Выявление генов человека, потенциально участвующих в патогенезе вирусного гепатита С, на основе мультисетевого биоинформатического анализа
- Авторы: Ануфриева Е.В.1, Останкова Ю.В.1, Давыденко В.С.1, Щемелев А.Н.1, Тотолян А.А.1
-
Учреждения:
- ФБУН «Санкт-Петербургский НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора
- Выпуск: Том 70, № 3 (2025)
- Страницы: 267-281
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0507-4088/article/view/310664
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-314
- EDN: https://elibrary.ru/KFJUSV
- ID: 310664
Цитировать
Аннотация
Цель. Поиск генов человека, потенциально участвующих в патогенезе гепатита С (ГС), методом мультисетевого биоинформатического анализа связей белков, задействованных на стадиях прикрепления и проникновения вируса гепатита С (ВГС) в клетку.
Материалы и методы. Для анализа генетических и белок-белковых сетей использовали ряд веб-приложений, алгоритмы и базы данных которых дополняют друг друга. В качестве базовых генов использовали гены CD81, CLDN1, LDLR, OCLN, SCARB1, продукты которых участвуют во взаимодействии с вирусными гликопротеинами Е1 и Е2 на стадии прикрепления и проникновения ВГС в клетку. Проведен анализ данных, включающий двухэтапное балльное ранжирование выявленных генов-кандидатов по их взаимодействию с базовыми генами и присутствию в результатах сетевого анализа разных веб-ресурсов.
Результаты. При использовании трех веб-ресурсов были первично выявлены гены-кандидаты: HumanNet – 100 генов-кандидатов, GeneMania – 20, STRING – 98. По результатам пересечения трех веб-ресурсов, общее число генов-кандидатов, связанных с базовыми генами, составило 170. Общее число генов с рангом выше 4 баллов составило 35. Гены-кандидаты были сгруппированы в функциональные наборы: клеточные барьеры и межклеточные контакты (17 генов, 48,6%); липидный обмен и липопротеины (9 генов, 25,7%); иммунный ответ и взаимодействие с вирусом (5 генов, 14,3%); сигнальные пути, протеолиз и цитоскелет (4 гена, 11,4%). Выявлены следующие гены-кандидаты, потенциально участвующие в патогенезе ГС: APOA1, CLDN3, APOE, LIPC, LRPAP1, CSNK1E, APOB, CD19, CLDN6, CLDN9, ESAM, F11R, IFITM1, LDLRAP1, PCSK9, TJP1, CD9, CLDN11, CLDN17, CLDN2, CLDN5, IGSF8, MMP2, PDZK1, ADAM10, APOA2, C3, CLDN12, DAB1, GJB1, ITGB1, MYLIP, NEDD4L, PTGFRN.
Заключение. В дальнейшем детальное изучение функциональных особенностей и полиморфных вариантов выявленных генов с применением биоинформатических и лабораторных методов может существенно расширить современные представления о вовлеченности генов человека в развитие ГС и открыть новые мишени для разработки лекарственных препаратов и терапевтических стратегий.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Екатерина Владимировна Ануфриева
ФБУН «Санкт-Петербургский НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора
Автор, ответственный за переписку.
Email: kate.an21@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0002-1882-529X
младший научный сотрудник лаборатории иммунологии и вирусологии ВИЧ-инфекции, аспирант
Россия, Санкт-ПетербургЮлия Владимировна Останкова
ФБУН «Санкт-Петербургский НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора
Email: shenna1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2270-8897
канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной иммунологии, заведующая лабораторией иммунологии и вирусологии ВИЧ-инфекции
Россия, Санкт-ПетербургВладимир Сергеевич Давыденко
ФБУН «Санкт-Петербургский НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора
Email: vladimir_david@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0078-9681
младший научный сотрудник лаборатории иммунологии и вирусологии ВИЧ-инфекции
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Николаевич Щемелев
ФБУН «Санкт-Петербургский НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора
Email: tvildorm@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3139-3674
канд. биол. наук, младший научный сотрудник лаборатории иммунологии и вирусологии ВИЧ-инфекции, аспирант
Россия, Санкт-ПетербургАрег Артемович Тотолян
ФБУН «Санкт-Петербургский НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора
Email: totolian@pasteurorg.ru
ORCID iD: 0000-0003-4571-8799
академик РАН, д-р. мед. наук, профессор, заведующий лабораторией молекулярной иммунологии, директор, заведующий кафедрой иммунологии Первого Санкт-Петербургского медицинского университета имени академика И.П. Павлова
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Valutite D., Ostankova Y., Semenov A., Lyalina L., Totolian A. Distribution of primary resistance mutations in Saint Petersburg in patients with chronic hepatitis C. Diagnostics (Basel). 2022; 12(5): 1054. https://doi.org/10.3390/diagnostics12051054
- Guss D., Sherigar J., Rosen P., Mohanty S.R. Diagnosis and management of hepatitis C Infection in primary care settings. J. Gen. Intern. Med. 2018; 33(4): 551–7. https://doi.org/10.1007/s11606-017-4280-y
- Stanislovaitiene D., Lesauskaite V., Zaliuniene D., Smalinskiene A., Gustiene O., Zaliaduonyte-Peksiene D., et al. SCARB1 single nucleotide polymorphism (rs5888) is associated with serum lipid profile and myocardial infarction in an age- and gender-dependent manner. Lipids Health Dis. 2013; 12: 24. https://doi.org/10.1186/1476-511X-12-24
- Itakura J., Nagayama K., Enomoto N., Sakamoto N., Tazawa J., Izumi N., et al. CD81 nucleotide mutation in hepatocellular carcinoma and lack of CD81 polymorphism in patients at stages of hepatitis C virus infection. J. Med. Virol. 2001; 63(1): 22–8.
- Gerold G., Moeller R., Pietschmann T. Hepatitis C virus entry: protein interactions and fusion determinants governing productive hepatocyte invasion. Cold Spring Harb. Perspect. Med. 2020; 10(2): a036830. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a036830
- Zeisel M.B., Felmlee D.J., Baumert T.F. Hepatitis C virus entry. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2013; 369: 87–112. https://doi.org/10.1007/978-3-642-27340-7_4
- Carriquí-Madroñal B., Sheldon J., Duven M., Stegmann C., Cirksena K., Wyler E., et al. The matrix metalloproteinase ADAM10 supports hepatitis C virus entry and cell-to-cell spread via its sheddase activity. PLoS Pathog. 2023; 19(11): e1011759. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1011759
- Yamamoto S., Fukuhara T., Ono C., Uemura K., Kawachi Y., Shiokawa M., et al. Lipoprotein receptors redundantly participate in entry of hepatitis C virus. PLoS Pathog. 2016; 12(5): e1005610. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005610
- Давыденко В.С., Останкова Ю.В., Щемелев А.Н., Ануфриева Е.В., Кушнарева В.В., Тотолян А.А. Выявление генов человека, взаимодействующих с рецепторами прикрепления ВИЧ и потенциально участвующих в патогенезе заболевания, на основе мультисетевого биоинформатического анализа. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2024; 16(4): 28–44. https://doi.org/10.22328/2077-9828-2024-16-4-28-44
- Davydenko V.S., Ostankova Y.V., Schemelev A.N., Anufrieva E.V., Kushnareva V.V., Totolian A.A. Bioinformatically analyzed relationships between specific human genes associated with HIV attachment. Russian Journal of Infection and Immunity. 2024; 14(6): 1153–68. https://doi.org/10.15789/2220-7619-BAR-17830
- Colpitts C.C., Tsai P.L., Zeisel M.B. Hepatitis C virus entry: an intriguingly complex and highly regulated process. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(6): 2091. https://doi.org/10.3390/ijms21062091
- Gumbiner B.M. Breaking through the tight junction barrier. J. Cell. Biol. 1993; 123(6 Pt. 2): 1631–3. https://doi.org/10.1083/jcb.123.6.1631
- Mailly L., Baumert T.F. Hepatitis C virus infection and tight junction proteins: The ties that bind. Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2020; 1862(7): 183296. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2020.183296
- Zheng A., Yuan F., Li Y., Zhu F., Hou P., Li J., et al. Claudin-6 and claudin-9 function as additional coreceptors for hepatitis C virus. J. Virol. 2007; 81(22): 12465–71. https://doi.org/10.1128/JVI.01457-07
- Wang W., Zhou Y., Li W., Quan C., Li Y. Claudins and hepatocellular carcinoma. Biomed. Pharmacother. 2024; 171: 116109. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2023.116109
- Park J.H., Park S., Yang J.S., Kwon O.S., Kim S., Jang S.K. Discovery of cellular proteins required for the early steps of HCV infection using integrative genomics. PLoS One. 2013; 8(4): e60333. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0060333
- Eyre N.S., Drummer H.E., Beard M.R. The SR-BI partner PDZK1 facilitates hepatitis C virus entry. PLoS Pathog. 2010; 6(10): e1001130. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1001130
- Li X., Wang Q., Ai L., Cheng K. Unraveling the activation process and core driver genes of HSCs during cirrhosis by single-cell transcriptome. Exp. Biol. Med. (Maywood). 2023; 248(16): 1414–24. https://doi.org/10.1177/15353702231191109
- Rosager A.M., Sørensen M.D., Dahlrot R.H., Boldt H.B., Hansen S., Lathia J.D., et al. Expression and prognostic value of JAM-A in gliomas. J. Neurooncol. 2017; 135(1): 107–17. https://doi.org/10.1007/s11060-017-2555-0
- Brozat J.F., Brandt E.F., Stark M., Fischer P., Wirtz T.H., Flaßhove A., et al. JAM-A is a multifaceted regulator in hepatic fibrogenesis, supporting LSEC integrity and stellate cell quiescence. Liver Int. 2022; 42(5): 1185–203. https://doi.org/10.1111/liv.15187
- Abdel-Latif M.S. Plasma levels of matrix metalloproteinase (MMP)-2, MMP-9 and tumor necrosis factor-α in chronic hepatitis C virus patients. Open Microbiol. J. 2015; 9: 136–40. https://doi.org/10.2174/1874285801509010136
- Neuman M.G., Schmilovitz-Weiss H., Hilzenrat N., Bourliere M., Marcellin P., Trepo C., et al. Markers of inflammation and fibrosis in alcoholic hepatitis and viral hepatitis C. Int. J. Hepatol. 2012; 2012: 231210. https://doi.org/10.1155/2012/231210
- Samama B., Boehm N. Reelin immunoreactivity in lymphatics and liver during development and adult life. Anat. Rec. A Discov. Mol. Cell. Evol. Biol. 2005; 285(1): 595–9. https://doi.org/10.1002/ar.a.20202
- Carotti S., Perrone G., Amato M., Vespasiani Gentilucci U., Righi D., Francesconi M., et al. Reelin expression in human liver of patients with chronic hepatitis C infection. Eur. J. Histochem. 2017; 61(1): 2745. https://doi.org/10.4081/ejh.2017.2745
- Fan Y., Pionneau C., Cocozza F., Boëlle P.Y., Chardonnet S., Charrin S., et al. Differential proteomics argues against a general role for CD9, CD81 or CD63 in the sorting of proteins into extracellular vesicles. J. Extracell. Vesicles. 2023; 12(8): e12352. https://doi.org/10.1002/jev2.12352
- Li H., Wang B., Qi B., Jiang G., Qin M., Yu M. Connexin32 regulates expansion of liver cancer stem cells via the PI3K/Akt signaling pathway. Oncol. Rep. 2022; 48(3): 166. https://doi.org/10.3892/or.2022.8381
- Lee J.Y., Acosta E.G., Stoeck I.K., Long G., Hiet M.S., Mueller B., et al. Apolipoprotein E likely contributes to a maturation step of infectious hepatitis C virus particles and interacts with viral envelope glycoproteins. J. Virol. 2014; 88(21): 12422–37. https://doi.org/10.1128/JVI.01660-14
- Zeisel M.B., Felmlee D.J., Baumert T.F. Hepatitis C virus entry. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2013; 369: 87–112. https://doi.org/10.1007/978-3-642-27340-7_4
- Jiang J., Luo G. Apolipoprotein E but not B is required for the formation of infectious hepatitis C virus particles. J. Virol. 2009; 83(24): 12680–91. https://doi.org/10.1128/JVI.01476-09
- Labonté P., Begley S., Guévin C., Asselin M.C., Nassoury N., Mayer G., et al. PCSK9 impedes hepatitis C virus infection in vitro and modulates liver CD81 expression. Hepatology. 2009; 50(1): 17–24. https://doi.org/10.1002/hep.22911
- Маляревская О.В., Намитоков А.М., Кручинова С.В., Космачева Е.Д. Ингибиторы PCSK9: роль в снижении сердечно-сосудистой заболеваемости. Южно-Российский журнал терапевтической практики. 2022; 3(2): 32–40. https://doi.org/10.21886/2712-8156-2022-3-2-32-40
- Desrochers G.F., Filip R., Bastianelli M., Stern T., Pezacki J.P. microRNA-27b regulates hepatic lipase enzyme LIPC and reduces triglyceride degradation during hepatitis C virus infection. J. Biol. Chem. 2022; 298(6): 101983. https://doi.org/10.1016/j.jbc.2022.101983
- Hubacek J.A., Hyatt T. ARH missense polymorphisms and plasma cholesterol levels. Clin. Chem. Lab. Med. 2004; 42(9): 989–90. https://doi.org/10.1515/CCLM.2004.200
- Lindholm D., Bornhauser B.C., Korhonen L. Mylip makes an Idol turn into regulation of LDL receptor. Cell. Mol. Life Sci. 2009; 66(21): 3399–402. https://doi.org/10.1007/s00018-009-0127-y
- Останкова Ю.В., Серикова Е.Н., Ануфриева Е.В., Басина В.В., Машков И.А., Ширшова Н.Ю. и др. Прогностическая оценка развития гепатоцеллюлярной карциномы на основе определения полиморфизма гена человека IFNAR-1 и/или его экспрессии. Клиническая лабораторная диагностика. 2024; 69(7): 349–57. https://doi.org/10.51620/0869-2084-2024-69-7-349-357 https://elibrary.ru/lcckcx
- Rehermann B. Hepatitis C virus versus innate and adaptive immune responses: a tale of coevolution and coexistence. J. Clin. Invest. 2009; 119(7): 1745–54. https://doi.org/10.1172/JCI39133
- Narayana S.K., Helbig K.J., McCartney E.M., Eyre N.S., Bull R.A., Eltahla A., et al. The interferon-induced transmembrane proteins, IFITM1, IFITM2, and IFITM3 inhibit hepatitis C virus entry. J. Biol. Chem. 2015; 290(43): 25946–59. https://doi.org/10.1074/jbc.M115.657346
- Mazumdar B., Kim H., Meyer K., Bose S.K., Di Bisceglie A.M., Ray R.B., et al. Hepatitis C virus proteins inhibit C3 complement production. J. Virol. 2012; 86(4): 2221–8. https://doi.org/10.1128/JVI.06577-11
- Assem N.M., Mohammed A.I., Barry H.M.A., El Sayed I.E.T., Elmadbouh I. Serum cystatin C is an early renal dysfunction biomarker in patients with hepatitis C virus. Egypt Liver J. 2022; 12(1): 67. https://doi.org/10.1186/s43066-022-00231-x
- Wang R.Y., Bare P., De Giorgi V., Matsuura K., Salam K.A., Grandinetti T., et al. Preferential association of hepatitis C virus with CD19+ B cells is mediated by complement system. Hepatology. 2016; 64(6): 1900–10. https://doi.org/10.1002/hep.28842
- Zhang S., Kodys K., Babcock G.J., Szabo G. CD81/CD9 tetraspanins aid plasmacytoid dendritic cells in recognition of hepatitis C virus-infected cells and induction of interferon-alpha. Hepatology. 2013; 58(3): 940–9. https://doi.org/10.1002/hep.25827
- Marquez J., Dong J., Hayashi J., Serrero G. Prostaglandin F2 receptor negative regulator (PTGFRN) expression correlates with a metastatic-like phenotype in epidermoid carcinoma, pediatric medulloblastoma, and mesothelioma. J. Cell. Biochem. 2024; 125(8): e30616. https://doi.org/10.1002/jcb.30616
- Carriquí-Madroñal B., Sheldon J., Duven M., Stegmann C., Cirksena K., Wyler E., et al. The matrix metalloproteinase ADAM10 supports hepatitis C virus entry and cell-to-cell spread via its sheddase activity. PLoS Pathog. 2023; 19(11): e1011759. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1011759
- Chen C., Bi Y., Chen B., He S. Nedd4L signaling contributes to carbon tetrachloride-induced liver fibrosis in female mice and is associated with enteric dysbacteriosis. Gastroenterol. Rep. (Oxf.). 2025; 13: goaf022. https://doi.org/10.1093/gastro/goaf022
- Chesarino N.M., McMichael T.M., Yount J.S. E3 ubiquitin ligase NEDD4 promotes influenza virus infection by decreasing levels of the antiviral protein IFITM3. PLoS Pathog. 2015; 11(8): e1005095. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005095
- Gao P., Ma X., Yuan M., Yi Y., Liu G., Wen M., et al. E3 ligase Nedd4l promotes antiviral innate immunity by catalyzing K29-linked cysteine ubiquitination of TRAF3. Nat. Commun. 2021; 12(1): 1194. https://doi.org/10.1038/s41467-021-21456-1
- Zhou L., Fitzpatrick K., Olker C., Vitaterna M.H., Turek F.W. Casein kinase 1 epsilon and circadian misalignment impact affective behaviours in mice. Eur J Neurosci. 2022; 55(9-10): 2939-2954. https://doi.org/10.1111/ejn.15456
- Leya M., Jeong H., Yang D., Ton Nu Bao T.H., Pandeya P.R., Oh S.I., et al. Hepatocyte-specific casein kinase 1 epsilon ablation ameliorates metabolic dysfunction-associated steatohepatitis by up-regulating tumor necrosis factor receptor-associated factor 3 in mice. Am. J. Pathol. 2024; 194(11): 2106–27. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2024.08.003
- Harrison S.A. Steatosis and chronic hepatitis C infection: mechanisms and significance. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 2005; 3(10 Suppl. 2): S92–6. https://doi.org/10.1016/s1542-3565(05)00706-8
Дополнительные файлы
