Diversity of Hydrobionts of the Different Type Salt Lakes in the South-Eastern Transbaikalia in the Period of Moisture Changing

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

The results of a complex hydrochemical and hydrobiological study of salt lakes in the South-Eastern Transbaikalia during the period of moisture change are presented. The studied lakes, according to the geochemical classification, belong to the chloride and soda types. The taxonomic diversity of aquatic biota decreases while the salinity increases and the hydrochemical type of lakes changes from soda oligo-mesohaline (4–16 g/L) to chloride eu-hyperhaline (33–70 g/L) and to soda hyperhaline (128–231 g/L). In soda oligo-mesohaline and chloride lakes the phytoplankton taxonomic composition is similar and is represented by green and diatom algae, as well as cyanobacteria. Submerged aquatic plants are represented by Stuckenia pectinata in soda oligo-mesohaline lakes. Ruppia maritime was found in the Dabasa-Nor chloride lake. In zooplankton and zoobenthos, rotifers and chironomids dominated respectively. Quantitative characteristics of phytoplankton in oligo-mesohaline lakes are lower than in hyperhaline soda and eu-hyperhaline chloride lakes. The phytomass of submerged aquatic plants, on the contrary, is higher in oligo-mesohaline lakes. In the hypersaline soda lake Borzinskoye, zoobenthos and zooplankton organisms are represented by planktonobenthos species, namely Anostrica, with low abundance.

Full Text

Restricted Access

About the authors

B. B. Bazarova

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Author for correspondence.
Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

S. V. Borzenko

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

N. A. Tashlykova

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

E. Yu. Afonina

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

G. Ts. Tsybekmitova

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

P. V. Matafonov

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

A. P. Kuklin

Institute of Natural Resources, Ecology and Cryology, Siberian Branchn Academy of Sciences

Email: balgit@mail.ru
Russian Federation, Chita

References

  1. Алимов А.Ф. 2008. Связь биологического разнообразия в континентальных водоемах с их морфометрией и минерализацией вод // Биология внутр. вод. № 1. Т. 1. С. 3.
  2. Афонина Е.Ю., Ташлыкова Н.А. 2019. Планктон минеральных озер Юго-Восточного Забайкалья: трансформация и факторы среды // Сибир. экол. журн. № 2. С. 192. https://doi.org/10.15372/SEJ20190204
  3. Балушкина Е.Б., Винберг Г.Г. 1979. Зависимость между массой и длиной тела у планктонных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука.
  4. Борзенко С.В. 2020. Основные условия формирования химического состава вод соленых и солоноватых озер Восточного Забайкалья // Геохимия. Т. 65. №. 12. С. 1212. https://doi.org/10.31857/S0016752520090034
  5. Борзенко С.В., Федоров И.А. 2019. Основные формы миграции металлов в присутствии гуминовых веществ в содовых озерах Восточного Забайкалья // Изв. Томск. политехн. ун-та. Инжиниринг георесурсов. Т. 330. № 3. С. 18. https://doi.org/10.18799/24131830/2019/3/155
  6. Боруцкий Е.В., Степанова Л.А., Кос М.С. 1991. Определитель Calanoida пресных вод СССР. СПб.: Наука.
  7. Виноградова К.Л., Голлербах М.М., Зауер Л.М., Сдобникова Н.В. 1980. Зеленые водоросли — Chlorophyta: Классы сифонокладовые, сифоновые (Siphonocladophyceae, Siphonophyceae). Красные — Rhodophyta. Бурые — Phaeophyta // Определитель пресноводных водорослей СССР. Вып.13. Л.: Наука.
  8. Голлербах М.М., Косинская Е.К., Полянский В.И. 1953. Синезеленые водоросли // Определитель пресноводных водорослей СССР. Вып. 2. М.: Сов. наука.
  9. Горбулин О.С. 2011. Эколого-биологические характеристики Cryptophyta флоры Украины // Вісник Харківського національного університету імені ВН Каразіна. Серія: Біологія. T. 13. С. 47.
  10. Горохова О.Г., Зинченко Т.Д. 2014. Фитопланктон высокоминерализованных рек Приэльтонья // Изв. Самар. науч. центра РАН. Т. 16. № 5–5. С. 1715.
  11. Давыдова Н.Д. 2022. Изменения в компонентах степных геосистем Юго-Восточного Забайкалья в условиях потепления климата // Аридные экосистемы. Т. 28. № 1 (90). С. 3. https://doi.org/10.24412/1993-3916-2022-1-3-10
  12. Зайцеа С.В., Абидуева Е.Ю., Зайцева К.В., Сун Ч.-Х. 2021. Особенности микробного состава содовых озер Белорезской группы (республика Бурятия) // Биология внутр. вод. № 4. С. 343. https://doi.org/10.31857/S0320965221040161
  13. Зинченко Т.Д., Головатюк Л.В. 2010. Биоразнообразие и структура сообществ макрозообентоса соленых рек аридной зоны юга России (Приэльтонье) // Аридные экосистемы. Т. 16. № 3(43).
  14. Катанская В.М. 1981. Высшая водная растительность континентальных водоемов СССР. Методы изучения. Л.: Наука.
  15. Киселев И.А. 1969. Планктон морей и континентальных водоемов. Т. 1. Л.: Наука.
  16. Коровчинский Н.М., Котов А.А., Синев А.Ю. и др. 2021. Ветвистоусые ракообразные (Crustacea: Cladocera) Северной Евразии. Т. 2. М.: Тов-во науч. изд. КМК.
  17. Куклин А.П., Цыбекмитова Г.Ц., Горлачева Е.П. 2013. Состояние водных экосистем озер Онон-Торейской равнины в 1983–2011 гг. (Восточное Забайкалье) // Аридные экосистемы. Т.19. № 3. С. 122. https://doi.org/10.1134/S2079096113030062
  18. Литвиненко Л.И., Литвиненко А.И., Бойко Е.Г., Куцанов К.В. 2013. Влияние факторов внешней среды на структуру и функционирование биоценозов гипергалинных водоемов юга Западной Сибири // Сибир. экол. журн. Т. 3. С. 321.
  19. Макеева ЕГ., Осипова Н.В. 2022. Водоросли соленого оз. Алтайское (республика Хакасия): таксономический состав и экологические особенности // Биология внутр. вод. № 2. С. 118. https://doi.org/10.31857/S0320965222020073
  20. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях. 1982. Л.: ГосНИОРХ.
  21. Намсараев B.B. 2009. Соленость и соленые озера Забайкалья: гидрохимия, биология. Улан-Удэ: БГУ.
  22. Немцева Н.В., Плотников А.О., Яценко-Степанова Т.Н. и др. 2005. Планктонные сообщества уникальных гипергалинных и мезогалинных озер Оренбуржья // Вестн. ОГУ. T. 5. P. 35.
  23. Пырина И.Л., Ляшенко Г.Ф. 2005. Многолетняя динамика продуктивности фитопланктона и высшей водной растительности и их роль в продуцировании органического вещества в зарастающем Иваньковском водохранилище // Биология внутр. вод. № 3. С. 48.
  24. Рогозин Д.Ю., Задереев Е.С., Прокопкин И.Г. и др. 2019. Cравнительное исследование устойчивости стратификации и структуры трофической сети в меромиктических озерах Шира и Шунет (Южная Сибирь, Россия) // Биофизика для экологии и медицины: К 90-летию академика РАН И.И. Гительзона. Новосибирск. С. 210.
  25. Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. 1992. СПб.: Гидрометеоиздат.
  26. Рундина Л.А. 1998. Зигнемовые водоросли России (Chlorophyta: Zygnematophyceae, Zygnematales). СПб.: Наука.
  27. Садчиков А.П. 2003. Методы изучения пресноводного фитопланктона. М.: Изд-во “Университет и школа”.
  28. Свириденко Б.Ф., Свириденко Т.В., Мурашко Ю.А. 2019. Нитчатые зигнемовые водоросли (Zygnematales) Западно-Сибирской равнины. Омск: Изд-во Амфора.
  29. Содовые озера Забайкалья: экология и продуктивность. 1991. Новосибирск: Наука.
  30. Шипунов А.Б., Балдин Е.М., Волкова П.А. и др. 2014. Наглядная статистика, используем R! М.: ДМК Пресс.
  31. Яценко-Степанова Т.Н., Немцева Н.В., Шабанов С.В. 2005. Альгофлора Оренбуржья. Екатеринбург: УрО РАН.
  32. Bazarova B.B., Tashlykova N.A., Afonina E.Yu. et al. 2019. Long-term fluctuations of the aquatic ecosystems in the Onon-Torey Plain (Russia) // Acta Ecologica Sinica. V. 39. P. 157. https://doi.org/10.1016/j.chnaes.2018.08.003
  33. Bezmaternykh D.M., Zhukova O.N. 2013. Composition, structure, and formation factors of bottom invertebrate communities in lakes of the Sourthern Ob-Irtysh Interfluve // Russ. J. Ecol. № 2. P. 170. https://doi.org/10.1134/S1067413613020057
  34. Borzenko S.V. 2021. The main formation processes for different types of salt lakes: evidence from isotopic composition with case studies of lakes in Transbaikalia // Sci. Total Environ. V. 782. С. 146782.
  35. http://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.146782
  36. Borzenko S.V., Shvartsev S.L. 2019. Сhemical composition of salt lakes in East Transbaikalia (Russia) // Applied Geochemistry. V. 103. С. 72. http://doi.org/10.1016/j.apgeochem.2019.02.014
  37. Degermendzhy A.G., Zadereev E.S., Rogozin D.Y. et al. 2010. Vertical stratification of physical, chemical and biological components in two saline lakes Shira and Shunet (South Siberia) // Aquat. Ecol. V. 44(3). P. 619.
  38. Derry A., Prepas E., Hebert P. 2003. A comparison of zooplankton communities in saline lake water with variable anion composition // Hydrobiologia. V. 505. P. 199.
  39. Dimier C., Tramontano F., Geider R.D. et al. 2009. Growth and photoregulation dynamics of the picoeukaryote Pelagomonas calceolata in fluctuating light // Limnol., Oceanogr. V. 54. P. 823. https://www.jstor.org/stable/40271733
  40. Garcia M.E., Aboal M. 2014. Environmental gradients and macroalgae in Mediterranean marshes: the case of Pego-Oliva marsh (East Iberian Peninsula) // Sci. Total Environ. V. 475. P. 216. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2013.10.014
  41. Guiry M.D., Guiry G.M. AlgaeBase. 2022. World-wide electronic publication, National University of Ireland, Galway. URL: http: //www.algaebase.org (date of the application: 20.08.2022).
  42. Hainz R., Wöber C., Schagerl M. 2009. The relationship between Spirogyra (Zygnematophyceae, Streptophyta) filament type groups and environmental conditions in Central Europe // Aquat. Bot. V. 91 (3). P. 173. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2009.05.004
  43. Hammer T.U. 1986. Saline lake ecosystems of the world. Dordrecht: Dr. W. Junk Publishers.
  44. Hammer U.T. 1988. Aquatic macrophytes in saline lakes of the Canadian prairies // Hydrobiologia. V. 158. P. 101.
  45. Hammer U.T., Sheard J.S., Kranabetter J. 1990. Distribution and abundance of littoral benthic fauna in Canadian prairie saline lakes // Hydrobiologia. V. 197. P. 173.
  46. Ionescu V. Năstăsescu M. Spiridon L. Bulgăreanu V.A.C. 1998. The biota of Romanian saline lakes on rock salt bodies. A review // Int. J. Salt Lake Res. V. 7. P. 45.
  47. Jirsa F., Gruber M., Stojanovic A., Oduor S.O. et al. 2013. Major and trace element geochemistry of Lake Bogoria and Lake Nakuru, Kenya, during extreme drought // Chem Erde-Geochem V. 73. P. 275.
  48. Komárek J. 2013. Cyanoprokaryota. Süβwasserflora von Mitteleuropa. Bd 19/3. Berlin: Heidelberg.
  49. Markager S., Vincent W.F., Tang E.P.Y. 1999. Carbon fixation by phytoplankton in high Arctic lakes: Implications of low temperature for photosynthesis // Limnol., Oceanogr. V. 44(3). P. 597.
  50. Matafonov P.V. 2022. Influence of meromixia on the distribution of zoobenthos and zooplankton in the salt soda lake Doroninskoe // IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci. 962 012026
  51. Okhapkin A., Sharagina E., Kulizin P. et al. 2022. Phytoplankton Community Structure in Highly-Mineralized Small Gypsum Karst Lake (Russia) // Microorganisms. V. 10(2). P. 386.
  52. Padisa´k J., Naselli-Flores L. 2021. Phytoplankton in extreme environments: importance and consequences of habitat permanency // Hydrobiologia. V. 848. P. 157.
  53. Pikosz M., Messyasz B., Gabka M. 2017. Functional structure of algal mat (Cladophora glomerata) in a freshwater in western Poland // Ecol. Indicators. V. 74. P. 1.
  54. Ruttner-Kolisko A. 1977. Suggestions for biomass calculation of plankton rotifers // Arch. Hydrobiol. Beih. Ergebn. Limnol. Struttgart. Bd 8. P. 71.
  55. Short T.M., Black J.A., Birge W.J. 1991. Ecology of a saline stream: community responses to spatial gradients of environmental conditions // Hydrobiologia. V. 226. P. 167.
  56. Soda lakes of East Africa. 2016. Cham: Springer International Publ.
  57. Tóth A., Horváth Z., Vad C.F. et al. 2014. Zooplankton of the European soda pans: Fauna and conservation of a unique habitat type // Int. ReV. Hydrobiol. V. 99. P. 1. https://doi.org/ 10.1002/iroh.201301646
  58. Walker K.F. 1973. Studies on a saline lake ecosystem // Mar. Freshwater Res. V. 24(1). P. 21.
  59. Wen Z., Zhi-Hui H. 1999. Biological and ecological features of inland saline waters in North Hebei, China // Int. J. Salt Lake Res. V. 8(3). P. 267.
  60. Williams W.D. 1998. Salinity as a determinant of the structure of biological community in salt lakes // Hydrobiologia. V. 381. P. 191 https://doi.org/10.1023/A:1003287826503
  61. Williams W.D. 2002. Environmental threats to salt lakes and the likely status of inland saline ecosystems in 2025 // Environ. Conservation. V. 29 (2). P. 154. https://doi.org/S0376892902000103

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Рис. 1. Карта-схема района исследований. Озера: 1 – Байн-Цаган, 2 – Байм-Булаг, 3 – Балыктуй, 4 – Куджертай, 5 – Ножий, 6 – Нижний Мукей, 7 – Укшинда, 8 – Борзинское, 9 – Дабаса-Нор, 10 – Горбунка, 11 – Хилганта.

Download (728KB)
Indexing metadata
3. Рис. 2. Связь солености (TDS, г/л) с содержанием основных анионов (а) и катионов (б) (мг/л).

Download (149KB)
Indexing metadata
4. Рис. 3. Ориентация исследованных озер на плоскости двух факторов.

Download (150KB)
Indexing metadata
5. Рис. 4. Проекция векторов физико-химических параметров среды озер и биоразнообразия гидробионтов в плоскости двух главных компонент. Ж — жесткость воды; ПО – перманганатная окисляемость; ХПК — химическое потребление кислорода; H — глубина отбора проб; Ptot — общий фосфор; TDS — соленость; T — температура; Tr — прозрачность; Turb — мутность. r – макрофиты; p – фитопланктон; ◊ – зоопланктон; ♦ – зообентос.

Download (317KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2024 The Russian Academy of Sciences

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies