. 2013. V. 156. № 2. P. 220-223. https://doi.org/1010.1007/s10517-013-2315-x
  26. Li W., Wang D., Lao K.U., Wang X. // ACS Biomater. Sci. Eng. 2023. V. 13. № 9. P. 1694–1705. https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.2c01284
  27. Broniowska K.A., Diers A.R., Hogg N. // Biochim. Biophys. Acta. 2013. V. 1830. № 5. Р. 3173–3181. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2013.02.004
  28. Ramachandran N., Root P., Jiang X-M., Hogg P.J., Mutus B. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. № 17. Р. 9539–9544.
  29. Ferrer-Sueta G., Campolo N., Trujillo M., Bartesaghi S., Carballal S., Romero N. et al. // Chem. Rev. 2018. V. 118. № 3. Р. 1338–1408.
  30. Boer T.R., Palomino R.I., Mascharak P.K. // Med. One. 2019. V. 4. e190003. https://doi.org/10.20900/mo.20190003
  31. Yu J., Zhao Y., Li B., Sun L., Huo H. // J. Biochem. Mol. Toxicol. 2012. V. 26. № 7. Р. 264–269. https://doi.org/10.1002/jbt.21417
  32. Абаленихина Ю.В., Ерохина П.Д., Сеидкулиева А.А., Завьялова О.А., Щулькин А.В., Якушева Е.Н. // Российский медико-биологический вестник им. академика И.П. Павлова. 2022. Т. 30. № 3. С. 295–304. https://doi.org/10.17816/PAVLOVJ105574
  33. Xu W., Liu L.Z., Loizidou M., Ahmed M., Charles I.G. // Cell. Res. 2002. V. 12. № 5–6. P. 311–320. https://doi.org/10.1038/sj.cr.7290133

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).