Архитектоника мезонефроса сенегальского многопёра (Polypterus senegalus (Cuvier 1829), Polypteriformes)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Методом послойных серийных гистологических срезов впервые проведена реконструкция мезонефроса P. senegalus. Показано, что распределение структур нефрона и кроветворной ткани органа сходно с распределением данных структур у лучепёрых рыб. Наибольшая доля кроветворной ткани локализована на краниально-вентральном полюсе органа. Наибольшее количество почечных телец, которые имеют наименьшую площадь поверхности и которые наиболее удалены один от другого, обнаружено в каудальной части мезонефроса. Такое расположение структурных единиц почки в совокупности с особенностями васкуляризаии органа (положение экстраорганных и множественное ветвление внутриорганных сосудов) позволяет создать достаточное артериальное давление для эффективного выделения первичной мочи, что приближает почку P. senegalus к мезонефросу земноводных. Данные признаки эволюционно закрепились в базальных группах лучепёрых рыб и сохранились в процессе эволюционного развития, проявляясь у эволюционно молодых видов данной группы.

Об авторах

Е. Г. Евдокимов

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
“Ярославский государственный университет имени П.Г. Демидова”

Автор, ответственный за переписку.
Email: skrad200052@yandex.ru
Россия, 150003, Ярославль

Е. А. Флёрова

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
“Ярославский государственный университет имени П.Г. Демидова”

Автор, ответственный за переписку.
Email: skrad200052@yandex.ru
Россия, 150003, Ярославль

Список литературы

  1. Грушко М.П., Федорова Н.Н., Ижерская В.А., 2021. Особенности формирования основных органов и систем красноперки (Scardinius erythrophthalmus) в раннем онтогенезе // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. № 1. Вып. 49. С. 30–35.
  2. Дзержинский Ф.Я., 2005. Сравнительная анатомия позвоночных животных. Изд. 2-е. М.: Аспект-Пресс. 281 с.
  3. Каплунова О.А., 2015. Юкстамедуллярный путь кровотока в почке (сравнительно-анатомический и возрастной аспекты) // Морфология. Т. 147. № 1. С. 53–58.
  4. Ложниченко О.В., Амплеева А.В., Хвостова С.М., 2010. Физиологические аспекты кроветворения в мезонефросе у осетровых рыб // Вестник АГТУ. Сер. Рыбное хозяйство. № 2. С. 106–110.
  5. Петренко В.М., 2009. Устройство периферического сосудистого русла как гидравлического редуктора // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. № 5. С. 86–87.
  6. Тимакова Т.К., Флёрова Е.А., Заботкина Е.А., 2014. Методы световой и электронной микроскопии в биологии и ветеринарии: учебно-методическое пособие. Ярославль: ФГБОУ ВПО “Ярославская ГСХА”. 72 с.
  7. AL-Muhanna M.W.H., 2018. Anatomical and histological study of the kidney of Caracus caracus (Linnaeus, 1758) // Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. T. 10. № 4. P. 794–797.
  8. Betancur R.R., Wiley E.O., Arratia G., Acero A., Bailly N., Miya M., Lecointre G., Orti G., 2017. Phylogenetic classification of bony fishes // BMC evolutionary biology. V. 17. P. 1–40.
  9. Bjørgen H., Koppang E.O., 2022. Anatomy of teleost fish immune structures and organs // Principles of Fish Immunology: From Cells and Molecules to Host Protection. P. 1–30.
  10. Charmi A., Parto P., Bahmani M., Kazemi R., 2010. Morphological and Histological Study of Kidney in Juvenile Great Sturgeon (Huso huso) and Persian Sturgeon (Acipenser persicus) // American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences. V. 7. № 5. P. 505–511.
  11. Chevalier R.L., 2017. Evolutionary nephrology // Kidney international reports. V. 2. № 3. P. 302–317.
  12. Dantzler W.H., 2016. Transport of Inorganic Ions by Renal Tubules // Comparative Physiology of the Vertebrate Kidney. New York: Springer. P. 81–157.
  13. Flerova E.A., Evdokimov E.G., 2022. New Data on Nephron Microanatomy and Ultrastructure of Senegal Bichir (Polypterus senegalus) // Biology. V. 11. P. 1374.
  14. Kovalchuk L.E., Likhacheva L.M., 1990. Ultrastruktura pochechnogo teltsa presnovodnykh ryb [Ultrastructure of the renal corpuscle of fresh water fishes] // Arkh. Anat. Gistol. Embriol. V. 99. № 8. P. 69–74.
  15. Lutek K., Foster K.L., Standen E.M., 2022. Behaviour and muscle activity across the aquatic–terrestrial transition in Polypterus senegalus // Journal of Experimental Biology. V. 225. № 23. P. jeb243902.
  16. Mohammed W.H., AL-Muhanna, 2018. Anatomical and histological study of the kidney of Caracus caracus (Linnaeus, 1758) // Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. V. 10. № 4. P. 794–797.
  17. Mokhtar D.M., 2021. The structural and ultrastructural organization of the cellular constituents of the trunk kidney of grass carp (Ctenopharyngodon idella) // Microscopy Research and Technique. V. 84. № 3. P. 537–547.
  18. Morovvati H., Mahabady M.K., Shahbazi1 S., 2012. Histomorphological and anatomical study of kidney in berzem (Barbus pectoralis) // International Journal of Fisheries and Aquaculture. V. 4. № 11. P. 221–227.
  19. Near T.J., Eytan R.I., Dornburg A., Kuhn K.L., Moore J.A., Davis M.P., Wainwright P.C., Friedman M., Smith W.L. et al., 2012. Resolution of ray-finned fish phylogeny and timing of diversification // Proceedings of the National Academy of Science. V. 109. № 34. P. 13 698–13 703.
  20. Ojeda J.L., Icardo J.M., Domezain A., 2003. Renal corpuscle of the sturgeon kidney: An ultrastructural, chemical dissection, and lectin-binding study // The Anatomical Record Part A: Discoveries in Molecular, Cellular, and Evolutionary Biology. V. 272. № 2. P. 563–573.
  21. Ojeda J.L., Icardo J.M., Wong W.P., Ip Y.K., 2006. Microanatomy and ultrastructure of the kidney of the African lungfish Protopterus dolloi // The Anatomical Record Part A: Discoveries in Molecular, Cellular, and Evolutionary Biology: An Official Publication of the American Association of Anatomists. V. 288. № 6. P. 609–625.
  22. Roduit N., 2005. Two complementary efficient methods to quantify porosity types in digital images of thin sections with the software JMicroVision // Abstract, Scenic Sedimentology, 24th IAS Meeting.
  23. Senarat S., Kettratad J., Poolprasert P., Yenchum W., 2013. Anterior Kidney of the Yellow mystus, Hemibagrus filamentus (Fang and Chaux, 1949) // Agricultural Technology and Biological Sciences: Walailak Journal of Science and Technology. V. 10. № 6. P. 597–600.
  24. Standen E.M., Standen E.M., Du T.Y., Laroche P., Larsson H.C., 2016. Locomotor flexibility of Polypterus senegalus across various aquatic and terrestrial substrates // Zoology. V. 119. № 5. P. 447–454.
  25. Zeinab M.E., Manal M.R., Souad A.K., Tasneem R.E., 2015. Comparative studies on the adaptive renal structures of some teleost fish species inhabiting different habitats // Journal of Bioscience and Applied Research. V. 1. № 6. P. 256–265.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

Скачать (524KB)
3.

4.


© Е.Г. Евдокимов, Е.А. Флёрова, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах