ОСПА БЕЛОК (POXVIRIDAE, CHORDOPOXVIRINAE, SQPV - SQUIRREL POXVIRUS)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Впервые в отечественной литературе рассмотрен новый таксон в подсемействе Chordopoxvirinae, который, возможно, представляет собой новый род оспенных вирусов. Описаны эпизоотологические проявления оспы белок у североамериканских серых и европейских рыжих белок. Расселение серых белок (Sciurus carolinensis) по Великобритании на протяжении ХХ столетия и снижение численности популяции рыжих белок (Sciurus vulgaris) относятся к наиболее известным документальным подтверждениям экологической смены местной фауны интродуцированным видом. Отмечена тенденция к расширению ареала распространения вируса оспы белок из Великобритании на западную часть Европы. В обзоре отдельно изложены генетические особенности генома вируса оспы белок, определяющие его биологические свойства, а также эволюционные взаимосвязи с другими поксвирусами. Определение величины генома с помощью рестриктного анализа, секвенирование всего генома, определение содержания Г/Ц-нуклеотидных пар и функциональное картирование большей части генов позволили построить филогенетическое древо. Филогенетический анализ показал, что это новый представитель подсемейства Chordоpoxvirinae, расположенный между вирусами контагиозного моллюска и парапоксвирусами. Для выявления и идентификации возбудителя оспы белок используются серологические и молекулярно-биологические методы. Применение электронной микроскопии ограничено у серых белок вследствие отсутствия поражения органов и репродукции вируса. Идентификация ДНК возбудителя оспы белок, основанная на использовании разных видов полимеразной цепной реакции (гнездовой и в реальном времени) преодолевает все эти ограничения.

Об авторах

С. В. Борисевич

ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Министерства обороны Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: 48cnii@mil.ru
Россия

Л. Ф. Стовба

ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Министерства обороны Российской Федерации

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Д. И. Павельев

ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Министерства обороны Российской Федерации

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Список литературы

  1. Thomas K., Tompkins D.M., Sainsbury A.W., Wood A.R., Dalziel R., Nettleton P.F., Mclnnes C.J. A novel poxvirus lethal to red squirrel (Sciurus vulgaris). J. Gen. Virol. 2003; 84(Pt. 12): 3337-41.
  2. Mclnnes C.J., Wood A.R., Thomas K., Sainsbury A.W., Furnell J., Dein F.J., et al. Genomic characterization of a novel poxvirus contributing to the decline of the red squirrel (Scuirus vulgaris) in the UK. J. Gen. Virol. 2006; 87(Pt. 8): 2115-25.
  3. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю. Поксвирусы (Poxviridae). В кн.: Львов Д.К., ред. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. М.: МИА; 2013: 179-85
  4. Sainsbury A.W., Nettleton P.F., Gilray J., Gurnell J. Gray squirrel have high seroprevalence to a parapox virus associated with red squirrel. In: Animal Conservation Forum. Cambridge: Cambridge University Press; 2000; 3(3): 229-33.
  5. Tompkins D.M., Sainsbury A.W., Nettleton P., Bucston D., Gurnell J. Parapoxvirus causes a deleterious disease in red squirrels associated with UK population declines. Proc. R. Soc. Lond. B. 2002; 269(1490): 529-33.
  6. Duff J.P., Scott A., Keymer I.F. Parapox virus infection of the grey squirrels. Vet. Rec. 1996; 138(21): 527.
  7. Usher M.B., Crawford T.J., Banwell J.L. An American invasion of Great Britain - the case of the native and alien squirrel (Sciurus) species. Cons. Biol. 1992; 6(1): 108-15.
  8. Atkin J.W., Radford A.D., Coyne K.P., Stavisky J., Chantrey J. Detection of squirrel poxvirus by nested and real-time PCR from red (Sciurus vulgaris) and grey (Sciurus carolinensis) squirrels. BMC Vet. Res. 2010; 6: 33-41.
  9. Waters C. Post-release monitoring of two translocated red squirrel (Sciurus vulgaris L.) populations: Diss. Galway; 2012.
  10. Harris S., Yalden D.W. Mammals of the British Isles: Handbook. London: The Mammal Society; 2008.
  11. Lurz P.W.W., White A., Meredith A., McInnes C., Boots M. Living with pox project: Forest management for areas affected by squirrelpox virus. In: Forestry Commission Scotland Report. Edinburgh; 2015.
  12. Sainsbury A.W., Gurnell J. An investigation into the health and welfare of red squirrels, Sciurus vulgaris, involved in reintroduction studies. Vet. Rec. 1995; 137(15): 367-70.
  13. White A., Lurz P.W.W. A modeling assessment of control strategies to prevent/reduce squirrelpox spread. In: Scottish Natural Heritage Commissioned Report № 627. Inverness; 2014.
  14. Chantrey J., Dale T.D., Read J.M., White S., Whitfield F., Jones D., et al. European red squirrels population dynamics driven by squirrelpox at a gray squirrel invasion interface. Ecol. Evol. 2014; 4(19): 3788-99.
  15. Naulty F., Everest D., Warnock N.D., Phelan K., Callanan J.J. Squirrelpox virus in red squirrels (Sciurus vulgaris) in the Republic of Ireland. J. Wildlife Dis. 2013; 49(4): 1070-3.
  16. Darby A.C., Mcinnes C.J., Kjaer K.H., Wood A.R., Hughes M., Martensen P.M., et al. Novel host-related virulence factors are encoded by squirrelpox virus, the main causative agent of epidemic disease in red squirrels in the UK. Plos One. 2014; 9(7): e96439.
  17. Alcami A. Viral mimicry of cytokines, chemokines and their receptors. Nat. Rev. Immunol. 2003; 3(1): 36-50.
  18. Haga I.R., Bowie A.G. Evasion of innate immunity by vaccinia virus. Parasitology. 2005; 130: 11-25.
  19. Seet В.Т., Johnston J.B., Brunetti C.R., Barrett J.W., Everett H., Cameron C.M., et al. Poxviruses and immune evasion. Annu. Rev. Immunol. 2003; 21: 377-423.
  20. Taylor J.M., Barry M. Near death experiences: poxvirus regulation of apoptotic death. Virology. 2006; 344(1): 139-50.
  21. Perdiguero B., Esteban M. The interferon system and vaccinia virus evasion mechanisms. J. Interferon Cytokine Res. 2009; 29(9): 581-98.
  22. Garcia M.A., Gil J., Ventoso I., Guerra S., Domingo E., Rivas C., et al. Impact of protein kinase PKR in cell biology: from antiviral to antiproliferative action. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2006; 70(4): 1032-60.
  23. Gil J., Rullas J., Alcam J., Esteban M. MG159L protein from the poxvirus molluscum contagiosum virus inhibits NF-kappaß activation and apoptosis induced by PKR. J. Gen. Virol. 2001; 82(pt. 12): 3027-34.
  24. Haller O., Kochs G., Weber F. Interferon, Mx, and viral countermeasures. Cytokine Growth Factor Rev. 2007; 18(5-6): 425-33.
  25. Brandt Т.А., Jacobs B.L. Both carboxy- and amino-terminal domains of the vaccinia virus interferon resistance gene, E3L, are required for pathogenesis in a mouse model. J. Virol. 2001; 75(2): 850-6.
  26. Gardai S.J., Bratton D.L., Ogden G.A., Henson P.M. Recognition ligands on apoptotic cells: a perspective. J. Leukoc. Biol. 2006; 79(5): 896-903.
  27. Pettersen R.D. CD47 and death signaling in the immune system. Apoptosis. 2000; 5(4): 299-306.
  28. Cameron C.M., Barrett J.W., Mann M., Lucas A., McFadden G. Myxoma virus M128L is expressed as a cell surface CD47-like virulence factor that contributes to the down regulation of macrophage activation in vivo. Virology. 2005; 337(1): 55-67.
  29. Himswort C.G., Musil K.M., Bryan L., Hill J.E. Poxvirus infections in an American red squirrel (Tamiasciurus hudsonicus) from northwestern Canada. J. Wildl. Dis. 2009; 45(4): 1143-9.
  30. Collins L.M., Warnock N.D., Tosh D.G., Mcinnes C., Everest D., Montgomery W.I., et al. Squirrelpox virus: assessing prevalence, transmission and environmental degradation. Plos One. 2014; 9(2): e89521.
  31. McLysaght A., Baldi P.F., Gaut B.S. Extensive gene gain associated with adaptive evolution of poxviruses. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003; 100(26): 15655-60.

© Борисевич С.В., Стовба Л.Ф., Павельев Д.И., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах