Вклад окситоцина и дофамина в формирование нейронных кластеров в неокортексе, отображающих разномодальные сенсорные стимулы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Унифицированный механизм формирования контрастных отображений разномодальных сенсорных стимулов в активности нейронов неокортекса предложен нами ранее. В основе контрастирования лежит разнонаправленный знак модификации эффективности сильных и слабых возбудительных входов к шипиковым клеткам стриатума (входной структуры базальных ганглиев) и последующая дофамин-зависимая реорганизации активности в параллельных цепях кора – базальные ганглии – таламус – кора. Окситоцин и дофамин (через Д1 рецепторы) могут улучшить контрастирование этих отображений, способствуя индукции длительной потенциации эффективность возбуждения нейронов коры, таламуса и гиппокампа, иннервирующих шипиковые клетки. Кроме того, окситоцин и дофамин могут улучшать контрастирование, способствуя увеличению отношения сигнал / шум в коре, гиппокампе и стриатуме. Предложен механизм увеличения отношения сигнал / шум, в основе которого лежит разнонаправленный знак длительной модификации эффективности моносинаптического возбудительного и дисинаптического тормозного входов, одновременно воздействующих на постсинаптический нейрон. Предлагаемые механизмы могут лежать в основе вклада окситоцина и дофамина в улучшение формирования и длительного поддержания активности в нейронных группах со сходными рецептивными полями, образующих колонки в первичной зрительной коре, тонотопическую карту в первичной слуховой коре, соматотопическую карту в соматосенсорной коре и распределенные кластеры в обонятельной пириформной коре. Эти механизмы отличаются от общепринятых механизмов формирования нейронных кластеров в коре со сходными рецептивными полями, базирующихся на афферентном и латеральном возбуждении и торможении, что не позволяет обеспечить специфичность и длительность эффектов. Понимание механизмов участия окситоцина и дофамина в обработке разномодальной сенсорной информации может быть полезным для разработки методов лечения некоторых нарушений социального поведения.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

И. Г. Силькис

Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: isa-silkis@mail.ru
Россия, 117485, Москва

Список литературы

  1. Силькис И.Г. Унифицированный постсинаптический механизм влияния различных нейромодуляторов на модификацию возбудительных и тормозных входов к нейронам гиппокампа (Гипотеза) // Успехи физиол. наук. 2002а. T. 33. № 1. C. 40.
  2. Силькис И.Г. Возможный механизм влияния нейромодуляторов и модифицируемого торможения на длительную потенциацию и депрессию возбудительных входов к основным нейронам гиппокампа // Журн. высш. нерв. деят. им. И.П. Павлова. 2002b. T. 52. № 4. C. 392.
  3. Силькис И.Г. Возможные механизмы участия субталамического ядра и связанных с ним структур в двигательных нарушениях, вызванных дефицитом дофамина // Успехи физиол. наук. 2005. Т. 36. № 2. С. 66.
  4. Силькис И.Г. Роль дофамин-зависимых перестроек активности в цепях кора – базальные ганглии – таламус – кора в зрительном внимании (гипотетический механизм) // Успехи физиол. наук. 2007. Т. 38. № 4. С. 21.
  5. Силькис И.Г. Механизмы влияния дофамина на функционирование базальных ганглиев и выбор движения (сопоставление моделей) // Нейрохимия. 2013. T. 30. № 4. C. 305. https://doi.org/10.7868/S1027813313030138
  6. Силькис И.Г. Механизмы взаимозависимого влияния префронтальной коры, гиппокампа и миндалины на функционирование базальных ганглиев и выбор поведения // Журн. высш. нерв. деят. им. И.П. Павлова. 2014. T. 64. № 1. C. 82. https://doi.org/10.7868/S0044467714010110
  7. Силькис И.Г. О роли базальных ганглиев в формировании рецептивных полей нейронов первичной слуховой коры и механизмы их пластичности // Успехи физиол. наук. 2015a. Т. 46. № 3. С. 60.
  8. Силькис И.Г. О роли базальных ганглиев в обработке сложных звуковых стимулов и слуховом внимании // Успехи физиол. наук. 2015b. T. 46. № 3. P. 76.
  9. Силькис И.Г. Роль базальных ганглиев, внимания и эмоций в перестройках рецептивных полей нейронов первичной слуховой коры и выборе движения при обучении (гипотетический механизм) // Журн. высш. нерв. деят. 2019. Т. 69. № 6. С. 657. https://doi.org/10.1134/S004446771906011X
  10. Силькис И.Г. О сходстве механизмов обработки обонятельной, слуховой и зрительной информации в ЦНС (гипотеза) // Нейрохимия. 2023. Т. 40. № 1, C. 35. https://doi.org/10.31857/S1027813323010193
  11. Albus K., Chao H.H., Hicks T.P. Tachykinins preferentially excite certain complex cells in the infragranular layers of feline striate cortex // Brain Res. 1992. V. 587. № 2. P. 353. https://doi.org/10.1016/0006-8993(92)91019-b.
  12. Angelucci A., Bressloff P.C. Contribution of feedforward, lateral and feedback connections to the classical receptive field center and extra-classical receptive field surround of primate V1 neurons // Prog. Brain Res. 2006. V. 154. P. 93. https://doi.org/10.1016/S0079-6123(06)54005-1.
  13. Atencio C.A., Schreiner C.E. Columnar connectivity and laminar processing in cat primary auditory cortex // PLoS One. 2010. V. 5. № 3. P. e9521. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0009521
  14. Atencio C.A., Schreiner C.E. Functional congruity in local auditory cortical microcircuits // Neuroscience. 2016. V. 316. P. 402. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2015.12.057
  15. Bao S., Chan V.T., Merzenich M.M. Cortical remodeling induced by activity of ventral tegmental dopamine neurons // Nature. 2001. V. 412. № 6842. P. 79. https://doi.org/10.1038/35083586
  16. Beets I., Temmerman L., Janssen T., Schoofs L. Ancient neuromodulation by vasopressin/oxytocin-related peptides // Worm. 2013. V. 2. № 2. P. e24246. https://doi.org/10.4161/worm.24246
  17. Bracci E., Centonze D., Bernardi G., Calabresi P. Dopamine excites fast-spiking interneurons in the striatum // J. Neurophysiol. 2002. V. 87. № 4. P. 2190. https://doi.org/10.1152/jn.00754.2001
  18. Chalk M., Masset P., Deneve S., Gutkin B. Sensory noise predicts divisive reshaping of receptive fields // PLoS Comput. Biol. 2017. V. 13. № 6. P. e1005582. https://doi.org/10.1371/journal.pcbi.1005582
  19. Chang Y.S., Owen J.P., Desai S.S., Hill S.S., Arnett A.B., Harris J., Marco E.J., Mukherjee P. Autism and sensory processing disorders: Shared white matter disruption in sensory pathways but divergent connectivity in social-emotional pathways // PLoS ONE. 2014. V. 9. № 7. P. e103038. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0103038
  20. Chen L., Bohanick J.D., Nishihara M., Seamans J.K., Yang C.R. Dopamine D1/5 receptor-mediated long-term potentiation of intrinsic excitability in rat prefrontal cortical neurons: Ca2+-dependent intracellular signaling // J. Neurophysiol. 2007. V. 97. № 3. P. 2448. https://doi.org/10.1152/jn.00317.2006
  21. Choe H.K., Reed M.D., Benavidez N., Montgomery D., Soares N., Yim Y.S., Choi G.B. Oxytocin mediates entrainment of sensory stimuli to social cues of opposing valence // Neuron. 2015. V. 87. № 1. P. 152. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2015.06.022
  22. Choi W.S., Machida C.A., Ronnekleiv O.K. Distribution of dopamine D1, D2, and D5 receptor mRNAs in the monkey brain: ribonuclease protection assay analysis // Mol. Brain Res. 1995. V. 31. № 1-2. P. 86. https://doi.org/10.1016/0169-328x(95)00038-t
  23. Cui G., Jun S,B., Jin X., Pham M.D., Vogel S.S., Lovinger D.M., Costa R.M. Concurrent activation of striatal direct and indirect pathways during action initiation // Nature. 2013. V. 494. № 7436. P. 238. https://doi.org/10.1038/nature11846
  24. Domes G., Sibold M., Schulze L., Lischke A., Herpertz S.C., Heinrichs M. Intranasal oxytocin increases covert attention to positive social cues // Psychol. Med. 2013. V. 43. № 8. P. 1747. https://doi.org/10.1017/S0033291712002565
  25. Fang L.Y., Quan R.D., Kaba H. Oxytocin facilitates the induction of long-term potentiation in the accessory olfactory bulb // Neurosci. Lett. 2008. V. 438. № 2. P.133. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2007.12.070
  26. Freeman S.M., Young L.J. Comparative perspectives on oxytocin and vasopressin receptor research in rodents and primates: translational implications // J. Neuroendocrinol. 2016. V. 28. № 4. P. 10.1111/jne.12382. https://doi.org/10.1111/jne.12382
  27. Friend D.M., Kravitz A.V. Working together: basal ganglia pathways in action selection // Trends Neurosci. 2014. V. 37. № 6. P. 301. https://doi.org/10.1016/j.tins.2014.04.004
  28. Fritz J., Elhilali M., Shamma S. Active listening: task-dependent plasticity of spectrotemporal receptive fields in primary auditory cortex // Hear. Res. 2005. V. 206. № 1-2. P. 159. https://doi.org/10.1016/j.heares.2005.01.015
  29. Fritz J., Shamma S., Elhilali M., Klein D. Rapid task-related plasticity of spectrotemporal receptive fields in primary auditory cortex // Nat. Neurosci. 2003. V. 6. № 11. P. 1216. https://doi.org/10.1038/nn1141
  30. Froemke R.C., Young L.J. Oxytocin, neural plasticity, and social behavior // Annu. Rev. Neurosci. 2021. V. 44. P. 359. https://doi.org/10.1146/annurev-neuro-102320-102847
  31. Gittis A.H., Nelson A.B., Thwin M.T., Palop J.J., Kreitzer A.C. Distinct roles of GABAergic interneurons in the regulation of striatal output pathways // J. Neurosci. 2010. V. 30. № 6. P. 2223. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4870-09.2010
  32. Gombköto P., Rokszin A., Berényi A., Braunitzer G., Utassy G., Benedek G., Nagy A. Neuronal code of spatial visual information in the caudate nucleus // Neuroscience. 2011. V. 182. P. 225. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2011.02.048
  33. Graziano M.S., Gross C.G. A bimodal map of space: somatosensory receptive fields in the macaque putamen with corresponding visual receptive fields // Exp. Brain Res. 1993. V. 97. № 1. P. 96. https://doi.org/10.1007/BF00228820
  34. Grinevich V., Stoop R. Interplay between oxytocin and sensory systems in the orchestration of socio-emotional behaviors // Neuron. 2018. V. 99. № 5. P. 887. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2018.07.016
  35. Haber S.N. Corticostriatal circuitry // Dialogues Clin. Neurosci. 2016. V. 18. № 1. P. 7. https://doi.org/10.31887/DCNS.2016.18.1/shaber
  36. Haynes W.I., Haber S.N. The organization of prefrontal-subthalamic inputs in primates provides an anatomical substrate for both functional specificity and integration: implications for Basal Ganglia models and deep brain stimulation // J. Neurosci. 2013. V. 33. № 11. P. 4804. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4674-12.2013
  37. Hicks T.P., Albus K., Kaneko T., Baumfalk U. Examination of the effects of cholecystokinin 26-33 and neuropeptide Y on responses of visual cortical neurons of the cat // Neuroscience. 1993. V. 52. № 2. P. 263. https://doi.org/10.1016/0306-4522(93)90155-9
  38. Hodos W., Butler A.B. Evolution of sensory pathways in vertebrates // Brain Behav. Evol. 1997. V. 50. № 4. P. 189. https://doi.org/10.1159/000113333
  39. Hofstetter S., Dumoulin S.O. Tuned neural responses to haptic numerosity in the putamen // Neuroimage. 2021. V. 238. P. 118178. https://doi.org/10.1016/j.neuroimage.2021.118178
  40. Hosp J.A., Hertler B., Atiemo C.O., Luft A.R. Dopaminergic modulation of receptive fields in rat sensorimotor cortex // Neuroimage. 2011. V. 54. № 1. P. 154. https://doi.org/10.1016/j.neuroimage.2010.07.029
  41. Huber D., Veinante P., Stoop R. Vasopressin and oxytocin excite distinct neuronal populations in the central amygdala // Science. 2005. V. 308. № 5719. P. 245. https://doi.org/10.1126/science.1105636
  42. Isaacson J.S. Odor representations in mammalian cortical circuits // Curr. Opin. Neurobiol. 2010. V. 20. № 3. P. 328. https://doi.org/10.1016/j.conb.2010.02.004
  43. Kha H.T., Finkelstein D.I., Tomas D., Drago J., Pow D.V., Horne M.K. Projections from the substantia nigra pars reticulata to the motor thalamus of the rat: single axon reconstructions and immunohistochemical study // J. Comp. Neurol. 2001. V. 440. № 1. P. 20. https://doi.org/10.1002/cne.1367
  44. Kirsch P., Esslinger C., Chen Q., Mier D., Lis S., Siddhanti S., Gruppe H., Mattay V.S., Gallhofer B., Meyer-Lindenberg A. Oxytocin modulates neural circuitry for social cognition and fear in humans // J. Neurosci. 2005. V. 25. № 49. P. 11489. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3984-05.2005
  45. Kröner S., Krimer L.S., Lewis D.A., Barrionuevo G. Dopamine increases inhibition in the monkey dorsolateral prefrontal cortex through cell type-specific modulation of interneurons // Cereb. Cortex. 2007. V. 17. № 5. P. 1020. https://doi.org/10.1093/cercor/bhl012
  46. Li Y.T., Ma W.P., Pan C.J., Zhang L.I., Tao H.W. Broadening of cortical inhibition mediates developmental sharpening of orientation selectivity // J. Neurosci. 2012. V. 32. № 12. P. 3981. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.5514-11.2012
  47. Li L.Y., Xiong X.R., Ibrahim L.A., Yuan W., Tao H.W., Zhang L.I. Differential receptive field properties of parvalbumin and somatostatin inhibitory neurons in mouse auditory cortex // Cereb. Cortex. 2015. V. 25. № 7. P. 782. https://doi.org/10.1093/cercor/bht417
  48. Lintas A., Silkis I. G., Albéri L., Villa A.E.P. Dopamine deficiency increases synchronized activity in the rat subthalamic nucleus // Brain Res. 2012. V. 1434. P. 142. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2011.09.005
  49. Marlin B.J., Mitre M., D’amour J.A., Chao M.V., Froemke R.C. Oxytocin enables maternal behaviour by balancing cortical inhibition // Nature. 2015. V. 520. № 7548. P. 499. https://doi.org/10.1038/nature14402
  50. Martiros N., Kapoor V., Kim S.E., Murthy VN. Distinct representation of cue-outcome association by D1 and D2 neurons in the ventral striatum’s olfactory tubercle // Elife. 2022. V. 11. P. e75463. https://doi.org/10.7554/eLife.75463
  51. Maubach K.A., Cody C., Jones R.S. Tachykinins may modify spontaneous epileptiform activity in the rat entorhinal cortex in vitro by activating GABAergic inhibition // Neuroscience. 1998. V. 83. № 4. P. 1047. https://doi.org/10.1016/s0306-4522(97)00469-7
  52. Meyer-Lindenberg A., Domes G., Kirsch P., Heinrichs M. Oxytocin and vasopressin in the human brain: social neuropeptides for translational medicine // Nat. Rev. Neurosci. 2011. V. 12. № 9. P. 524. https://doi.org/10.1038/nrn3044
  53. Miller L.J., Nielsen D.M., Schoen S.A., Brett-Green B.A. Perspectives on sensory processing disorder: a call for translational research // Front. Integr. Neurosci. 2009. V. 3. P. 22. https://doi.org/10.3389/neuro.07.022.2009
  54. Mitre M., Marlin B.J., Schiavo J.K., Morina E., Norden S.E., Hackett T.A., Aoki C.J., Chao M.V., Froemke R.C. A distributed network for social cognition enriched for oxytocin receptors // J. Neurosci. 2016. V. 36. № 8. P. 2517. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2409-15.2016
  55. Moaddab M., Hyland B.I., Brown C.H. Oxytocin excites nucleus accumbens shell neurons in vivo // Mol. Cell Neurosci. 2015. V. 68. P. 323. https://doi.org/10.1016/j.mcn.2015.08.013
  56. Moore A.K., Wehr M. Parvalbumin-expressing inhibitory interneurons in auditory cortex are well-tuned for frequency // J. Neurosci. 2013. V. 33. № 34. P. 13713. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0663-13.2013
  57. Murata K., Kanno M., Ieki N., Mori K., Yamaguchi M. Mapping of learned odor-induced motivated behaviors in the mouse olfactory tubercle // J. Neurosci. 2015. V. 35. № 29. P. 10581. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0073-15.2015
  58. Nagy A., Eördegh G., Norita M., Benedek G. Visual receptive field properties of excitatory neurons in the substantia nigra // Neuroscience. 2005. V. 130. № 2. P. 513. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2004.09.052
  59. Nagy A., Paróczy Z., Norita M., Benedek G. Multisensory responses and receptive field properties of neurons in the substantia nigra and in the caudate nucleus // Eur. J. Neurosci. 2005. V. 22. № 2. P. 419. https://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2005.04211.x
  60. Nakajima M., Görlich A., Heintz N. Oxytocin modulates female sociosexual behavior through a specific class of prefrontal cortical interneurons // Cell. 2014. V. 159. № 2. P. 295. https://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.020
  61. Naskar S., Qi J., Pereira F., Gerfen C.R., Lee S. Cell-type-specific recruitment of GABAergic interneurons in the primary somatosensory cortex by long-range inputs // Cell Rep. 2021. V. 34. № 8. P. 108774. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2021.108774
  62. Oettl L.L., Ravi N., Schneider M., Scheller M.F., Schneider P., Mitre M. et al. Oxytocin enhances social recognition by modulating cortical control of early olfactory processing // Neuron. 2016. V. 90. №3. P. 609. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2016.03.033
  63. Oettl L.L., Kelsch W. Oxytocin and olfaction // Curr. Top Behav. Neurosci. 2018. V. 35. P. 55. https://doi.org/10.1007/7854_2017_8
  64. Owen S.F., Tuncdemir S.N., Bader P.L., Tirko N.N., Fishell G., Tsien R.W. Oxytocin enhances hippocampal spike transmission by modulating fast-spiking interneurons // Nature. 2013. V. 500. №7463. P. 458. https://doi.org/10.1038/nature12330
  65. Papaleonidopoulos V., Kouvaros S., Papatheodoropoulos C. Effects of endogenous and exogenous D1/D5 dopamine receptor activation on LTP in ventral and dorsal CA1 hippocampal synapses // Synapse. 2018. V.72. № 8. P. e22033. https://doi.org/10.1002/syn
  66. Parent A., Hazrati L.N. Functional anatomy of the basal ganglia. I. The cortico-basal ganglia-thalamo-cortical loop // Brain Res. Rev. 1995. V. 20. № 1. P. 91. https://doi.org/10.1016/0165-0173(94)00007-c
  67. Pienkowski M., Harrison R.V. Tone frequency maps and receptive fields in the developing chinchilla auditory cortex // J. Neurophysiol. 2005. V. 93. № 1. P. 454. https://doi.org/10.1152/jn.00569.2004
  68. Potts Y., Bekkers J.M. Dopamine increases the intrinsic excitability of parvalbumin-expressing fast-spiking cells in the piriform cortex // Front. Cell Neurosci. 2022. V. 16. P. 919092. https://doi.org/10.3389/fncel.2022.919092
  69. Puschmann S., Brechmann A., Thiel C.M. Learning-dependent plasticity in human auditory cortex during appetitive operant conditioning // Hum. Brain Mapp. 2013. V. 34. № 11. P. 2841. https://doi.org/10.1002/hbm.22107
  70. Ramanathan G., Cilz N.I., Kurada L., Hu B., Wang X., Lei S. Vasopressin facilitates GABAergic transmission in rat hippocampus via activation of V(1A) receptors // Neuropharmacology. 2012. V. 63. № 7. P. 1218. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2012.07.043
  71. Rosselet C., Zennou-Azogui Y., Xerri C. Nursing-induced somatosensory cortex plasticity: temporally decoupled changes in neuronal receptive field properties are accompanied by modifications in activity-dependent protein expression // J. Neurosci. 2006. V. 26. P. 10667. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3253-06.2006
  72. Ruggieri V. Autism. Neurobiological aspects // Medicina (B Aires). 2022. V. 82. Suppl. 3. P. 57
  73. Silkis I. The cortico-basal ganglia-thalamocortical circuit with synaptic plasticity. I. Modification rules for excitatory and inhibitory synapses in the striatum // Biosystems. 2000. V. 57. № 3. P. 187. https://doi.org/10.1016/s0303-2647(00)00134-9.
  74. Silkis I. The cortico-basal ganglia-thalamocortical circuit with synaptic plasticity. II. Mechanism of synergistic modulation of thalamic activity via the direct and indirect pathways through the basal ganglia // Biosystems. 2001. V. 59. № 1. P. 7. https://doi.org/10. 1016/s0303-2647(00)00135-0
  75. Silkis I. A hypothetical role of cortico-basal ganglia-thalamocortical loops in visual processing // Biosystems. 2007. V. 89. № 1–3. P. 227. https://doi.org/10.1016/j.biosystems.2006.04.020
  76. Stalter M., Westendorff S., Nieder A. Dopamine gates visual signals in monkey prefrontal cortex neurons // Cell Rep. 2020. V. 30. № 1. P. 164.e4. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.11.082
  77. Stettler D.D., Axel R. Representations of odor in the piriform cortex // Neuron. 2009. V. 63. № 6. P. 854. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2009.09.005
  78. Stoop R., Hegoburu C., van den Burg E. New opportunities in vasopressin and oxytocin research: a perspective from the amygdala // Annu. Rev. Neurosci. 2015. V. 38. P. 369. https://doi.org/10.1146/annurev-neuro-071714-033904
  79. Szydlowski S.N., Pollak Dorocic I., Planert H., Carlén M., Meletis K., Silberberg G. Target selectivity of feedforward inhibition by striatal fast-spiking interneurons // J. Neurosci. 2013. V. 33. № 4. P. 1678. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3572-12.2013
  80. Takahashi H., Funamizu A., Mitsumori Y., Kose H., Kanzaki R. Progressive plasticity of auditory cortex during appetitive operant conditioning // Biosystems. 2010. V. 101. № 1. P. 37. https://doi.org/10.1016/j.biosystems.2010.04.003
  81. Tantirigama M.L., Huang H.H., Bekkers J.M. Spontaneous activity in the piriform cortex extends the dynamic range of cortical odor coding // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2017. V. 114. № 9. P. 2407. https://doi.org/10.1073/pnas.1620939114
  82. Tecuapetla F., Jin X., Lima S.Q., Costa R.M. Complementary contributions of striatal projection pathways to action initiation and execution // Cell. 2016. V. 166. № 3. P. 703. https://doi.org/10.1016/j.cell.2016.06.032
  83. Thiel C.M. Pharmacological modulation of learning-induced plasticity in human auditory cortex // Restor. Neurol. Neurosci. 2007. V. 25. № 3–4. P. 435.
  84. Uvnas-Moberg K., Handlin L., Petersson M. Self-soothing behaviors with particular reference to oxytocin release induced by non-noxious sensory stimulation // Front. Psychol. 2015. V. 5. P. 1529. https://doi.org/10.3389/fpsyg.2014.01529
  85. Valtcheva S., Froemke R.C. Neuromodulation of maternal circuits by oxytocin // Cell Tissue Res. 2019. V. 375. № 1. P. 57. https://doi.org/10.1007/s00441-018-2883-1
  86. White K.A, Zhang Y.F., Zhang Z., Bhattarai J.P., Moberly A.H., In ‘t Zandt E.E. et al. Glutamatergic neurons in the piriform cortex influence the activity of d1- and d2-type receptor-expressing olfactory tubercle neurons // J. Neurosci. 2019. V. 39. №48. P. 9546. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1444-19.2019
  87. Wilson D.A. Receptive fields in the rat piriform cortex // Chem. Senses. 2001. V. 26. №5. P. 577. https://doi.org/10.1093/chemse/26.5.577
  88. Xerri C., Stern J.M., Merzenich M.M. Alterations of the cortical representation of the rat ventrum induced by nursing behavior // J. Neurosci. 1994. V. 14. № 3. Pt. 2. P. 1710. https://doi.org/10.1038/nnl800
  89. Yao H., Li C.Y. Clustered organization of neurons with similar extra-receptive field properties in the primary visual cortex // Neuron. 2002. V. 35. № 3. P. 547. https://doi.org/10.1016/s0896-6273(02)00782-1
  90. Young L.J., Barrett C.E. Neuroscience. Can oxytocin treat autism? // Science. 2015. V. 347. № 6224. P. 825. https://doi.org/10.1126/science.aaa8120
  91. Young W.S., Song J. Characterization of oxytocin receptor expression within various neuronal populations of the mouse dorsal hippocampus // Front. Mol. Neurosci. 2020. V. 13. P. 40. https://doi.org/10.3389/fnmol.2020.00040
  92. Zaninetti M., Raggenbass M. Oxytocin receptor agonists enhance inhibitory synaptic transmission in the rat hippocampus by activating interneurons in stratum pyramidale // Eur. J. Neurosci. 2000. V. 12. № 11. P.3975–3984. https://doi.org/10.1046/j.1460-9568.2000.00290.x
  93. Zheng J-J., Li S-J., Zhang X-D, Miao W-Y., Zhang D., Yao H., Yu X. Oxytocin mediates early experience-dependent cross-modal plasticity in the sensory cortices //cNat. Neurosci. 2014. V. 17. № 3. P. 391. https://doi.org/10.1038/nn.3634
  94. Zhu Y., Qiao W., Liu K., Zhong H., Yao H. Control of response reliability by parvalbumin-expressing interneurons in visual cortex // Nat. Commun. 2015. V. 6. P. 6802. https://doi.org/10.1038/ncomms7802

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Упрощенная схема нейронной сети кора – базальные ганглии – таламус – кора, участвующей в обработке сенсорной информации и формировании отображений сенсорных стимулов в активности нейронных кластеров в коре. А – обработка сигналов, являющихся предпочтительными для нейронов коры; Б – обработка сигналов, не являющихся предпочтительными для нейронов коры. П и Н – кластеры пирамидных клеток в коре, сильно и слабо активированных сенсорным стимулом, который являлся для них предпочтительным и не предпочтительным, соответственно. Стриат. – стриатум, Д1 и Д2 – рецепторы дофамина; С-Н и С-П – стрионигральные и стриопаллидарные шипиковые клетки соответственно; ЧВр и ЧВк – ретикулярная и компактная части черного вещества соответственно; БШн – наружная часть бледного шара. ЧВр и БШн содержат проекционные ГАМКергические клетки. ППЯ – педункулопонтийное ядро; ВД и НД – верхнее и нижнее двухолмие соответственно. ДА – дофамин. Сенс. кора – сенсорная кора. Сенс. стимул – сенсорный стимул. Черные кружки – ГАМКергические клетки. Линии, заканчивающиеся черными стрелками и ромбами – возбудительные и тормозные входы соответственно. Маленькие треугольники и квадраты – потенцированные и депрессированные синаптические входы соответственно. Толстые и тонкие линии – сильные и слабые входы соответственно. Штрихпунктирные линии со светлыми стрелками – дофаминергические входы. Ядра базальных ганглиев очерчены более толстыми линиями, чем другие структуры.

Скачать (147KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Упрощенная схема участия окситоцина и дофамина в улучшении формировании отображения сенсорного стимула в активности пирамидной клетки, являющейся частью нейронного кластера в коре. Большой треугольник – пирамидная клетка. ТИ – тормозной интернейрон; Гипп – гиппокамп; ПфК – префронтальная кора; ВПП – вентральное поле покрышки; ПВЯ и СОЯ – паравентрикулярное и супраоптическое ядра гипоталамуса; СТЯ – субталамическое ядро. Линии, заканчивающиеся черными стрелками с обоих концов – двусторонние возбудительные связи. Пунктирные линии со светлыми стрелками – окситоцинергические входы. Остальные обозначения как на рис. 1.

Скачать (125KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах