Роль белков L и 2А вируса энцефаломиокардита типа 1 в ингибировании синтеза клеточных белков и накоплении вирусных белков при инфекции
- Авторы: Ивин Ю.Ю.1, Бутусова А.А.1, Гладнева Е.Е.1, Коломийцева Г.Я.2, Хапчаев Ю.Х.1, Ишмухаметов А.А.1,3
-
Учреждения:
- ФГАНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов имени М.П. Чумакова РАН» (Институт полиомиелита)
- Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»
- Институт трансляционной медицины и биотехнологии ФГАОУ ВО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России
- Выпуск: Том 68, № 5 (2023)
- Страницы: 428-444
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0507-4088/article/view/231862
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-195
- EDN: https://elibrary.ru/eeiuhq
- ID: 231862
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Инфицирование клеток вирусом энцефаломиокардита типа 1 (EMCV-1, Cardiovirus A: Picornaviridae) сопровождается подавлением синтеза клеточных белков. Главную роль в ингибировании клеточной трансляции отводят «секьюрити»-белкам L и 2А. Механизм возможного влияния белка L на клеточную трансляцию неизвестен. Существуют гипотезы о механизме влияния белка 2А на эффективность кэп-зависимой трансляции, которые основаны на его взаимодействии с факторами трансляции и субъединицами рибосом. Экспериментальные данные противоречивы и не позволяют сформулировать единую модель взаимодействия белков L и 2А с трансляционным аппаратом клетки.
Цель. Изучить роль «секьюрити»-белков L и 2А в подавлении трансляции клеточных белков и эффективности трансляции и процессинга вирусных белков зараженных клеток.
Материалы и методы. Для исследования свойств вирусных белков L и 2A получены мутантные варианты EMCV-1: Zfmut, имеющий дефектный белок L; Δ2A, кодирующий частично делетированный белок 2А; Zfmut&Δ2A, содержащий мутации в обоих белках. Течение трансляционных процессов в зараженных клетках изучали c помощью вестерн-блот-гибридизации и пульс-метода включения радиоактивно меченных аминокислот (14С) в новосинтезированные белки.
Результаты. Функциональная инактивация белка 2А не влияет на ингибирование синтеза клеточных белков. Обнаружена прямая корреляция между наличием активного белка L и специфической инактивацией синтеза клеточных белков на раннем этапе вирусной инфекции. На поздних стадиях инфекции происходит неспецифическое подавление трансляционных процессов зараженной клетки, сопровождающееся фосфорилированием eIF2α. Частичное удаление белка 2А из генома EMCV-1 не влияет на течение этого процесса, в то время как инактивация белка L ускоряет наступление полного ингибирования синтеза белков. При частичной делеция белка 2А нарушается процессинг белков вирусного капсида. Подавление функций белка L приводит к снижению эффективности вирусной трансляции.
Заключение. Белок 2А не влияет на ингибирование трансляции в клетках HeLa. Белок L играет важную роль не только в специфическом ингибировании клеточной трансляции, но и в поддержании эффективного синтеза вирусных белков. Белок 2А принимает участие не только в первичном, но и во вторичном процессинге капсидных белков EMCV-1.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Юрий Юрьевич Ивин
ФГАНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов имени М.П. Чумакова РАН» (Институт полиомиелита)
Автор, ответственный за переписку.
Email: ivin_uu@chumakovs.su
ORCID iD: 0000-0003-0995-7944
научный сотрудник лаборатории биохимии, начальник управления разработки и внедрения инновационных и полупромышленных технологий
Россия, 108819, МоскваАнна Александровна Бутусова
ФГАНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов имени М.П. Чумакова РАН» (Институт полиомиелита)
Email: amadreaera@gmail.com
ORCID iD: 0009-0008-0361-9681
младший научный сотрудник лаборатории биохимии
Россия, 108819, МоскваЕкатерина Евгеньевна Гладнева
ФГАНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов имени М.П. Чумакова РАН» (Институт полиомиелита)
Email: gladneva_ee@chumakovs.su
ORCID iD: 0009-0005-8067-6768
младший научный сотрудник лаборатории биохимии
Россия, 108819, МоскваГалина Яковлевна Коломийцева
Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»
Email: kolom@genebee.msu.ru
ORCID iD: 0009-0005-5130-2695
кандидат хим. наук, доцент, заведующая отделом изотопного анализа
Россия, 119234, МоскваЮсуф Хаджибекович Хапчаев
ФГАНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов имени М.П. Чумакова РАН» (Институт полиомиелита)
Email: hapchaev_uh@chumakovs.su
ORCID iD: 0000-0003-1613-5228
доктор биол. наук, начальник цеха по производству полиомиелитных вакцин
Россия, 108819, МоскваАйдар Айратович Ишмухаметов
ФГАНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов имени М.П. Чумакова РАН» (Институт полиомиелита); Институт трансляционной медицины и биотехнологии ФГАОУ ВО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России
Email: ishmukhametov@chumakovs.su
ORCID iD: 0000-0001-6130-4145
доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, генеральный директор, заведующий кафедрой организации и технологии производства иммунобиологических препаратов
Россия, 108819, Москва; 117418, МоскваСписок литературы
- Drappier M., Opperdoes F.R., Michiels T. Nonstructural protein L* species specificity supports a mouse origin for Vilyuisk human encephalitis virus. J. Virol. 2017; 91(14): e00573-17. https://doi.org/10.1128/jvi.00573-17
- Ugai S., Iwaya A., Taneichi H., Hirokawa C., Aizawa Y., Hatakeyama S., et al. Clinical characteristics of saffold virus infection in children. Pediatr. Infect. Dis. J. 2019; 38(8): 781–5. https://doi.org/10.1097/inf.0000000000002298
- Tan S.Z.K., Tan M.Z.Y., Prabakaran M. Saffold virus, an emerging human cardiovirus. Rev. Med. Virol. 2017; 27(1): e1908. https://doi.org/10.1002/rmv.1908
- Lipton H.L. Human Vilyuisk encephalitis. Rev. Med. Virol. 2008; 18(5): 347–52. https://doi.org/10.1002/rmv.585
- Carocci M., Bakkali-Kassimi L. The encephalomyocarditis virus. Virulence. 2012; 3(4): 351–67. https://doi.org/10.4161/viru.20573
- Merrick W.C., Pavitt G.D. Protein synthesis initiation in eukaryotic cells. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2018; 10(12): a033092. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a033092
- Jackson R.J., Hellen C.U.T., Pestova T.V. The mechanism of eukaryotic translation initiation and principles of its regulation. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2010; 11(2): 113–27. https://doi.org/10.1038/nrm2838
- Donnelly N., Gorman A.M., Gupta S., Samali A. The eIF2α kinases: their structures and functions. Cell. Mol. Life Sci. 2013; 70(19): 3493–511. https://doi.org/10.1007/s00018-012-1252-6
- Wek R.C. Role of eIF2α kinases in translational control and adaptation to cellular stress. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2018; 10(7): a032870. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a032870
- Imai S., Suzuki H., Fujiyoshi Y., Shimada I. Dynamically regulated two-site interaction of viral RNA to capture host translation initiation factor. Nat. Commun. 2023; 14(1): 4977. https://doi.org/10.1038/s41467-023-40582-6
- Sorokin I.I., Vassilenko K.S., Terenin I.M., Kalinina N.O., Agol V.I., Dmitriev S.E. Non-canonical translation initiation mechanisms employed by eukaryotic viral MRNAs. Biochemistry. (Mosc.). 2021; 86(9): 1060–94. https://doi.org/10.1134/S0006297921090042
- Francisco-Velilla R., Embarc-Buh A., Abellan S., Martinez-Salas E. Picornavirus translation strategies. FEBS Open Bio. 2022; 12(6): 1125–41. https://doi.org/10.1002/2211-5463.13400
- Chamond N., Deforges J., Ulryck N., Sargueil B. 40S recruitment in the absence of EIF4G/4A by EMCV IRES refines the model for translation initiation on the archetype of type II IRESs. Nucleic Acids Res. 2014; 42(16): 10373–84. https://doi.org/10.1093/nar/gku720
- Welnowska E., Sanz M.A., Redondo N., Carrasco L. Translation of viral MRNA without active EIF2: The case of picornaviruses. PLoS One. 2011; 6(7): e22230. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0022230
- Agol V.I., Gmyl A.P. Viral security proteins: counteracting host defences. Nat. Rev. Microbiol. 2010; 8(12): 867–78.https://doi.org/10.1038/nrmicro2452
- Yang X., Hu Z., Fan S., Zhang Q., Zhong Y., Guo D., et al. Picornavirus 2A protease regulates stress granule formation to facilitate viral translation. PLoS Pathog. 2018; 14(2): e1006901. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006901
- Chau D.H.W., Yuan J., Zhang H., Cheung P., Lim T., Liu Z., et al. Coxsackievirus B3 proteases 2A and 3C induce apoptotic cell death through mitochondrial injury and cleavage of eIF4GI but not DAP5/P97/NAT1. Apoptosis. 2007; 12(3): 513–24. https://doi.org/10.1007/s10495-006-0013-0
- Azzinaro P.A., Medina G.N., Rai D., Ramirez-Medina E., Spinard E., Rodriguez-Calzada M., et al. Mutation of FMDV Lpro H138 residue drives viral attenuation in cell culture and in vivo in swine. Front. Vet. Sci. 2022; 9: 1028077. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1028077
- Turkki P., Laajala M., Flodström-Tullberg M., Marjomäki V. Human enterovirus group B viruses rely on vimentin dynamics for efficient processing of viral nonstructural proteins. J. Virol. 2020; 94(2): e01393-19. https://doi.org/10.1128/JVI.01393-19.
- Jen G., Detjen B.M., Thach R.E. Shutoff of HeLa cell protein synthesis by encephalomyocarditis virus and poliovirus: a comparative study. J. Virol. 1980; 35(1): 150–6. https://doi.org/10.1128/JVI.35.1.150-156.19
- Aminev A.G., Amineva S.P., Palmenberg A.C. Encephalomyocarditis viral protein 2A localizes to nucleoli and inhibits cap-dependent MRNA translation. Virus Res. 2003; 95(1-2): 45–57. https://doi.org/10.1016/S0168-1702(03)00162-X
- Zoll J., Galama J.M., van Kuppeveld F.J., Melchers W.J. Mengovirus leader is involved in the inhibition of host cell protein synthesis. J. Virol. 1996; 70(8): 4948–52. https://doi.org/10.1128/jvi.70.8.4948-4952.1996
- Bacot-Davis V.R., Ciomperlik J.J., Basta H.A., Cornilescu C.C., Palmenberg A.C. Solution structures of mengovirus leader protein, its phosphorylated derivatives, and in complex with nuclear transport regulatory protein, RanGTPase. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2014; 111(44): 15792–7. https://doi.org/10.1073/pnas.1411098111
- Dvorak C.M., Hall D.J., Hill M., Riddle M., Pranter A., Dillman J., et al. Leader protein of encephalomyocarditis virus binds zinc, is phosphorylated during viral infection, and affects the efficiency of genome translation. Virology. 2001; 290(2): 261–71. https://doi.org/10.1006/viro.2001.1193
- Romanova L.I., Lidsky P.V., Kolesnikova M.S., Fominykh K.V., Gmyl A.P., Sheval E.V., et al. Antiapoptotic activity of the cardiovirus leader protein, a viral “security” protein. J. Virol. 2009; 83(14): 7273–84. https://doi.org/10.1128/JVI.00467-09
- Bardina M.V., Lidsky P.V., Sheval E.V., Fominykh K.V., van Kuppeveld F.J.M., Polyakov V.Y., et al. Mengovirus-induced rearrangement of the nuclear pore complex: hijacking cellular phosphorylation machinery. J. Virol. 2009; 83(7): 3150–61. https://doi.org/10.1128/JVI.01456-08
- Hato S.V., Ricour C., Schulte B.M., Lanke K.H., de Bruijni M., Zoll J., et al. The mengovirus leader protein blocks interferon-alpha/beta gene transcription and inhibits activation of interferon regulatory factor 3. Cell. Microbiol. 2007; 9(12): 2921–30. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2007.01006.x
- Donnelly M.L.L., Gani D., Flint M., Monaghan S., Ryan M.D. The cleavage activities of aphthovirus and cardiovirus 2A proteins. J. Gen. Virol. 1997; 78(Pt. 1): 13–21. https://doi.org/10.1099/0022-1317-78-1-13
- Groppo R., Brown B.A., Palmenberg A.C. Mutational analysis of the EMCV 2A protein identifies a nuclear localization signal and an eIF4E binding site. Virology. 2011; 410(1): 257–67. https://doi.org/10.1016/j.virol.2010.11.002
- Napthine S., Ling R., Finch L.K., Jones J.D., Bell S., Brierley I., et al. Protein-directed ribosomal frameshifting temporally regulates gene expression. Nat. Commun. 2017; 8: 15582. https://doi.org/10.1038/ncomms15582
- Hill C.H., Pekarek L., Napthine S., Kibe A., Firth A.E., Graham S.C., et al. Structural and molecular basis for cardiovirus 2A protein as a viral gene expression switch. Nat. Commun. 2021; 12(1): 7166. https://doi.org/10.1038/s41467-021-27400-7
- Loughran G., Firth A.E., Atkins J.F. Ribosomal frameshifting into an overlapping gene in the 2B-encoding region of the cardiovirus genome. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2011; 108(46): E1111–9. https://doi.org/10.1073/pnas.1102932108
- Caliskan N., Hill C.H. Insights from structural studies of the cardiovirus 2A protein. Biosci. Rep. 2022; 42(1): BSR20210406. https://doi.org/10.1042/BSR20210406
- Svitkin Y.V., Hahn H., Gingras A.C., Palmenberg A.C., Sonenberg N. Rapamycin and wortmannin enhance replication of a defective encephalomyocarditis virus. J. Virol. 1998; 72(7): 5811–9. https://doi.org/10.1128/jvi.72.7.5811-5819.1998
- Medvedkina O.A., Scarlat I.V., Kalinina N.O., Agol V.I. Virus-specific proteins associated with ribosomes of Krebs-II cells infected with encephalomyocarditis virus. FEBS Lett. 1974; 39(1): 4–8. https://doi.org/10.1016/0014-5793(74)80003-7
- Groppo R., Palmenberg A.C. Cardiovirus 2A protein associates with 40S but not 80S ribosome subunits during infection. J. Virol. 2007; 81(23): 13067–74. https://doi.org/10.1128/JVI.00185-07
- Duke G.M., Palmenberg A.C. Cloning and synthesis of infectious cardiovirus RNAs containing short, discrete poly(C) tracts. J. Virol. 1989; 63(4): 1822–6. https://doi.org/10.1128/jvi.63.4.1822-1826.1989
- Mikitas O.V., Ivin Y.Y., Golyshev S.A., Povarova N.V., Galkina S.I., Pletjushkina O.Y., et al. Suppression of injuries caused by a lytic RNA virus (mengovirus) and their uncoupling from viral reproduction by mutual cell/virus disarmament. J. Virol. 2012; 86(10): 5574–83. https://doi.org/10.1128/jvi.07214-11
- Parks G.D., Baker J.C., Palmenberg A.C. Proteolytic cleavage of encephalomyocarditis virus capsid region substrates by precursors to the 3C enzyme. J. Virol. 1989; 63(3): 1054–8. https://doi.org/10.1128/jvi.63.3.1054-1058.1989
- Joachims M., Van Breugel P.C., Lloyd R.E. Cleavage of poly(A)-binding protein by enterovirus proteases concurrent with inhibition of translation in vitro. J. Virol. 1999; 73(1): 718–27. https://doi.org/10.1128/jvi.73.1.718-727.1999
- Lidsky P.V., Hato S., Bardina M.V., Aminev A.G., Palmenberg A.C., Sheval E.V., et al. Nucleocytoplasmic traffic disorder induced by cardioviruses. J. Virol. 2006; 80(6): 2705–17. https://doi.org/10.1128/JVI.80.6.2705-2717.2006
- Hato S.V., Sorgeloos F., Ricour C., Zoll J., Melchers W.J.G., Michiels T., et al. Differential IFN-alpha/beta production suppressing capacities of the leader proteins of mengovirus and foot-and-mouth disease virus. Cell. Microbiol. 2010; 12(3): 310–7. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2009.01395.x
- Tolskaya E.A., Romanova L.I., Kolesnikova M.S., Ivannikova T.A., Smirnova E.A., Raikhlin N.T., et al. Apoptosis-inducing and apoptosis-preventing functions of poliovirus. J. Virol. 1995; 69(2): 1181–9. https://doi.org/10.1128/jvi.69.2.1181-1189.1995
- Petty R.V., Basta H.A., Bacot-Davis V.R., Brown B.A., Palmenberg A.C. Binding Interactions between the Encephalomyocarditis virus leader and protein 2A. J. Virol. 2014; 88(22): 13503–9. https://doi.org/10.1128/JVI.02148-14
- Meurs E., Chong K., Galabru J., Thomas N.S.B., Kerr I.M., Williams B.R.G., et al. Molecular cloning and characterization of the human double-stranded RNA-activated protein kinase induced by interferon. Cell. 1990; 62(2): 379–90. https://doi.org/10.1016/0092-8674(90)90374-N
- Cole J. Activation of PKR: an open and shut case? Trends Biochem. Sci. 2007; 32(2): 57–62. https://doi.org/10.1016/j.tibs.2006.12.003
- Ng C.S., Jogi M., Yoo J.S., Onomoto K., Koike S., Iwasaki T., et al. Encephalomyocarditis virus disrupts stress granules, the critical platform for triggering antiviral innate immune responses. J. Virol. 2013; 87(17): 9511–22. https://doi.org/10.1128/jvi.03248-12
- Porter F.W., Brown B., Palmenberg A.C. Nucleoporin phosphorylation triggered by the encephalomyocarditis virus leader protein is mediated by mitogen-activated protein kinases. J. Virol. 2010; 84(24): 12538–48. https://doi.org/10.1128/JVI.01484-09
- Han A.P. Heme-regulated eIF2alpha kinase (HRI) is required for translational regulation and survival of erythroid precursors in iron deficiency. EMBO J. 2001; 20(23): 6909–18. https://doi.org/10.1093/emboj/20.23.6909
- Berlanga J.J., Ventoso I., Harding H.P., Deng J., Ron D., Sonenberg N., et al. Antiviral effect of the mammalian translation initiation factor 2α kinase GCN2 against RNA viruses. EMBO J. 2006; 25(8): 1730–40. https://doi.org/10.1038/sj.emboj.7601073
- Krishnamoorthy J., Mounir Z., Raven J.F., Koromilas A.E. The eIF2α kinases inhibit vesicular stomatitis virus replication independently of eIF2α phosphorylation. Cell Cycle. 2008; 7(15): 2346–51. https://doi.org/10.4161/cc.6323
- Harding H.P., Zhang Y., Ron D. Protein translation and folding are coupled by an endoplasmic-reticulum-resident kinase. Nature. 1999; 397(6716): 271–4. https://doi.org/10.1038/16729
- Shishova A., Dyugay I., Fominykh K., Baryshnikova V., Dereventsova A., Turchenko Y., et al. Enteroviruses manipulate the unfolded protein response through multifaceted deregulation of the Ire1-Xbp1 pathway. Viruses. 2022; 14(11): 2486. https://doi.org/10.3390/v14112486