Изменение функций и архитектуры скелетной мышцы у человека под влиянием 21-суточной разгрузки двигательного аппарата без физической тренировки

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В настоящем исследовании была рассмотрена гипотеза о том, что значительные изменения в архитектуре антигравитационных мышц могут произойти при экспозиции в условиях продолжительной “сухой” водной иммерсии (СИ) и, из-за общего снижения физической активности могут наблюдаться некоторые структурные изменения в постуральных мышцах. Десять мужчин-добровольцев (возраст (средняя ± средняя ошибка) – 24.5 ± 3.9 года, рост – 176.1 ± 1.2 м, масса – 71.1 ± 3.4 кг)) приняли участия в исследовании влияния 21-суточной разгрузки мышечного аппарата в условиях СИ. Во время экспозиции испытуемые не использовали физическую тренировку. Сократительные свойства мышц-разгибателей и сгибателей стопы (максимальная произвольная сила (МПС) и отношение сила-скорость) оценивали с использованием изокинетического динамометра. Внутреннюю архитектуру двух головок трехглавой мышцы голени (медиальной (МИМ) и латеральной (ЛИМ) икроножных мышц) определяли методом ультразвуковой визуализации в условиях in vivo при углах голеностопного сустава –15° (тыльное сгибание), 0° (нейтральная анатомическая позиция) и +30° (подошвенное сгибание) с углом в коленном суставе 180°. В каждой позиции были получены продольные ультразвуковые изображения (УЗИ) МИМ и ЛИМ на проксимальных уровнях 30% расстоянии между подколенной складкой и центром латеральной лодыжки. УЗИ были получены в состоянии покоя при каждой позиции голеностопного сустава с определением длины волокна (Lв) и угла наклона (Θв) мышечных волокон относительно их апоневроза. После СИ МПС мышц-разгибателей стопы снизилась в среднем на 19% (до 122.6 ± 43.1 Нм, после 99.5 ± 22.7 Нм), но не обнаружено значительных изменений в мышцах-сгибателей стопы. При изменении угла в голеностопном суставе с –15° до +30° Lв изменялась с 43 ± 1 до 32 ± 2 мм (25.6%, p < 0.01) в МИМ и с 45 ± 2 до 34 ± 1 мм (24.4%, p < 0.01) для ЛИМ и Θв увеличивался с 21° ± 1° до 26° ± 2° (23.8%) в МИМ и с 14° ± 1° до 18° ± 2° (28.6%) в ЛИМ. Данные позволяют предположить, что архитектура и функция перистых мышц человека взаимосвязаны in vivo. Большие изменения в антигравитационной МИМ по сравнению с ЛИМ, возможно, связаны с различиями в относительной нагрузке этих мышц во время ежедневной активности. Различные Lв и Θв и их изменения после разгрузки могут быть связаны с различиями в силовых способностях мышц и эластических характеристиках сухожилий и апоневрозов. Структурные мышечные изменения можно рассматривать как адаптационный процесс в ответ на неиспользование.

Об авторах

Ю. А. Коряк

ФГБУН ГНЦ РФ – Институт медико-биологических проблем РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: yurikoryak@mail.ru
Россия, Москва

Т. Б. Кукоба

ФГБУН ГНЦ РФ – Институт медико-биологических проблем РАН

Email: yurikoryak@mail.ru
Россия, Москва

Д. Р. Бабич

ФГБУН ГНЦ РФ – Институт медико-биологических проблем РАН

Email: yurikoryak@mail.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Baker E.S., Barratt M.R., Wear M.L. Human Response to Space Flight / Principles of Clinical Medicine for Space Flight. Herausgeber: Barratt M.R., Lee P.S., 2000. P. 27.
  2. Ploutz-Snyder L., Ryder J., English K., Haddad F.K.B. Evidence report: Risk of impaired performance due to reduced muscle mass, strength, and endurance. HRP 47072, NASA Lyndon B. Johnson Space Center, Houston, Texas, 2015. P. 1.
  3. Sibonga J.D., Cavanagh P.R., Lang T.F. et al. Adaptation of the skeletal system during long-duration spaceflight // Clin. Rev. Bone Min. Metab. 2008. V. 5. P. 249.
  4. Vico L., Collet P., Guignandon A. et al. Effects of long-term microgravity exposure on cancellous and cortical weight-bearing bones of cosmonauts // Lancet. 2000. V. 355. № 9215. P. 1607.
  5. Adams G.R., Caiozzo V.J., Baldwin K.M. Skeletal muscle unweighting: spaceflight and ground-based models // J. Appl. Physiol. 2003. V. 95. № 6. P. 2185.
  6. Capelli C., Antonutto G., Kenfack M.A. et al. Factors determining the time course of VO2(max) decay during bedrest: implications for VO2(max) limitation // Eur. J. Appl. Physiol. 2006. V. 98. № 2. P. 152.
  7. Ferretti G., Berg H.E., Minetti A.E. et al. Maximal instantaneous muscular power after prolonged bed rest in humans // J. Appl. Physiol. 2001. V. 90. № 2. P. 431.
  8. Rittweger J., Felsenberg D., Maganaris C.N., Ferretti J.L. Vertical jump performance after 90 days bed rest with and without flywheel resistive exercise, including a 180 days follow-up // Eur. J. Appl. Physiol. 2007. V. 100. № 4. P. 427.
  9. Blaber A.P., Goswami N., Bondar R.L., Kassam M.S. Impairment of cerebral blood flow regulation in astronauts with orthostatic intolerance after flight // Stroke. 2011. V. 42. № 7. P. 1844.
  10. Mader T.H., Gibson C.R., Pass A.F. et al. Optic disc edema, globe flattening, choroidal folds, and hyperopic shifts observed in astronauts after long-duration space flight // Ophthalmology. 2011. V. 118. № 10. P. 2058.
  11. Kawakami Y., Akima H., Kubo K. et al. Changes in muscle size, architecture, and neural activation after 20 days of bed rest with and without resistance exercise // Eur. J. Appl. Physiol. 2001. V. 84. № 1–2. P. 7.
  12. Kubo K., Akima H., Kouzaki M. et al. Changes in the elastic properties of tendon structures following 20 days bed-rest in humans // Eur. J. Appl. Physiol. 2000. V. 83. № 6. P. 463.
  13. LeBlanc A., Gogia P., Schneider V. et al. Calf muscle area and strength changes after five weeks of horizontal bed rest // Am. J. Sport Med. 1988. V. 16. № 6. P. 624.
  14. Antonutto G., Capelli C., Girardis M. et al. Effects of microgravity on maximal power of lower limbs during very short efforts in humans // J. Appl. Physiol. 1999. V. 86. № 1. P. 85.
  15. Duchateau J. Bed rest induces neural and contractile adaptations in triceps surae // Med. Sci. Sports Exerc. 1995. V. 27. № 12. P. 1581.
  16. Koryak Yu. Electromyographic study of the contractile and electrical properties of the human triceps surae muscle in a simulated microgravity environment // J. Physiol. 1988. V. 510. Pt. 1. P. 287.
  17. Ruegg D.G., Kakebeeke T.H., Gabriel J.P., Bennefeld M. Conduction velocity of nerve and muscle fiber action potentials after a space mission or a bed rest // Clin. Neurophysiol. 2003. V. 114. № 1. P. 86.
  18. Fitts R.H., Romatowski J.G., Peters J.R. et al. The deleterious effects of bed rest on human skeletal muscle fibers are exacerbated by hypercortisolemia and ameliorated by dietary supplementation // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2007. V. 293. № 1. P. C313.
  19. Trappe S., Trappe T., Gallagher P. et al. Human single muscle flbre function with 84 day bed-rest and resistance exercise // J. Physiol. 2004. V. 557. Pt. 2. P. 501.
  20. De Boer M.D., Maganaris C.N., Seynnes O.R. et al. Time course of muscular, neural and tendinous adaptations to 23 day unilateral lower-limb suspension in young men // J. Physiol. 2007. V. 583. Pt. 3. P. 1079.
  21. Koryak Yu. Influence of simulated microgravity on mechanical properties in the human triceps surae muscle in vivo. I: Effect of 120 days of bed‑rest without physical training on human muscle musculo‑tendinous stiffness and contractile properties in young women // Eur. J. Appl. Physiol. 2014. V. 114. № 5. P. 1025.
  22. Koryak Yu. Influence of simulated microgravity on mechanical properties in the human triceps surae muscle in vivo. II: Effect of 120 days of bed-rest with physical training on human muscle contractile properties and musculo-tendinous stiffness in young women // Central Eur. J. Sport Sci. Med. 2015. V. 11. № 3. P. 125.
  23. Maganaris C.N., Reeves N.D., Rittweger J. et al. Adaptive response of human tendon to paralysis // Muscle Nerve. 2006. V. 33. № 1. P. 85.
  24. LeBlanc A., Lin C., Shackelford L. et al. Muscle volume, MRI relaxation times (T2), and body composition after spaceflight // J. Appl. Physiol. 2000. V. 89. № 6. P. 2158.
  25. Tesch P.A., Berg H.E., Bring D. et al. Effects of 17-day spaceflight on knee extensor muscle function and size // Eur. J. Appl. Physiol. 2005. V. 93. № 4. P. 463.
  26. Narici M., Cerretelli P. Changes in human muscle architecture in disuse-atrophy evaluated by ultrasound imaging // J. Gravit. Physiol. 1998. V. 5. № 1. P. P73.
  27. Sargeant A.J., Davies C.T., Edwards R.H. et al. Functional and structural changes after disuse of human muscle. // Clin. Sci. Mol. Med. 1977. V. 52. № 4. P. 337.
  28. Akima H., Kubo K., Imai M. et al. Inactivity and muscle: effect of resistance training during bed rest on muscle size in the lower limb // Acta Physiol. Scand. 2001. V. 172. № 4. P. 269.
  29. Alkner B.A., Tesch P.A. Efficacy of a gravity-independent resistance exercise device as a countermeasure to muscle atrophy during 29-day bed rest // Acta Physiol. Scand. 2004. V. 181. № 3. P. 345.
  30. Reeves N.J., Maganaris C.N., Ferretti G., Narici M.V. Influence of simulated microgravity on human skeletal muscle architecture and function // J. Gravit. Physiol. 2002. V. 9. № 1. P. P153.
  31. di Prampero P.E., Narici M.V. Muscles in microgravity: from fibres to human motion // J. Biomech. 2003. V. 36. № 3. P. 403.
  32. Blazevich A.J. Effects of physical training and detraining, immobilisation, growth and aging on human fascicle geometry // Sports Med. 2006. V. 36. № 12. P. 1003.
  33. Blazevich A.J., Cannavan D., Coleman D.R., Horne S. Influence of concentric and eccentric resistance training on architectural adaptation in human quadriceps muscles // J. Appl. Physiol. 2007. V. 103. № 5. P. 1565.
  34. Lynn R., Morgan D.L. Decline running produces more sarcomeres in rat vastus intermedius muscle fibers than does incline running // J. Appl. Physiol. 1994. V. 77. № 3. P. 1439.
  35. Noorkoiv M., Nosaka K., Blazevich A.J. Neuromuscular adaptations associated with knee joint angle-specific force change // Med. Sci. Sports Exerc. 2014. V. 46. № 8. P. 1525.
  36. Reeves N.D., Maganaris C.N., Longo S., Narici M.V. Differential adaptations to eccentric versus conventional resistance training in older humans // Exp. Physiol. 2009. V. 94. № 7. P. 825.
  37. Koryak Yu. Influence of long-duration space flight on human skeletal muscle architecture and function. – A pilot study // Amer. Sci. J. 2016. № 5. P. 7.
  38. Koryak Yu.A. Architectural and functional specifics of the human triceps surae muscle in vivo and its adaptation to microgravity // J. Appl. Physiol. 2019. V. 126. № 4. P. 880.
  39. Koryak Yu.A. Changes in human skeletal muscle architecture and function induced by extended spaceflight // J. Biomech. 2019. V. 97. P. 109408.
  40. Коряк Ю.А., Кузьмина М.М., Бережинский И.В., Коваленко В.М. Продолжительная электромиостимуляционная тренировка мышц у человека в условиях механической разгрузки двигательного аппарата и ее влияние на архитектуру и функцию трехглавой мышцы голени // Фундамент. исслед. 2010. № 3. С. 68.
  41. Gans C., Bock W.J. The functional significance of muscle architecture – a theoretical analysis // Ergeb. Anat. Entwicklungsgesch. 1965. V. 38. P. 115.
  42. Gans C., Gaunt A.S. Muscle architecture in relation to function // J. Biomech. 1991. V. 24. Suppl. 1. P. 53.
  43. Maganaris C.N., Baltzopoulos V., Sargeant A.J. Changes in Achilles tendon moment arm from rest to maximum isometric plantarflexion: observations in man // J. Physiol. 1998. V. 510. Pt. 3. P. 977.
  44. Friederich J.A., Brand R.A. Muscle fiber architecture in the human lower limb // J. Biomech. 1990. V. 23. № 1. P. 91.
  45. Шульженко Е.В., Виль-Вильямс И.Ф. Возможность проведения длительной водной иммерсии методом “сухого” погружения // Космич. биол. и авиакосмич. мед. 1976. Т. 10. № 2. С. 82.
  46. Brown L.E., Weir J.P. ASEP procedures recommendation I: Accurate assessment of muscular strength and power // J. Exerc. Physiol. Online. 2001. V. 4. № 3. P. 1.
  47. Kawakami Y., Ichinose Y., Fukunaga T. Architectural and functional features of human triceps surae muscles during contraction // J. Appl. Physiol. 1998. V. 85. № 2. P. 398.
  48. Fukunaga T., Roy R.R., Shellock F.G. et al. Physiological cross-sectional area of human leg muscles based on magnetic resonance imaging // J. Orthop. Res. 1992. V. 10. № 6. P. 926.
  49. Berg H.E., Tedner B., Tesch P.A. Changes in lower limb muscle cross-sectional area and tissue fluid volume after transition from standing to supine // Acta Physiol. Scand. 1993. V. 148. № 4. P. 379.
  50. Csapo R., Alegre L.M., Baron R. Time kinetics of acute changes in muscle architecture in response to resistance exercise // J. Sci. Med. Sport. 2011. V. 14. № 3. P. 270.
  51. Ando R., Taniguchi K., Saito A. et al. Validity of fascicle length estimation in the vastus lateralis and vastus intermedius using ultrasonography // J. Electromyog. Kinesiol. 2014. V. 24. № 2. P. 214.
  52. Finni T., Ikegaw Sh., Lepola V., Komi P. In vivo behavior of vastus lateralis muscle during dynamic performances // Eur. J. Sport Sci. 2001. V. 1. № 1. P. 1.
  53. Reeves N.D., Narici M.V., Maganaris C.N. Effect of resistance training on skeletal muscle-specific force in elderly humans // J. Appl. Physiol. 2004. V. 96. № 3. P. 885.
  54. Blazevich A.J., Gil N.D., Zhou Sh. Intra- and intermuscular variation in human quadriceps femoris architecture assessed in vivo // J. Anat. 2006. V. 209. № 3. P. 289.
  55. Narici M.V., Binzoni T., Hiltbrand E. et al. Human gastrocnemius muscle architecture from rest to the contracted state // J. Physiol. 1994. V. 475. 17 p.
  56. Narici M.V., Landoni L., Minetti A.E. Assessment of human knee extensor muscles stress from in vivo physiological cross-sectional area and strength measurement // Eur. J. Appl. Physiol. 1992. V. 65. № 5. P. 438.
  57. Reeves N.D., Narici.M.V. Behavior of human muscle fascicles during shortening and lengthening contractions in vivo // J. Appl. Physiol. 2003. V. 95. № 3. P. 1090.
  58. Murray M.P., Guten G.N., Baldwin J.M., Gardner G.M. A comparison of plantar flexion torque with and without the triceps surae // Acta Orthop. Scand. 1976. V. 47. № 1. P. 122.
  59. Григорьева Л.С., Козловская И.Б. Влияние семисуточной опорной разгрузки на скоростно-силовые свойства скелетных мышц // Косм. биол. и авиакосмич. мед. 1983. Т. 17. № 4. С. 21.
  60. Григорьева Л.С., Козловская И.Б. Влияние невесомости и гипокинезии на скоростно-силовые свойства мышц человека // Космич. биол. и авиакосмич. мед. 1987. Т. 21. № 1. С. 27.
  61. Григорьева Л.С., Козловская И.Б. Сравнительный анализ влияний невесомости и ее моделей на скоростно-силовые свойства и тонуса скелетных мышц человека // Космич. биол. и авиакосмич. мед. 1984. Т. 18. № 6. С. 22.
  62. Koryak Yu. Electrically evoked and voluntary properties of the human triceps surae muscle: effects of long-term spaceflights // Acta Physiol. Pharmacol. Bulg. 2001. V. 26. № 1–2. P. 21.
  63. Коряк Ю.А. Нервно-мышечная адаптация к кратковременным и продолжительным космическим полетам человека / Под ред. Григорьева А.И., Ушакова И.Б. Российский сегмент. М.: ИМБП РАН, 2011. Т. 2. С. 93.
  64. Мартьянов В.А. Степень использования скоростно-силовых возможностей нервно-мышечного аппарата при произвольных усилиях // Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова. 1974. Т. 60. № 9. С. 1416.
  65. Мартьянов В.А., Копылов Ю.А., Гнутов М.И. Степень использования возможностей мышечного аппарата при максимальном произвольном усилии // Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова. 1972. Т. 58. С. 1390.
  66. Мартьянов В.А., Коряк Ю.А. Повышение произвольной силы под действием дополнительно вызванных афферентных влияний // Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова. 1973. Т. 59. С. 1756.
  67. Ploutz-Snyder L.L., Tesch P.A., Crittenden D.J., Dudley G.A. Effect of unweighting on skeletal muscle use during exercise // J. Appl. Physiol. 1995. V. 79. № 1. P. 168.
  68. Tesch P.A., Trieschmann J.T., Ekberg A. Hypertrophy of chronically unloaded muscle subjected to resistance exercise // J. Appl. Physiol. 2004. V. 96. № 4. P. 1451.
  69. Koryak Yu. Contractile properties of the human triceps surae muscle during simulated weightlessness // Eur. J. Appl. Physiol. 1995. V. 70. № 4. P. 344.
  70. Trappe S., Trappe T., Gallagher P. et al. Human single muscle flbre function with 84 day bed-rest and resistance exercise // J. Physiol. 2004. V. 557. Pt. 2. P. 501.
  71. Widrick J.J., Knuth S.T., Norenberg K.M. et al. Effect of a 17 day spaceflight on contractile properties of human soleus muscle fibres // J. Physiol. 1999. V. 516. Pt. 3. P. 915.
  72. Narici M.V., Maganaris C.N. Adaptability of elderly human muscles and tendons to increased loading // J. Anat. 2006. V. 208. № 4. P. 433.
  73. Коряк Ю.А. Продолжительное пребывание в условиях невесомости и ее влияние на механические свойства трехглавой мышцы голени у человека: электромеханическая задержка и мышечно-сухожильная жесткость // Успехи современ. естествознания. 2012. № 8. С. 41.
  74. Alexander R.McN., Vernon A. The dimensions of knee and ankle muscles and the forces they exert // J. Human Mov. Studies. 1975. V. 1. P. 115.
  75. Rutherford O.M., Jones D.A. Measurement of fibre pennation using ultrasound in the human quadriceps in vivo // Eur. J. Appl. Physiol. 1992. V. 65. № 5. P. 433.
  76. Ikegawa S., Funato K., Tsunoda N. et al. Muscle force per cross-sectional area is inversely related with pennation angle in strength trained athletes // J. Strength Cond. Res. 2008. V. 22. № 1. P. 128.
  77. Ranatunga K.W. Temperature-dependence of shortening velocity and rate of isometric tension development in rat skeletal muscle // J. Physiol. 1982. V. 329. P. 465.
  78. Narici M.V., Maganaris C.N. Plasticity of the muscle-tendon complex with disuse and aging // Exerc. Sport Sci. Rev. 2007. V. 35. № 3. P. 126.
  79. Chino K., Oda T., Kurihara T. et al. In vivo fascicle behavior of synergistic muscles in concentric and eccentric plantar flexions in humans // J. Electromyogr. Kinesiol. 2008. V. 18. № 1. P. 79.
  80. Huijing P.A., Yaman A., Ozturk C., Yucesoy C.A. Effects of knee joint angle on global and local strains within human triceps surae muscle: MRI analysis indicating in vivo myofascial force transmission between synergistic muscles // Surg. Radiol. Anat. 2011. V. 33. № 10. P. 869.
  81. Johnson M.A., Polgar J., Weightman D., Appleton D. Data on the distribution of fibre types in thirty-six human muscles. An autopsy study // J. Neurol. Sci. 1973. V. 18. № 1. P. 111.
  82. Ward S.R., Eng C.M., Smallwood L.H., Lieber R.L. Are current measurements of lower extremity muscle architecture accurate? // Clin. Orthop. Relat. Res. 2009. V. 467. № 4. P. 1074.
  83. Bodine S.C., Roy R.R., Meadows D.A. et al. Architectural, histochemical, and contractile characteristics of a unique biarticular muscle: the cat semitendinosus // J. Neurophysiol. 1982. V. 48. № 1. P. 192.
  84. Gordon A.M., Huxley A.F., Julian F.J. The variation in isometric tension with sarcomere length in vertebrate muscle fibres // J. Physiol. 1966. V. 184. № 1. P. 170.
  85. Huijing P.A. Architecture of the human gastrocnemius muscle and some functional consequences // Acta Anat. 1985. V. 123. № 2. P. 101.
  86. Walker S.M., Schrodt G.R. I-segment lengths and thin filament periods in skeletal muscle fibers of the Rhesus monkey and the human // Anat. Rec. 1974. V. 178. № 1. P. 63.
  87. Wickiewicz T.L., Roy R.R., Powell P.L., Edgerton V.R. Muscle architecture of the human lower limb. // Clin. Orthop. Relat Res. 1983. V. 179. P. 275.
  88. Out L., Vrijkotte T.G., van Soest A.J., Bobbert M.F. Influence of the parameters of a human triceps surae muscle model on the isometric torque-angle relationship // J. Biomech. Eng. 1996. V. 118. № 1. P. 17.
  89. Woittiez R.D., Rozendal R.H., Huijing P.A. The functional significance of architecture of the human triceps surae muscle // Biomechanics. 1985. V. IX-A. P. 21.
  90. Bobbert M.F., Huijing P.A., van Ingen Schenau G.J. A model of the human triceps surae muscle-tendon complex applied to jumping // J. Biomech. 1986. V. 19. № 11. P. 887.
  91. Alexander R.McN. Animal Mechanics / Lecturer in Zoology at the University College of North Wates. Bangor, London: Sidgwick & Jackson, 1968. 339 p.
  92. Seynnes O.R., Maganaris C.N., de Boer M.D. et al. Early structural adaptations to unloading in the human calf muscles // Acta Physiol. 2008. V. 193. № 3. P. 265.
  93. Kawakami Y., Abe T., Fukunaga T. Training-induced changes in muscle architecture and specific tension // Eur. J. Appl. Physiol. 1995. V. 72. № 1–2. P. 37.
  94. Reeves N.D., Maganaris C.N., Ferretti G., Narici M.V. Influence of 90-day simulated microgravity on human tendon mechanical properties and the effect of resistive countermeasures // J. Appl. Physiol. 2005. V. 98. № 6. P. 2278.
  95. Farkas G.A., Roussos C. Diaphragm in emphysematous hamsters: sarcomer adaptability // J. Appl. Physiol. 1983. V. 54. № 6. P. 1635.
  96. Clément G., Gurfinkel V.S., Lestienne F. Mechanisms of posture maintenance in weightlessness / Vestibular and Visual Control on Posture and Locomotor Equilibrum // Ed. Black I. Basel, Switzerland: Karger, 1985. P. 158.
  97. Koryak Yu.A. Influence of long-term space flight on mechanical properties of the human triceps surae muscle: Electro mechanical delay and musculo-tendinous stiffness // J. Skeletal Muscle. 2017. V. 1. № 1. P. 10.
  98. Pandy M.G., Zajac F.E. Optimal muscular coordination strategies for jumping // J. Biomech. 1991. V. 24. № 1. P. 1.
  99. Lieber R.L., Fridén J. Functional and clinical significance of skeletal muscle architecture // Muscle Nerve. 2000. V. 23. № 11. P. 1647.
  100. Aagaard P., Andersen J.L., Dyhre-Poulsen P. et al. A mechanism for increased contractile strength of human pennate muscle in response to strength training: changes in muscle architecture // J. Physiol. 2001. V. 534. Pt. 2. P. 613.
  101. Kubo K., Akima H., Ushiyama J. et al. Effects of 20 days of bed rest on the viscoelastic properties of tendon structures in lower limb muscles // Br. J. Sports Med. 2004. V. 38. № 3. P. 324.
  102. Maganaris C.N., Reeves N.D., Rittweger J. et al. Adaptive response of human tendon to paralysis // Muscle Nerve. 2006. V. 33. № 1. P. 85.
  103. Ferrando A.A., Lane H.W., Stuart C.A. et al. Prolonged bed rest decreases skeletal muscle and whole body protein synthesis // Am. J. Physiol. 1996. V. 270. № 4. Pt. 1. P. 627.
  104. Stein T.P., Leskiw M.J., Schluter M.D. et al. Protein kinetics during and after long-duration spacefight on MIR // Am. J. Physiol. 1999. V. 276. № 6. Pt. 1. P. E1014.
  105. Ferrando A.A., Paddon-Jones D., Wolfe R.R. Alterations in protein metabolism during spaceflight and inactivity // Nutrition. 2002. V. 18. № 10. P. 837.
  106. Huijing P.A., Jaspers R.T. Adaptation of muscle size and myofascial force transmission: a review and some new experimental results // Scand. J. Med. Sci. Sports. 2005. V. 15. № 6. P. 349.
  107. De Boer M.D., Selby A., Atherton P. et al. The temporal responses of protein synthesis, gene expression and cell signalling in human quadriceps muscle and patellar tendon to disuse // J. Physiol. 2007. V. 585. Pt. 1. P. 241.

Дополнительные файлы


© Ю.А. Коряк, Т.Б. Кукоба, Д.Р. Бабич, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах