Возможности использования механизма гипоксической адаптации у низших эукариот

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В аналитическом обзоре рассматриваются основные элементы митохондриальных перестроек, которые происходят в эукариотах, вынужденных длительное время находиться в гипоксических условиях. В этих организмах митохондрии сохраняют свою активность, причем не только синтетическую и сигнальную, но и биоэнергетическую, хотя и в малой степени. Перестройки, прежде всего сопровождающиеся обращением сукцинат дегидрогеназной реакции и наличием низкопотенциального хинона, позволяют обеспечить организмы энергией за счет комплекса I в митохондриях. Полное рассмотрение всех изменений, вызванных постоянным нахождением в гипоксических условиях, позволяет разработать антигипоксическую стратегию с устранением влияния нежелательных факторов, сопряженных с гипоксическими перестройками. С другой стороны, знание всех элементов индуцированных гипоксией перестроек позволяет использовать их в борьбе с клетками солидных опухолей, в окружении которых содержание кислорода минимально.

Об авторах

Д. Б. Зоров

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Email: zorov@belozersky.msu.ru
Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

Л. Д. Зорова

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

В. А. Бабенко

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

Д. С. Семенович

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

А. Е. Иванова

Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 117997 Россия

С. Д. Зоров

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова

Москва, 119991 Россия

И. Б. Певзнер

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

Е. Ю. Плотников

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

Д. Н. Силачев

Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова; Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 119991 Россия; Москва, 117997 Россия

Г. Т. Сухих

Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова Минздрава Российской Федерации

Москва, 117997 Россия

Список литературы

  1. Margulis L., Sagan D. 1986. The Oxygen Holocaust. In: Microcosmos: Four Billion Years of Evolution from Our Microbial Ancestors. California: University of California Press, p. 99–114.
  2. Zorov D.B., Juhaszova M., Sollott S.J. 2014. Mitochondrial reactive oxygen species (ROS) and ROS-induced ROS release. Physiol. Rev. 94 (3), 909–950.
  3. Zorov D.B., Bannikova S.Y., Belousov V.V., Vyssokikh M.Y., Zorova L.D., Isaev N.K., Krasnikov B.F., Plotnikov E.Y. 2015. Reactive oxygen and nitrogen species: Friends or foes? Biochemistry (Mosc).70 (2), 215–221.
  4. Zorov D.B., Isaev N.K., Plotnikov EY., Zorova L.D., Stelmashook E.V., Vasileva A.K., Arkhangelskaya A.A., Khrjapenkova T.G. 2007. The mitochondrion as janus bifrons. Biochemistry (Mosc). 72 (10), 1115–1126.
  5. Plotnikov E.Y., Vasileva A.K., Arkhangelskaya A.A., Pevzner I.B., Skulachev V.P., Zorov D.B. 2008. Interrelations of mitochondrial fragmentation and cell death under ischemia/reoxygenation and UV-irradiation: Protective effects of SkQ1, lithium ions and insulin. FEBS Lett. 582 (20), 3117–3124.
  6. Ito K., Nioka S., Chance B. 1990. Oxygen dependence of energy state and cardiac work in the perfused rat heart. Adv. Exp. Med. Biol. 277, 449–457.
  7. Chandel N.S., Budinger G.R., Choe S.H., Schumacker P.T. 1997. Cellular respiration during hypoxia. Role of cytochrome oxidase as the oxygen sensor in hepatocytes. J. Biol. Chem. 272 (30), 18808–18816.
  8. Korshunov S.S., Skulachev V.P., Starkov A.A. 1997. High protonic potential actuates a mechanism of production of reactive oxygen species in mitochondria. FEBS Lett. 416 (1), 15–18.
  9. Starkov A.A., Fiskum G. 2003. Regulation of brain mitochondrial H2O2 production by membrane potential and NAD(P)H redox state. J. Neurochem. 86 (5), 1101–1107.
  10. Krogh A. 1919. The supply of oxygen to the tissues and the regulation of the capillary circulation. J. Physiol. 52, 457–474.
  11. Chance B., Williams G.R. 1955. Respiratory enzymes in oxidative phosphorylation. IV. The respiratory chain. J. Biol. Chem. 217 (1), 429–438.
  12. Chance B., Cohen P., Jobsis F., Schoener B. 1962. Intracellular oxidation-reduction states in vivo. Science. 137 (3529), 499–508.
  13. Degn H., Wohlrab H. 1971. Measurement of steady-state values of respiration rate and oxidation levels of respiratory pigments at low oxygen tensions. A new technique. Biochim. Biophys. Acta. 245, 347–355.
  14. Rosenthal M., Lamanna J.C., Jöbsis F.F., Levasseur J.E., Kontos H.A., Patterson J.L. 1976. Effects of respiratory gases on cytochrome A in intact cerebral cortex: is there a critical Po2? Brain Res. 108 (1), 143–154.
  15. Jöbsis F.F., Keizer J.H., LaManna J.C., Rosenthal M. 1977. Reflectance spectrophotometry of cytochrome aa3 in vivo. J. Appl. Physiol. Respir. Environ. Exerc. Physiol. 43 (5), 858–872.
  16. Bashford C.L., Barlow C.H., Chance B., Haselgrove J., Sorge J. 1982. Optical measurements of oxygen delivery and consumption in gerbil cerebral cortex. Am. J. Physiol. 242 (5), C265–271.
  17. Zorov D.B., Krasnikov B.F., Kuzminova A.E., Vysokikh M.Yu., Zorova L.D. 1997. Mitochondria revisited. Alternative functions of mitochondria. Biosci. Rep. 17 (6), 507–520.
  18. Burmeste T. 2002. Origin and evolution of arthropod hemocyanins and related proteins. J. Comp. Physiol. [B]. 172, 95–107.
  19. Kurtz D.M. Jr. 1999. Oxygen-carrying proteins: Three solutions to a common problem. Essays Biochem. 34, 85–100.
  20. Burmester T., Hankeln T. 2014. Function and evolution of vertebrate globins. Acta Physiol. (Oxf). 211 (3), 501–514.
  21. Van Hellemond J.J., Klockiewicz M., Gaasenbeek C.P., Roos M.H., Tielens A.G. 1995. Rhodoquinone and complex II of the electron transport chain in anaerobically functioning eukaryotes. J. Biol. Chem. 270 (52), 31065–31070.
  22. Kita K., Hirawake H., Miyadera H., Amino H., Takeo S. 2002. Role of complex II in anaerobic respiration of the parasite mitochondria from Ascaris suum and Plasmodium falciparum. Biochim. Biophys. Acta. 553 (1–2), 123–139.
  23. Sakai C., Tomitsuka E., Esumi H., Harada S., Kita K. 2012. Mitochondrial fumarate reductase as a target of chemotherapy: from parasites to cancer cells. Biochim. Biophys. Acta. 1820 (5), 643–651.
  24. Valeros J., Jerome M., Tseyang T., Vo P., Do T., Palomino D.F., Grotehans N., Kunala M., Jerrett A.E., Hathiramani N.R., Mireku M, Magesh R.Y., Yenilmez B., Rosen P.C., Mann J.L., Myers J.W., Kunchok T., Manning T.L., Boercker L.N., Carr P.E., Munim M.B., Lewis C.A., Sabatini D.M., Kelly M., Xie J., Czech M.P., Gao G., Shepherd J.N., Walker A.K., Kim H., Watson E.V., Spinelli J.B. 2025. Rhodoquinone carries electrons in the mammalian electron transport chain. Cell. 188, 1084–1099.
  25. Ryan D.G., Murphy M.P., Frezza C., Prag H.A., Chouchani E.T., O’Neill L.A., Mills E.L. 2018. Coupling Krebs cycle metabolites to signalling in immunity and cancer. Nat. Metab. 1, 16–33.
  26. Bisbach C.M., Hass D.T., Robbings B.M., Rountree A.M., Sadilek M., Sweet I.R., Hurley J.B. 2020. Succinate can shuttle reducing power from the hypoxic retina to the O2-rich pigment epithelium. Cell Rep. 31, 107606.
  27. Reddy A., Bozi L.H.M., Yaghi O.K., Mills E.L., Xiao H., Nicholson H.E., Paschini M., Paulo J.A., Garrity R., Laznik-Bogoslavski D. et al. 2020. pH-Gated succinate secretion regulates muscle remodeling in response to exercise. Cell. 183, 62–75.e17.
  28. Toma I., Kang J.J., Sipos A., Vargas S., Bansal E., Hanner, F., Meer E., Peti-Peterdi J. 2008. Succinate receptor GPR91 provides a direct link between high glucose levels and renin release in murine and rabbit kidney. J. Clin. Investig. 118, 2526–2534.
  29. Wu K.K. 2023. Extracellular succinate: A physiological messenger and a pathological trigger. Int. J. Mol. Sci. 24, 11165.
  30. Selak M.A., Armour S.M., MacKenzie E.D., Boulahbel H., Watson D.G., Mansfield K.D., Pan Y., Simon M.C., Thompson C.B., Gottlieb E. 2005. Succinate links TCA cycle dysfunction to oncogenesis by inhibiting HIF-alpha prolyl hydroxylase. Cancer Cell. 7, 77–85.
  31. Michelucci A., Cordes T., Ghelfi J., Pailot A., Reiling N., Goldmann O., Binz T., Wegner A., Tallam A., Rausell A. et al. 2013. Immune-responsive gene 1 protein links metabolism to immunity by catalyzing itaconic acid production. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 110, 7820–7825.
  32. Jha A.K., Huang S.C.-C., Sergushichev A., Lampropoulou V., Ivanova Y., Loginicheva E., Chmielewski K., Stewart K.M., Ashall J., Everts B. et al. 2015. Network integration of parallel metabolic and transcriptional data reveals metabolic modules that regulate macrophage polarization. Immunity. 42, 419–430.
  33. Li Z., Zheng W., Kong W., Zeng T. 2023. T. Itaconate: A potent macrophage immunomodulator. Inflammation. 46, 1177–1191.
  34. De Souza D.P., Achuthan A., Lee M.K.S., Binger K.J., Lee M.C., Davidson S., Tull D.L., McConville M.J., Cook A.D., Murphy A.J. et al. 2019. Autocrine IFN-I inhibits isocitrate dehydrogenase in the TCA cycle of LPS-stimulated macrophages. J. Clin. Investig. 129, 4239–4244.
  35. Anderson N.M., Simon M.C. 2020. The tumor microenvironment. Curr. Biol. 30, R921–R925.
  36. Weiss J.M., Davies L.C., Karwan M., Ileva L., Ozaki M.K., Cheng R.Y.S., Ridnour L.A., Annunziata C.M., Wink D.A., McVicar D.W. 2018. Itaconic acid mediates crosstalk between macrophage metabolism and peritoneal tumors. J. Clin. Investig. 128, 3794–3805.
  37. Hansford R.G., Hogue B.A., Mildaziene V. 1997. Dependence of H2O2 formation by rat heart mitochondria on substrate availability and donor age. J. Bioenerg. Biomembr. 29 (1), 89–95. https://doi.org/10.1023/a:1022420007908
  38. Klingenberg M., Slenczka W. 1959. Pyridine nucleotide in liver mitochondria. An analysis of their redox relationships. Biochem. Z. 331, 486–517.
  39. Ernster L., Lee C.P. Energy-linked reduction of NAD+ by succinate. 1967. Methods Enzymol. 10, 729–738
  40. Stepanova A., Kahl A., Konrad C., Ten V., Starkov A.S., Galkin A. 2017. Reverse electron transfer results in a loss of flavin from mitochondrial complex I: Potential mechanism for brain ischemia reperfusion injury. J. Cereb. Blood Flow Metab. 37, 3649–3658.
  41. Szatrowski T.P., Nathan C.F. 1991. Production of large amounts of hydrogen peroxide by human tumor cells. Cancer Res. 51 (3), 794–798.
  42. Lloyd G.M. 1986. Energy metabolism and its regulation in the adult liver fluke Fasciola hepatica. Parasitology. 93 (1), 217–248. https://doi.org/10.1017/s0031182000049957
  43. Saz H.J. 1970. Comparative energy metabolisms of some parasitic helminths. 1970. J. Parasitol. 56 (4), 634–642.
  44. Bryant C. 1970. Electron transport in parasitic helminths and protozoa. Adv. Parasitol. 8, 139–172.
  45. Tomitsuka E., Kita K., Esumi H. 2010. The NADH-fumarate reductase system, a novel mitochondrial energy metabolism, is a new target for anticancer therapy in tumor microenvironments. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1201, 44–49.
  46. Kita K., Nihei C., Tomitsuka E. 2003. Parasite mitochondria as drug target: Diversity and dynamic changes during the life cycle. Curr. Med .Chem. 10 (23), 2535–2548.
  47. Van Hellemond J.J., van der Klei A, van Weelden S.W., Tielens A.G. 2003. Biochemical and evolutionary aspects of anaerobically functioning mitochondria. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 358 (1429), 205–215.
  48. Rustin P., Munnich A., Rötig A. 2002. Succinate dehydrogenase and human diseases: New insights into a well-known enzyme. Eur. J. Hum. Genet. 10 (5), 289–291.
  49. Ge Z. Potential of fumarate reductase as a novel therapeutic target in Helicobacter pylori infection. 2002. Expert. Opin. Ther. Targets. 6 (2), 135–146.
  50. Kita K., Takamiya S. Electron-transfer complexes in Ascaris mitochondria. 2002. Adv. Parasitol. 51, 95–131.
  51. Gibson T.E. The value of pharmacological studies in the development of new antinematodal drugs. 1971. J. Parasitol. 57 (4), 100–103.
  52. Zorova L.D., Abramicheva P.A., Andrianova N.V., Babenko V.A., Zorov S.D., Pevzner I.B., Popkov V.A., Semenovich D.S., Yakupova E.I., Silachev D.N., Plotnikov E.Y., Sukhikh G.T., Zorov D.B. 2024. Targeting mitochondria for cancer treatment. Pharmaceutics. 16 (4), 444.
  53. Wang G.L., Jiang B.H., Rue E.A., Semenza G.L. 1995. Hypoxia-inducible factor 1 is a basic-helix-loop-helix-PAS heterodimer regulated by cellular O2 tension. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 92, 5510–5514.
  54. Weidemann A., Johnson R.S. 2008. Biology of HIF-1alpha. Cell Death Differ. 2008. 15 (4), 621–627.
  55. Maxwell P.H., Pugh C.W., Ratcliffe P.J. 2001. Activation of the HIF pathway in cancer. Curr. Opin. Genet. Dev. 11, 293–299.
  56. Treinin M., Shliar J., Jiang H., Powell-Coffman J.A., Bromberg Z., Horowitz M. 2003. HIF-1 is required for heat acclimation in the nematode Caenorhabditis elegans. Physiol. Genomics. 2003. 14 (1), 17–24.
  57. Lee J., Lee J. 2013. Hypoxia-inducible Factor-1 (HIF-1)-independent hypoxia response of the small heat shock protein hsp-16.1 gene regulated by chromatin-remodeling factors in the nematode Caenorhabditis elegans. J. Biol. Chem. 288 (3), 1582–1589.
  58. Tannahill G.M., Curtis A.M., Adamik J., Palsson-McDermott E.M., McGettrick A.F., Goel G., Frezza C., Bernard N.J., Kelly B., Foley N.H., Zheng L., Gardet A., Tong Z., Jany S.S., Corr S.C., Haneklaus M., Caffrey B.E., Pierce K., Walmsley S., Beasley F.C., Cummins E., Nizet V., Whyte M., Taylor C.T., Lin H., Masters S.L., Gottlieb E., Kelly V.P., Clish C., Auron P.E., Xavier R.J., O'Neill L.A. 2013. Succinate is an inflammatory signal that induces IL-1β through HIF-1α. Nature. 496 (7444), 238–242.
  59. Lukyanova L.D., Kirova Y.I., Germanova E.L. 2018 The role of succinate in regulation of immediate HIF-1α expression in hypoxia. Bull. Exp. Biol. Med. 164 (3), 298–303.
  60. Selak M.A., Armour S.M., MacKenzie E.D., Boulahbel H., Watson D.G., Mansfield K.D., Pan Y., Simon M.C., Thompson C.B., Gottlieb E. 2005. Succinate links TCA cycle dysfunction to oncogenesis by inhibiting HIF-alpha prolyl hydroxylase. Cancer Cell. 7 (1), 77–85.
  61. Liu L., Tang W., Wu S., Ma J., Wei K. 2024. Pulmonary succinate receptor 1 elevation in high-fat diet mice exacerbates lipopolysaccharides-induced acute lung injury via sensing succinate. Biochim. Biophys. Acta Mol. Basis Dis. 1870 (5), 167119.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».