The Effects of Phenanthrene on Electrical Activity in Ventricular Cardiomyocytes of Atlantic Cod (Gadus morhua)

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

The production of oil on the Arctic shelf and its transport along the Northern Sea Route increase risks of pollution of the ecosystems in the Arctic seas with oil and oil products. Today, polyaromatic hydrocarbons are known as the most toxic oil components, and phenanthrene is predominant in terms of its concentration in oil and physiological effects. Phenanthrene affects the electrical activity of fish heart, but its effects are species-specific. At the same time, the effects of phenanthrene on cardiac function in Arctic fishes, including economically important commercial species, are studied not enough. This study examines the effects of phenanthrene on electrical activity and ionic currents in ventricular myocardium of Atlantic cod (Gadus morhua). The major ionic currents in cod myocardium were IKr, IK1, INa and ICa. Phenanthrene (1 μM) did not affect the duration of action potentials (APs) recorded in isolated cod ventricular cardiomyocytes using patch clamp method. Meanwhile, phenanthrene suppressed rapid delayed rectifier current IKr by 61.33 ± 3.94%, decreasing the repolarization reserve of the myocardium. Phenanthrene did not affect nor the level of resting membrane potential, not background inward rectifier current IK1. Also, application of phenanthrene decreased AP upstroke velocity in cod myocytes, which was due to the suppression of fast sodium current INa. Finally, phenanthrene slightly reduced the amplitude of calcium current ICa and accelerated its inactivation, which overall led to the decrease in ICa charge transfer. Thus, the effects of phenanthrene on cod myocardium at cellular level can be described as potentially proarrhythmic, which makes the populations of cod in Arctic seas vulnerable to pollution of the aquatic environment by oil components after oil spills due to technological disasters.

Full Text

ВВЕДЕНИЕ

В последние годы наблюдается интенсификация хозяйственной деятельности в Арктике, и в значительной степени она связана с такими стратегически важными отраслями как рыбная промышленность, а также добыча нефти на континентальном шельфе и ее транспортировка — в том числе по Северному морскому пути [1], что неизбежно влияет на окружающую среду и экосистемы Арктики. Наибольшую опасность для живых организмов при этом представляют утечки нефти и ее компонентов. Токсичность компонентов нефти для живых организмов привлекла внимание экологов и физиологов после нескольких крупных катастроф [2, 3], в том числе и на севере России [4–6]. Таким образом, для живых организмов Арктики создается вполне реальная угроза, и, ввиду интенсификации перевозок нефтепродуктов по Северному морскому пути [7], особой опасности подвергаются водные организмы арктических морей — в частности, рыбы.

Отправной точкой для изучения токсических эффектов нефти и ее компонентов послужили работы, показавшие, что воздействие нефти приводит к увеличению смертности молоди рыб, а также к учащению появления дефектов развития — отек желточного мешка, микрофтальмия, искривление позвоночника, мальформации челюсти и пр. [8]. Дальнейшие исследования продемонстрировали, что токсическое действие нефти связано с ограниченным набором низкомолекулярных, относительно растворимых в воде соединений — а именно, с полиароматическими углеводородами (ПАУ). Среди этого класса веществ наиболее представлены в нефти ди- и трициклические соединения [9], а среди них наиболее высокой концентрацией и токсичностью обладает фенантрен — углеводород, содержащий в своей структуре 3 конденсированных бензольных кольца. Фенантрен способен вызывать не менее сильные тератогенные и токсические эффекты в организме рыб, чем чистая нефть — так, было показано, что токсичность различных смесей ПАУ (включая нефть) зависит от содержания в них трициклических соединений, в частности фенантрена [10, 11].

Важной вехой в изучении токсических эффектов ПАУ и нефти стало открытие кардиотоксичности ПАУ. У эмбрионов рыб воздействие трициклических ПАУ и фенантрена приводит к замедлению частоты сердечных сокращений, увеличению вариабельности диастолических интервалов, нарушению атриовентрикулярного проведения и аритмиям, в конечном итоге снижая сердечный выброс, что указывает на влияние на ионные каналы и транспортеры миокарда. При этом вызванные ПАУ нарушения в работе сердца предшествуют другим дисфункциям и мальформациям, по крайней мере, в организме рыб [12]. В более детальных исследованиях было показано, что фенантрен снижает силу сокращения желудочкового миокарда кумжи [13], а на клеточном уровне — снижает амплитуду кальциевых транзиентов и замедляет их спад [14], что в конечном итоге снижает сократимость сердца и, в перспективе, сердечный выброс. Сходное влияние на сократимость миокарда оказывает и сырая нефть [15]. Также для фенантрена было показано влияние на быстрый натриевый ток INa, определяющий возбудимость миокарда и скорость проведения возбуждения по нему: в кардиомиоцитах различных видах рыб, как морских, так и пресноводных, фенантрен подавлял INa [16–18]. Наконец, несколько исследовательских групп показали способность фенантрена и подобных ему ПАУ подавлять быстрый калиевый ток задержанного выпрямления IKr [13–18], являющийся основным реполяризующим током в миокарде большинства рыб — и в человеческом миокарде [19]. Однако, сравнительный анализ показывает, что для ингибиторных эффектов фенантрена на те или иные ионные токи характерна определенная видоспецифичность. Так, например, в миокарде радужной форели (Oncorhynchus mykiss) с концентрация полумаксимального ингибирования (IC50) тока IKr фенантреном составляет порядка 10 мкМ [17], в миокарде даниорерио (Danio rerio) и наваги (Eleginus nawaga) IC50 фенантрена для подавления IKr составила 3.3 и около 2 мкМ, соответственно [18, 20], а в желудочковом миокарде европейского керчака (Myoxocephalus scorpio) IC50 составила всего 144 нМ [16]; аналогичные различия в чувствительности к ПАУ показаны и для других ионных токов в миокарде рыб. Соответственно, влияние фенантрена на конфигурацию электрической активности миокарда рыб тоже видоспецифично, в зависимости от чувствительности различных ионных токов к фенантрену и их относительного вклада в формирование потенциалов действия (ПД): так, в кардиомиоцитах данио-рерио и радужной форели фенантрен вызывает укорочение ПД [17, 20], тогда как в кардиомиоцитах наваги и европейского керчака — напротив, в присутствии фенантрена длительность ПД увеличивается [16, 18]. Таким образом, предугадать кардиотоксичность фенантрена (и, скорее всего, других ПАУ, содержащихся в нефти) для того или иного вида рыб практически невозможно.

Среди арктических видов рыб эффекты ПАУ были исследованы только в миокарде наваги (Eleginus nawaga) и европейского керчака (Myoxocephalus scorpio), что явно недостаточно для понимания возможных негативных эффектов от разливов нефти или нефтепродуктов в арктических морях. Еще одним экономически важным для рыбной промышленности арктическим видом рыб является треска (Gadus morhua, Linnaeus, 1758). Это всеядные пелагические рыбы средних размеров из семейства тресковых (Gadidae), являющиеся одним из самых давно известных промысловых видов рыб и обитающие в северной части Атлантического океана и морях Арктики, от прибрежных вод до континентального шельфа [21, 22]. Учитывая важность трески в рыбном промысле многих стран, представляется крайне важным иметь понимание о возможных рисках для ее популяций в связи с возможным загрязнением океанических вод, в особенности в области арктического шельфа, компонентами нефти. Данное исследование ставило своей целью изучить влияние одного из наиболее токсичных и хорошо изученных ПАУ в составе нефти, фенантрена, на электрическую активность желудочкового миокарда трески (Gadus morhua) на клеточном уровне.

МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Животные

Все эксперименты в рамках данного исследования были проведены на Беломорской биологической станции МГУ им. Н.А. Перцова (Россия). Взрослые половозрелые особи трески (Gadus morhua) обоих полов массой 100–200 г (n = 7) были пойманы в Кандалакшском заливе в окрестностях ББС МГУ (66°19'50" с.ш., 33°40'06" в.д.) в июне-августе, когда температура воды составляла 7–12°С. Перед экспериментами животных в течение 7–10 дней содержали в проточном морском аквариуме (объем 200 л) с тем же температурным режимом, что и в природных условиях, при световом режиме 12:12. Животных кормили пескожилами (Arenicola marina) каждые 3 дня.

Получение изолированных кардиомиоцитов трески

Для получения изолированных желудочковых кардиомиоцитов трески был использован разработанный и успешно примененный ранее в работах с использованием различных видов рыб Белого моря протокол энзиматической перфузии сердца [18, 23]. Животных оглушали ударом по голове, декапитировали, после чего сердце быстро вырезали и канюлировали через аорту для ретроградной перфузии по Лангендорфу. Сердце перфузировали не содержащим Ca²⁺ раствором для выделения [(в мМ): NaCl 100, KCl 10, KH2PO4·2H2O 1.2, MgSO4·7H2O 4, таурин 50, глюкоза 10, HEPES 10, pH 6.9] в течение 5–7 мин. После этого сердце перфузировали раствором того же состава, содержащим протеолитические ферменты: коллагеназу типа IA (0.37 мг/мл), трипсин (0.15 мг/мл), а также бычий сывороточный альбумин (0.37 мг/мл). После 10–12 мин ферментативной обработки желудочек сердца отделяли от аортального конуса и предсердия, помещали в раствор для выделения, измельчали и пипетировали для высвобождения изолированных кардиомиоцитов в раствор. Изолированные кардиомиоциты хранили при температуре +4°С и использовали в течение 8 ч после выделения.

Регистрация потенциалов действия и ионных токов методом пэтч-кламп

Изолированные кардиомиоциты (300 мкл суспензии изолированных клеток) помещали в экспериментальную камеру объемом 300 мкл, монтированную на инвертированном микроскопе Eclipse Ti-S (Nikon, Япония). Кардиомиоциты суперфузировали внеклеточным раствором, состав которого различался в зависимости от типа эксперимента, со скоростью около 1.5 мл/мин. Температуру раствора в камере поддерживали на уровне 7°С с помощью терморегулятора CL-100 с элементом Пельтье (Warner Instruments, США). Фенантрен в ходе экспериментов добавляли во внеклеточный раствор. Маточный раствор фенантрена (10 мМ) готовили на основе диметилсульфоксида (ДМСО) и использовали в течение 48 ч после приготовления. Концентрация ДМСО во внеклеточном растворе в каждом из экспериментов не превышала 1:1000. Пипетки вытягивали из боросиликатных стеклянных капилляров без филамента (World Precision Instruments, США) с помощью пуллера PC-100 (Narishige, Япония) и заполняли пипеточным раствором, состав которого также различался в зависимости от типа эксперимента. Сопротивление пипеток, заполненных раствором, составляло 2–3 МΩ. Ионные токи и потенциалы действия (ПД) регистрировали с использованием метода whole-cell пэтч-кламп с помощью усилителя Axopatch 200A (Molecular Devices, США). Сопротивление доступа и емкость клетки компенсировали перед непосредственной регистрацией ионных токов или потенциалов действия. Протоколы изменения потенциала указаны на соответствующих рисунках. Регистрацию тока начинали спустя 1 мин после установления whole-cell контакта с клеткой. Ток регистрировали в контрольных условиях в течение не менее чем 3 мин, после достижения стационарной амплитуды тока. При проведении эксперимента ток регистрировали в течение всего времени подачи фенантрена в экспериментальную камеру, эффект оценивали после выхода амплитуды тока на стационарный уровень.

Экспериментальные растворы

Для регистрации калиевых токов и ПД в изолированных кардиомиоцитах трески использовали внеклеточный раствор, содержащий KCl [(в мМ): NaCl 150, KCl 3.5, MgCl2 1, CaCl2 1.8, глюкоза 10, HEPES 10, pH 7.6]. Раствор для регистрации калиевых токов дополнительно содержал нифедипин (10 мкМ) для подавления кальциевого тока и тетродотоксин (300 нМ) для подавления быстрого натриевого тока. При регистрации быстрого калиевого тока задержанного выпрямления IKr в конце каждого эксперимента также к внеклеточному раствору добавляли 1 мкМ блокатора IKr Е-4031 для оценки полной амплитуды тока. Пипеточный раствор, используемый для регистрации калиевых токов, также содержал KCl [(в мМ): KCl 140, MgCl2 1, ЭГТА 5, Mg-АТФ 4, Na2-ГТФ 0.03, HEPES 10, pH 7.2]. Для регистрации ПД использовали пипеточный раствор сходного состава, но со сниженной концентрацией ЭГТА (0.025 мМ) для более точной имитации буферной способности цитоплазмы [24].

Для регистрации кальциевого тока ICa использовали внеклеточный раствор с эквимолярной заменой KCl на CsCl для подавления калиевых токов [(в мМ): NaCl 150, CsCl 3.5, MgCl2 1, CaCl2 1.8, глюкоза 10, HEPES 10, pH 7.6]. Для подавления быстрого натриевого тока раствор дополнительно содержал 300 нМ тетродотоксина. В пипеточном растворе для регистрации кальциевого тока KCl также был заменен на CsCl, а также был добавлен тетраэтиламмоний для подавления калиевых токов [(в мМ): CsCl 130, MgCl2 1, ЭГТА 5, Mg-АТФ 4, Na2-ГТФ 0.03, HEPES 10, тетраэтиламмоний 15, pH 7.2].

Для регистрации быстрого натриевого тока INa использовали внеклеточный раствор на основе CsCl и c частичной заменой NaCl на Трис-Cl [(в мМ): NaCl 20, Трис-Cl 120, CsCl 3.5, MgCl2 1, CaCl2 1.8, глюкоза 10, HEPES 10, pH 7.6]. Раствор дополнительно содержал 10 мкМ нифедипина для подавления кальциевого тока. Пипеточный раствор на основе CsCl также содержал NaCl [(в мМ): CsCl 130, NaCl 5, MgCl2 1, ЭГТА 5, Mg-АТФ 4, Na2-ГТФ 0.03, HEPES 10, pH 7.2]; снижение концентрации NaCl во внеклеточном растворе и добавление его в пипеточный раствор позволило снизить движущую силу для входа ионов Na+. В совокупности с 70% компенсацией последовательного сопротивления это позволило обеспечить стабильную и адекватную регистрацию высокоамплитудного INa.

Реактивы

В работе были использованы следующие реактивы и блокаторы: блокатора INa тетродотоксин, блокатор ICa нифедипин, коллагеназа типа IA, трипсин, фенантрен (Sigma, США), блокатор IKr Е-4031 (Tocris Bioscience, Великобритания).

Анализ данных

Анализ полученных данных проводили с использованием программного обеспечения Clampfit 10.3 (Molecular Devices, США) с последующей статистической обработкой в среде GraphPad Prism 8.0 (GraphPad Software, США). При анализе ПД учитывали такие параметры как максимальная скорость нарастания переднего фронта ПД, амплитуду ПД и длительность ПД на уровнях реполяризации 50% и 90%. Амплитуду токов нормировали на электрическую емкость клеток и представляли в виде пА/пФ. Заряд, переносимый кальциевым током ICa, оценивали по площади под кривой интегрального тока, нормированного на емкость клетки, и предстподдавляли в виде пКл/пФ. Временную константу инактивации τ для тока ICa оценивали с помощью стандартной трансформации Чебышева в программном обеспечении Clampfit 10.3, используя экспоненциальную функцию. Данные представлены как среднее ± ст. ошибка среднего (M ± S.E.M.). Нормальность распределения выборок оценивали с помощью критерия Шапиро-Уилка. Поскольку данные были распределены нормально, статистическую значимость эффектов фенантрена оценивали с помощью t-теста Стьюдента для связанных выборок. Различия считали статистически значимыми при р < 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Действие фенантрена на конфигурацию ПД в миокарде трески

В первую очередь мы оценили интегральный эффект фенантрена на конфигурацию электрической активности — а именно, на форму потенциалов действия (ПД) в миокарде трески. ПД регистрировали в режиме поддержания тока (current-clamp) в изолированных желудочковых кардиомиоцитах. Репрезентативные примеры ПД, зарегистрированных в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена во внеклеточном растворе, представлены на рис. 1а.

 

Рис. 1. Влияние фенантрена на конфигурацию ПД в желудочковых кардиомиоцитах трески. (a) – репрезентативные записи ПД в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена; (b) – репрезентативная запись, отражающая замедление фазы быстрой деполяризации ПД в присутствии 1 мкМ фенантрена, черная линия снизу отображает электрический стимул, стрелка отмечает область интереса; (с) – влияние 1 мкМ фенантрена на максимальную скорость нарастания переднего фронта ПД (n = 6; p < 0.01, парный t-тест Стьюдента); (d) – влияние 1 мкМ фенантрена на мембранный потенциал покоя (n = 6; p = 0.11, парный t-тест Стьюдента); (e) – влияние 1 мкМ фенантрена на длительность ПД на уровне 90% реполяризации (n = 6; p = 0.20, парный t-тест Стьюдента); (f) – влияние 1 мкМ фенантрена на длительность ПД на уровне 5% реполяризации (n = 6; p = 0.07, парный t-тест Стьюдента).

 

Несмотря на отсутствие видимых глазу изменений, в присутствии 1 мкМ фенантрена фаза быстрой деполяризации ПД удлинялась, что отражено в снижении максимальной скорости нарастания переднего фронта ПД (рис. 1b, c). Прочие оцениваемые параметры, а именно мембранный потенциал покоя и длительность ПД на уровне 90% и 50% реполяризации в присутствии 1 мкМ фенантрена не изменялись (рис. 1d-f, соответственно).

Действие фенантрена на ток IKr в желудочковых миоцитах трески

Поскольку ранее проведенные исследования показали чувствительность быстрого калиевого тока задержанного выпрямления IKr, являющегося основным реполяризующим током в миокарде рыб, к ПАУ и, в частности, к фенантрену [13, 14, 16, 17], то, несмотря на отсутствие заметных изменений в длительности ПД в присутствии 1 мкМ фенантрена, мы оценили влияние фенантрена на IKr в миокарде трески.

 

Рис. 2. Влияние фенантрена на быстрый калиевый ток задержанного выпрямления IKr в желудочковых кардиомиоцитах трески. (a) – репрезентативные записи IKr; (b) – вольт-амперная характеристика IKr в желудочковых кардиомиоцитах трески в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена (n = 6 для обеих групп; **p < 0.01, * p < 0.05, парный t-тест Стьюдента); (c) – репрезентативные записи IKr (при 40 мВ) в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена.

 

Деполяризация от –80 мВ до –20 мВ и более положительных потенциалов приводила к активации выходящего тока, чувствительного к селективному блокатору Е-4031 (1 мкМ) и определенного как быстрый ток задержанного выпрямления IKr (рис. 2а). Поскольку для каналов, опосредующих ток IKr, характерна быстрая инактивация С-типа [25], ток регистрировали с помощью двухступенчатого протокола (показан на рис. 2) и измеряли на второй ступени пиковую амплитуду тока, подавляемого Е-4031 (так называемый хвостовой ток или tail current). Вольт-амперная характеристика IKr в желудочковых миоцитах трески отражена на рис. 2b.

Фенантрен в концентрации 1 мкМ вызывал снижение амплитуды IKr, особенно заметное на второй ступени протокола (см. рис. 2b, c). Снижение амплитуды IKr под действием фенантрена было статистически значимым и составило более 50% от контрольных значений, эффект наблюдался начиная с 3-й минуты подачи раствора, содержащего фенантрен, в экспериментальную камеру.

Фенантрен не влияет на ток IK1 в желудочковом миокарде трески

Фоновый ток входящего выпрямления IK1 в желудочковых миоцитах трески регистрировали с использованием пилообразного протокола (показан на рис. 3). Вольт-амперная характеристика IK1 в желудочковом миокарде трески отражена на рис. 3a.

 

Рис. 3. Влияние фенантрена на фоновый калиевый ток входящего выпрямления IK1 в желудочковых кардиомиоцитах трески. (a) – вольт-амперная характеристика тока IK1 в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена (n = 6 для обеих групп, p > 0.05 для всех потенциалов, парный t-тест Стьюдента); (b) – репрезентативные записи IK1 в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена.

 

В отличие от тока IKr, ток входящего выпрямления IK1 оказался нечувствителен к действию фенантрена: не было замечено каких-либо изменений в амплитуде IK1. Репрезентативные примеры записей IK1 в контрольных условиях и под действием 1 мкМ фенантрена представлены на рис. 3b.

Действие фенантрена на быстрый натриевый ток INa в желудочковых миоцитах трески

Быстрый натриевый ток INa, ответственный за фазу быстрой реполяризации ПД в миокарде позвоночных, регистрировали с использованием протокола ступенчатой деполяризации от поддерживаемого потенциала –120 мВ (показан на рис. 4). Репрезентативный пример записи тока INa в рабочем миокарде трески представлен на рис. 4a. INa в миоцитах трески активировался при мембранных потенциалах положительнее –70 мВ; максимум амплитуды входящего тока наблюдался при -30 мВ. Вольт-амперная характеристика INa в кардиомиоцитах трески отражена на рис. 4b.

 

Рис. 4. Влияние фенантрена на быстрый натриевый ток INa в желудочковых кардиомиоцитах трески. (a) – репрезентативные записи INa; (b) – вольт-амперная характеристика INa в желудочковых кардиомиоцитах трески в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена (n = 7 для обеих групп, p > 0.05 для всех потенциалов, парный t-тест Стьюдента); (c) – репрезентативные записи INa (при –30 мВ) в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена.

 

Фенантрен в концентрации 1 мкМ относительно слабо снижал амплитуду INa и не оказывал влияния на кинетику и инактивации тока (см. рис. 4b, 4c). Снижение амплитуды INa под действием фенантрена составило 11.47 ± 3.19% относительно контрольных значений. Эффект наблюдался начиная с 6-й минуты подачи раствора, содержащего фенантрен, в экспериментальную камеру.

Действие фенантрена на вход кальция в желудочковых миоцитах трески

Кальциевый ток L-типа в изолированных кардиомиоцитах трески регистрировали при ступенчатой деполяризации от поддерживаемого потенциала –80 мВ (см. рис. 5) в присутствии 300 нМ тетродотоксина во внеклеточном растворе для подавления INa. Репрезентативный пример оригинальных записей ICa представлен на рис. 5a. Максимум амплитуды входящего ICa наблюдался при потенциале –10 мВ; вольт-амперная характеристика ICa в желудочковом миокарде трески отражена на рис. 5b.

 

Рис. 5. Влияние фенантрена на кальциевый ток ICa в желудочковых кардиомиоцитах трески. (a) – репрезентативные записи ICa; (b) – вольт-амперная характеристика ICa в желудочковых кардиомиоцитах трески в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена (n = 5 для обеих групп, p > 0.05 для всех потенциалов, парный t-тест Стьюдента); (c) – репрезентативные записи ICa (при –10 мВ) в контрольных условиях и в присутствии 1 мкМ фенантрена; (d) – влияние 1 мкМ фенантрена на временную константу инактивации ICa при –10 мВ (n = 5; p = 0.22, парный t-тест Стьюдента); (e) – влияние 1 мкМ фенантрена на суммарный заряд, переносимый ICa при –10 мВ (n = 5; p < 0.01, парный t-тест Стьюдента).

 

Фенантрен (1 мкМ) во внеклеточном растворе крайне слабо влиял на амплитуду ICa: в присутствии фенантрена пиковая амплитуда ICa снижалась на 15.54 ± 7.64%; различия были статистически незначимыми. Кроме того, под действием фенантрена кинетика инактивации ICa имела тенденцию к ускорению, однако снижение временной константы инактивации τ под действием фенантрена также оказалось статистически незначимым (см. рис. 5d). Однако, несмотря на то что изменения этих параметров по отдельности были статистически незначимыми, анализ количества заряда, переносимого ICa, показал, что воздействие фенантрена приводит к статистически значимому снижению суммарного входа кальция — на 25.17 ± 5.73% (рис. 5e). Описываемый эффект наблюдался начиная с 5-й минуты подачи раствора, содержащего фенантрен, в экспериментальную камеру.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Данная работа впервые рассматривает электрическую активность сердца трески (Gadus morhua), а также влияние на нее фенантрена — одного из наиболее известных токсичных компонентов нефти. Несмотря на многолетний опыт исследований нашей научной группы на арктических видах рыб, в том числе на рыбах семейства тресковых (Gadidae) [18, 26], электрическая активность сердца трески (Gadus morhua) практически не изучена. При этом треска является широко распространенным видом рыб и играет важную экономическую, экологическую и культурную роль для многих стран — и отчасти именно благодаря этому сталкивается со значительными изменениями среды обитания, в том числе антропогенными [27].

Электрическая активность желудочкового миокарда трески (форма ПД, уровень мембранного потенциала покоя) имела типичный для тресковых рыб вид; длительность ПД при 9°С, была близка к таковой у наваги (Eleginus nawaga) и налима (Lota lota), но несколько выше, чем у полярной тресочки (Boreogadus saida), более стенотермного вида рыб [26]. Электрофизиологический фенотип, а именно, набор ионных токов, формирующих электрическую активность миокарда, у трески был типичен для костистых рыб и включал четыре основных тока: IKr, IK1, INa и ICa [19]. Литературные данные позволяют провести сравнение с другими тресковыми, но нужно отметить, что температурный режим в разных исследованиях не всегда совпадает, тогда как большинство ионных токов зависят от температуры. Основным реполяризующим током в рабочем миокарде трески был быстрый ток задержанного выпрямления IKr; его вольт-амперная зависимость и амплитуда были близки к таковым в желудочковых миоцитах других тресковых рыб – наваги и налима [18, 28]. Фоновый ток входящего выпрямления IK1 в желудочковых миоцитах трески имел относительно небольшую амплитуду — приблизительно такую же, как в миокарде налима и наваги [29, 30] и заметно ниже, чем у радужной форели (Oncorhynchus mykiss) или карася (Carassius carassius) [31]. Вероятно, низкая амплитуда IK1 является характерной чертой тресковых рыб. Быстрый натриевый ток INa в миокарде трески не отличался от такового в миокарде наваги и налима [18, 32]. Кальциевый ток L-типа в миокарде трески имел крайне низкую амплитуду, не превышающую –1 пА/пФ; максимум амплитуды ICa соответствовал потенциалу –10 мВ. Имеющиеся литературные данные не позволяют оценить форму вольт-амперных характеристики ICa в миоцитах наваги — однако, амплитуда ICa в миокарде этих двух видов рыб, по всей видимости, сопоставима [33]. В желудочковом миокарде налима ICa также имеет относительно небольшую амплитуду — при 11°С максимальная амплитуда тока была немногим выше –1 пА/пФ; можно предположить, что при температуре 9ºС она не будет отличаться от амплитуды ICa в миокарде наваги и трески [30]. Интересно, однако, что максимум амплитуды ICa в миоцитах трески и наваги смещен в сторону более отрицательных потенциалов по сравнению с налимом (–10 мВ и 10 мВ, соответственно) — вероятно, сарколеммальный кальциевый ток в миокарде тресковых рыб может опосредоваться разными изоформами кальциевых каналов [34]. Таким образом, полученные данные в совокупности с имеющейся в литературе информацией указывают на то, что электрофизиологические аспекты функционирования сердца рыб — по крайней мере, тресковых — определяются как филогенетическим родством, так и, по всей видимости, особенностями занимаемой конкретным видом экологической ниши. Навага и треска являются солоноводными эвритермами, в то время как налим обитает в пресных водоемах при температурах, не превышающих 13°С. Можно предположить, что вольт-амперная зависимость кальциевого тока с максимумом при более положительных потенциалах может ограничивать вход кальция и препятствовать кальциевой перегрузке при генерации ПД в миокарде налима при низких температурах.

Также в рамках данной работы мы впервые оценили влияние фенантрена на электрическую активность желудочкового миокарда трески. Фенантрен, как показали многочисленные работы [12–14, 20], оказывает проаритмическое влияние на миокард рыб, нарушая тем самым насосную функцию сердца. Однако, конкретные изменения паттерна электрической активности сердца рыб в присутствии фенантрена видоспецифичны. Ранее электрофизиологические эффекты фенантрена были достаточно подробно исследованы в рабочем миокарде наваги [18], и сравнение этих данных с результатами настоящего исследования позволит ответить на вопрос о том, насколько видоспецифичны эффекты ПАУ (на примере фенантрена) в рамках одного семейства рыб.

Как у наваги, так и у трески фенантрен в концентрации 1 мкМ довольно слабо влиял на конфигурацию ПД: в желудочковых миоцитах наваги фенантрен вовсе не вызывал статистически значимых изменений какого-либо из анализируемых параметров. У трески, однако, под действием фенантрена происходило статистически значимое замедление нарастания переднего фронта ПД. Форма ПД и ее изменения под действием ПАУ зависят от воздействия ПАУ непосредственно на каналы, опосредующие деполяризующие (INa и ICa) и реполяризующие (IKr и IK1) ионные токи. И, поскольку выше было показано, что электрофизиологический фенотип желудочкового миокарда трески и наваги весьма близки, наблюдаемые различия во влиянии фенантрена на форму ПД могут быть связаны с возможным различием в чувствительности определенных ионных каналов к ПАУ. В самом деле, в миокарде наваги 1 мкМ фенантрена не вызывал статистически значимых изменений в амплитуде INa [18] — тогда как в миокарде трески под действием 1 мкМ фенантрена происходило статистически значимое снижение амплитуды INa более чем на 10%.

Одним из основных эффектов фенантрена (и, видимо, других ПАУ) в миокарде рыб является подавление быстрого тока задержанного выпрямления IKr [14, 16, 20]. В миокарде трески IKr также оказался наиболее чувствителен к ПАУ: фенантрен в концентрации 1 мкМ подавлял ток на 61.33 ± 3.94%. В проведенном ранее исследовании IKr в миокарде наваги был значительно менее чувствителен к фенантрену, и 1 мкМ подавлял ток менее, чем на 40% [18]. С одной стороны, можно предположить наличие определенных межвидовых различий в строении каналов ERG, опосредующих ток IKr, у трески и наваги, влекущее за собой различия в связывании молекул фенантрена порообразующей субъединицей канала. С другой стороны, при проведении подобных экологических исследований, включающих поимку животных в естественной среде обитания, нужно принимать во внимание множество факторов, и, поскольку данные два исследования были разделены во времени значительным сроком, нельзя полностью исключать возможность ремоделирования и изменения чувствительности животных к фенантрену по не зависящим от исследователей причинам — поскольку проведенные в течение последнего года исследования демонстрируют достаточно высокую чувствительность IKr в миокарде различных видов арктических рыб к различным ПАУ [16, 33].

Нужно отметить, что, несмотря на достаточно высокую чувствительность IKr в миокарде трески к фенантрену, его подавление 1 мкМ фенантрена не приводило к значимым изменениям в длительности ПД. Для сравнения, аналогичная степень подавления IKr в миокарде европейского керчака (Myoxocephalus scorpio) в присутствии 1 мкМ фенантрена приводила к почти двукратному увеличению длительности ПД [16]. С одной стороны, это можно объяснить тем, что в миокарде трески фенантрен также в некоторой степени подавляет кальциевый ток L-типа, что противоположным образом влияет на длительность ПД. С другой стороны, абсолютная амплитуда IKr в миокарде тресковых рыб заметно выше, чем у керчака, поэтому можно предположить, что заметная доля IKr в миокарде тресковых рыб, ведущих более подвижный образ жизни и, предположительно, сталкивающихся с потребностью развивать более высокую частоту сердечных сокращений, составляет так называемый реполяризационный резерв [35]. Соответственно, можно предполагать, что при более высокой частоте сердечного ритма, сопряженной со значительным укорочением ПД — например, при повышении температуры окружающей среды — проаритмогенный эффект фенантрена будет выражен более явно.

Таким образом, данное исследование демонстрирует, что несмотря на некоторую общность эффектов фенантрена в рабочем миокарде тресковых рыб (а именно, трески и наваги), эффекты фенантрена в миокарде трески были выражены более явно, что может свидетельствовать о более высокой чувствительности популяции трески в арктических морях к загрязнению водной среды компонентами нефти и ПАУ.

ВКЛАДЫ АВТОРОВ

Идея работы и планирование экспериментов — Д.В.А., сбор данных — А.В.Ш., Т.С.Ф., Д.В.А., обработка данных — А.В.Ш., Т.С.Ф., Д.В.А., написание и редактирование рукописи статьи — Т.С.Ф., Д.В.А.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

Все применимые международные, национальные и институциональные принципы ухода и использования животных были соблюдены.

Все процедуры, выполненные в исследованиях с участием животных, соответствовали этическим стандартам, утвержденным правовыми актами РФ, принципам Базельской декларации и рекомендациям Комиссии МГУ по биоэтике. Протоколы содержания животных и экспериментов с использованием животных одобрены Комиссией МГУ по биоэтике.

ИСТОЧНИКИ ФИНАНСИРОВАНИЯ

Работа выполнена при поддержке Российского научного фонда (проект №22-14-00075).

В работе было использовано оборудование, приобретенное МГУ имени М.В. Ломоносова в рамках федерального проекта «Развитие инфраструктуры для научных исследований и подготовки кадров» национального проекта «Наука и университеты» от 29.12.2022г №15-пр/42 (Соглашение №355 от 15.03.2024 г.).

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией данной статьи.

×

About the authors

T. S. Filatova

Department of Human and Animal Physiology, Lomonosov Moscow State University

Author for correspondence.
Email: filatova@mail.bio.msu.ru
Russian Federation, Moscow

A. V. Shamshura

Department of Human and Animal Physiology, Lomonosov Moscow State University

Email: filatova@mail.bio.msu.ru
Russian Federation, Moscow

D. V. Abramochkina

Department of Human and Animal Physiology, Lomonosov Moscow State University

Email: filatova@mail.bio.msu.ru
Russian Federation, Moscow

References

  1. Dmitrieva D, Romasheva N (2020) Sustainable Development of Oil and Gas Potential of the Arctic and Its Shelf Zone: The Role of Innovations. J Mar Sci Eng 8:1003. https://doi.org/10.3390/JMSE8121003
  2. Hose JE, McGurk MD, Marty GD, Hinton DE, Brown ED, Baker TT (1996) Sublethal effects of the (Exxon Valdez) oil spill on herring embryos and larvae: morphological, cytogenetic, and histopathological assessments, 1989-1991. Can J Fish Aquat Sci 53:2355–2365. https://doi.org/10.1139/F96-174
  3. McGurk MD, Brown ED (1996) Egg–larval mortality of Pacific herring in Prince William Sound, Alaska, after the Exxon Valdez oil spill. Can J Fish Aquat Sci 53:2343–2354. https://doi.org/10.1139/F96-172
  4. Gulas S, Downton M, D’Souza K, Hayden K, Walker TR (2017) Declining Arctic Ocean oil and gas developments: Opportunities to improve governance and environmental pollution control. Mar Policy 75:53–61. https://doi.org/10.1016/J.MARPOL.2016.10.014
  5. Walker TR, Crittenden PD, Young SD, Prystina T (2006) An assessment of pollution impacts due to the oil and gas industries in the Pechora basin, north-eastern European Russia. Ecol Indic 6:369–387. https://doi.org/10.1016/J.ECOLIND.2005.03.015
  6. Rajendran S, Sadooni FN, Al-Kuwari HAS, Oleg A, Govil H, Nasir S, Vethamony P (2021) Monitoring oil spill in Norilsk, Russia using satellite data. Sci Rep 11:1–20. https://doi.org/10.1038/s41598-021-83260-7
  7. Bambulyak A, Ehlers S (2020) Oil spill damage: a collision scenario and financial liability estimations for the Northern Sea Route area. Sh Technol Res 148–164. https://doi.org/10.1080/09377255.2020.1786932
  8. Carls MG, Rice SD, Hose JE (1999) Sensitivity of fish embryos to weathered crude oil: Part I. Low-level exposure during incubation causes malformations, genetic damage, and mortality in larval pacific herring (Clupea pallasi). Environ Toxicol Chem 18:481–493. https://doi.org/10.1002/ETC.5620180317
  9. Lawal AT (2017) Polycyclic aromatic hydrocarbons. A review. Cogent Environ Sci 3:1339841
  10. Xu K, Zhang Y, Zheng J, Wang C, Chen R (2023) Comparative Toxicity of 3–5 Ringed Polycyclic Aromatic Hydrocarbons to Skeletal Development in Zebrafish Embryos and the Possible Reason. Bull Environ Contam Toxicol 110:8. https://doi.org/10.1007/S00128-022-03644-X/TABLES/2
  11. Incardona JP, Collier TK, Scholz NL (2004) Defects in cardiac function precede morphological abnormalities in fish embryos exposed to polycyclic aromatic hydrocarbons. Toxicol Appl Pharmacol 196:191–205. https://doi.org/10.1016/J.TAAP.2003.11.026
  12. Incardona JP, Carls MG, Day HL, Sloan CA, Bolton JL, Collier TK, Schoiz NL (2009) Cardiac arrhythmia is the primary response of embryonic pacific herring (Clupea pallasi) exposed to crude oil during weathering. Environ Sci Technol 43:201–207. https://doi.org/10.1021/ES802270T/SUPPL_FILE/ES802270T_SI_004.PDF
  13. Ainerua MO, Tinwell J, Kompella SN, Sørhus E, White KN, van Dongen BE, Shiels HA (2020) Understanding the cardiac toxicity of the anthropogenic pollutant phenanthrene on the freshwater indicator species, the brown trout (Salmo trutta): From whole heart to cardiomyocytes. Chemosphere 239:124608. https://doi.org/10.1016/J.CHEMOSPHERE.2019.124608
  14. Brette F, Shiels HA, Galli GLJ, Cros C, Incardona JP, Scholz NL, Block BA (2017) A Novel Cardiotoxic Mechanism for a Pervasive Global Pollutant. Sci Rep 7:41476. https://doi.org/10.1038/srep41476
  15. Brette F, Machado B, Cros C, Incardona JP, Scholz NL, Block BA (2014) Crude oil impairs cardiac excitation-contraction coupling in fish. Science (80- ) 343:772–776. https://doi.org/10.1126/SCIENCE.1242747
  16. Filatova TS, Mikhailova VB, Guskova VO, Abramochkin DV (2023) The Effects of Phenanthrene on the Electrical Activity in the Heart of Shorthorn Sculpin (Myoxocephalus scorpio). J Evol Biochem Physiol 2022 581 58:S44–S51. https://doi.org/10.1134/S0022093022070055
  17. Vehniäinen ER, Haverinen J, Vornanen M (2019) Polycyclic Aromatic Hydrocarbons Phenanthrene and Retene Modify the Action Potential via Multiple Ion Currents in Rainbow Trout Oncorhynchus mykiss Cardiac Myocytes. Environ Toxicol Chem 38:2145–2153. https://doi.org/10.1002/ETC.4530
  18. Abramochkin D V, Kompella SN, Shiels HA (2021) Phenanthrene alters the electrical activity of atrial and ventricular myocytes of a polar fish, the Navaga cod. Aquat Toxicol 235:105823. https://doi.org/10.1016/J.AQUATOX.2021.105823
  19. Abramochkin D V., Filatova TS, Pustovit KB, Voronina YA, Kuzmin VS, Vornanen M (2022) Ionic currents underlying different patterns of electrical activity in working cardiac myocytes of mammals and non-mammalian vertebrates. Comp Biochem Physiol Part A Mol Integr Physiol 268:111204. https://doi.org/10.1016/J.CBPA.2022.111204
  20. Kompella SN, Brette F, Hancox JC, Shiels HA (2021) Phenanthrene impacts zebrafish cardiomyocyte excitability by inhibiting IKr and shortening action potential duration. J Gen Physiol 153:e202012733. https://doi.org/10.1085/JGP.202012733/211701
  21. Troell M, Eide A, Isaksen J, Hermansen Ø, Crépin AS (2017) Seafood from a changing Arctic. Ambio 46:368–386. https://doi.org/10.1007/S13280-017-0954-2/TABLES/5
  22. Gadus morhua, Atlantic cod : fisheries, aquaculture, gamefish. https://fishbase.mnhn.fr/summary/69. Accessed 15 Mar 2024
  23. Abramochkin DV, Vornanen M (2017) Seasonal changes of cholinergic response in the atrium of Arctic navaga cod (Eleginus navaga). J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol 187:329–338. https://doi.org/10.1007/s00360-016-1032-y
  24. Hove-Madsen L, Tort L (1998) L-type Ca²⁺ current and excitation-contraction coupling in single atrial myocytes from rainbow trout. Am J Physiol Integr Comp Physiol 275:R2061–R2069. https://doi.org/10.1152/ajpregu.1998.275.6.R2061
  25. Spector PS, Curran ME, Zou A, Keating MT, Sanguinetti MC (1996) Fast inactivation causes rectification of the IKr channel. J Gen Physiol 107:611–619. https://doi.org/10.1085/JGP.107.5.611
  26. Abramochkin DV, Haverinen J, Mitenkov YAYA, Vornanen M (2019) Temperature and external K⁺ dependence of electrical excitation in ventricular myocytes of cod-like fishes. J Exp Biol 222:jeb193607. https://doi.org/10.1242/JEB.193607/259631/AM/TEMPERATURE-AND-EXTERNAL-K-DEPENDENCE-OF
  27. Link JS, Bogstad B, Sparholt H, Lilly GR (2009) Trophic role of Atlantic cod in the ecosystem. Fish Fish 10:58–87. https://doi.org/10.1111/j.1467-2979.2008.00295.x
  28. Shiels HA, Paajanen V, Vornanen M (2006) Sarcolemmal ion currents and sarcoplasmic reticulum Ca²⁺content in ventricular myocytes from the cold stenothermic fish, the burbot( Lota lota ). J Exp Biol 209:3091–3100. https://doi.org/10.1242/jeb.02321
  29. Abramochkin DV, Vornanen M (2015) Seasonal acclimatization of the cardiac potassium currents (IK1 and IKr) in an arctic marine teleost, the navaga cod (Eleginus navaga). J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol 185:883–890. https://doi.org/10.1007/s00360-015-0925-5
  30. Shiels HA, Paajanen V, Vornanen M (2006) Sarcolemmal ion currents and sarcoplasmic reticulum Ca²⁺content in ventricular myocytes from the cold stenothermic fish, the burbot( Lota lota ). J Exp Biol 209:3091–3100. https://doi.org/10.1242/jeb.02321
  31. Haverinen J, Vornanen M (2009) Responses of Action Potential and K + Currents to Temperature Acclimation in Fish Hearts: Phylogeny or Thermal Preferences? Physiol Biochem Zool 82:468–482. https://doi.org/10.1086/590223
  32. Haverinen J, Vornanen M (2004) Temperature acclimation modifies Na+ current in fish cardiac myocytes. J Exp Biol 207:2823–2833. https://doi.org/10.1242/jeb.01103
  33. Abramochkin D V., Filatova TS, Kuzmin VS, Voronkov YI, Kamkin A, Shiels HA (2023) Tricyclic hydrocarbon fluorene attenuates ventricular ionic currents and pressure development in the navaga cod. Comp Biochem Physiol Part C Toxicol Pharmacol 273:109736. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2023.109736
  34. Mesirca P, Torrente AG, Mangoni ME (2015) Functional role of voltage gated Ca²⁺ channels in heart automaticity. Front Physiol 6:19. https://doi.org/10.3389/fphys.2015.00019
  35. Varró A, Baczkó I (2011) Cardiac ventricular repolarization reserve: a principle for understanding drug-related proarrhythmic risk. Br J Pharmacol 164:14–36. https://doi.org/10.1111/j.1476-5381.2011.01367.x

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Fig. 1. Effect of phenanthrene on AP configuration in cod ventricular cardiomyocytes. (a) Representative AP recordings under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene; (b) Representative recording showing slowing of the fast depolarization phase of AP in the presence of 1 μM phenanthrene, the black line below shows the electrical stimulus, the arrow marks the region of interest; (c) Effect of 1 μM phenanthrene on the maximum rate of AP leading edge rise (n = 6; p < 0.01, paired Student's t-test); (d) Effect of 1 μM phenanthrene on the resting membrane potential (n = 6; p = 0.11, paired Student's t-test). (e) – effect of 1 μM phenanthrene on the duration of AP at 90% repolarization (n = 6; p = 0.20, paired Student's t-test); (f) – effect of 1 μM phenanthrene on the duration of AP at 5% repolarization (n = 6; p = 0.07, paired Student's t-test).

Download (197KB)
Indexing metadata
3. Fig. 2. Effect of phenanthrene on the delayed rectifier fast potassium current IKr in cod ventricular cardiomyocytes. (a) Representative IKᵣ traces; (b) Current-voltage characteristics of IKr in cod ventricular cardiomyocytes under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene (n = 6 for both groups; **p < 0.01, * p < 0.05, paired Student's t-test); (c) Representative IKᵣ traces (at 40 mV) under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene.

Download (159KB)
Indexing metadata
4. Fig. 3. Effect of phenanthrene on the background potassium inward rectifier current IK1 in cod ventricular cardiomyocytes. (a) Current-voltage characteristic of IK1 current under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene (n = 6 for both groups, p > 0.05 for all potentials, paired Student's t-test); (b) representative IK1 recordings under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene.

Download (126KB)
Indexing metadata
5. Fig. 4. Effect of phenanthrene on the fast sodium current INₐ in cod ventricular cardiomyocytes. (a) Representative INₐ traces; (b) Current-voltage characteristics of INₐ in cod ventricular cardiomyocytes under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene (n = 7 for both groups, p > 0.05 for all potentials, paired Student's t-test); (c) Representative INₐ traces (at –30 mV) under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene.

Download (174KB)
Indexing metadata
6. Fig. 5. Effect of phenanthrene on the calcium current ICa in cod ventricular cardiomyocytes. (a) Representative ICa traces; (b) Current-voltage characteristics of ICa in cod ventricular cardiomyocytes under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene (n = 5 for both groups, p > 0.05 for all potentials, paired Student's t-test); (c) Representative ICa traces (at –10 mV) under control conditions and in the presence of 1 μM phenanthrene; (d) Effect of 1 μM phenanthrene on the time constant of ICa inactivation at –10 mV (n = 5; p = 0.22, paired Student's t-test). (e) Effect of 1 μM phenanthrene on the net charge transferred by ICa at –10 mV (n = 5; p < 0.01, paired Student's t-test).

Download (242KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».