Хроматографическая оценка содержания фенольных соединений в экстрактах ромашки аптечной (Matricаria chamomilla L.) В различных условиях извлечения

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обсуждаются результаты исследования водных и водно-спиртовых экстрактов фенольных соединений ромашки аптечной (Matricаria chamomilla L.) в зависимости от условий их извлечения различными способами. Объект исследований – собранная в различных регионах России ромашка аптечная. Фенольные компоненты в их нативных формах извлекали из лекарственного сырья различными способами: настаиванием, мацерацией, микроволновым, ультразвуковым, субкритическим и фармакопейным. Содержания индивидуальных компонентов и суммарное содержание фенольных соединений в экстрактах ромашки аптечной оценивали хроматографическими методами. ВЭЖХ-определение фенольных соединений с диодно-матричным и масс-спектрометрическим детектированием проводили в градиентном режиме элюирования смесью ацетонитрил–0.1%-ная муравьиная кислота. В водных и водно-спиртовых экстрактах ромашки аптечной идентифицировали хлорогеновую кислоту, гликозиды феруловой кислоты, лютеолин-7-О-глюкозид, дикофеилхинную и цикориевую кислоты, апигенин-7-глюкозид, апигенин. По содержаниям фенольных соединений в экстрактах цветов ромашки различных производителей с различных территорий изучили зависимость данного показателя от географического места произрастания растительного сырья. Максимальное суммарное содержание фенольных соединений (10.1 мг/г) наблюдали в экстракте ромашки аптечной торговой марки “Фармацвет” (Московская обл., Красногорск).

Об авторах

З. А. Темердашев

Кубанский государственный университет

Email: TemZA@kubsu.ru
Россия, 350040, Краснодар, ул. Ставропольская, 149

Т. К. Чубукина

Кубанский государственный университет

Email: TemZA@kubsu.ru
Россия, 350040, Краснодар, ул. Ставропольская, 149

Е. А. Виницкая

Кубанский государственный университет; Субтропический научный центр Российской академии наук

Email: TemZA@kubsu.ru
Россия, 350040, Краснодар, ул. Ставропольская, 149; Россия, 354002, Сочи, ул. Яна Фабрициуса, 2/28

Н. В. Киселева

Кубанский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: TemZA@kubsu.ru
Россия, 350040, Краснодар, ул. Ставропольская, 149

Список литературы

  1. Oniszczuk A., Olech M., Oniszczuk T., Wójtowicz A., Krawczyk W. Puffed cereals with added chamomile – Quantitative analysis of polyphenols and optimization of their extraction method // Ann. Agric. Environ. Med. 2017. V. 24. № 2. P. 222. https://doi.org/10.5604/12321966.1233564
  2. Berechet M. Manaila E., Stelescu M., Crăciun G. The composition of essential oils obtained from Achillea millefolium and Matricaria chamomilla L., originary from Romania // Rev. Chim. 2018. V. 68. № 12. P. 2787. https://doi.org/10.37358/rc.17.12.5979
  3. Chau C.-F., Wu S.-H. The development of regulations of Chinese herbal medicines for both medicinal and food uses // Trends Food Sci Technol. 2006. V. 17. № 6. P. 313. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2005.12.005
  4. Šibul F., Orčić D., Berežni S., Anačkov G., Mimica–Dukić N. HPLC–MS/MS profiling of wild-growing scentless chamomile // Acta Chromatogr. 2020. V. 32. № 2. P. 86. https://doi.org/10.1556/1326.2019.00546
  5. Singh O. Khanam Z., Misra N., Srivastava M. Chamomile (Matricaria chamomilla L.): An overview // Pharmacogn. Rev. 2011. V. 5. № 9. P. 82. https://doi.org/10.4103/0973-7847.79103
  6. Srivastava J.K., Shankar E., Gupta S. Chamomile: A herbal medicine of the past with a bright future (Review) // Mol. Med. Rep. 2010. V. 3. № 6. P. 895. https://doi.org/10.3892/mmr.2010.377
  7. Тараховский Ю.С, Ким Ю.А., Абдрасилов Б.С., Музафаров Е.Н. Флавоноиды: биохимия, биофизика, медицина. Пущино: Sуnchrobook, 2013. 310 с.
  8. Государственная Фармакопея Российской Федерации. Изд. 14. М., 2018. Т. 4. С. 6394.
  9. Bączek K.B., Wiśniewska M., Przybył J., Kosakowska O., Węglarz Z. Arbuscular mycorrhizal fungi in chamomile (Matricaria recutita L.) organic cultivation // Ind. Crops Prod. 2019. V. 140. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2019.111562
  10. Xie X.-Y., Chen F.-F., Shi Y.-P. Simultaneous determination of eight flavonoids in the flowers of Matricaria chamomilla by high performance liquid chromatography // J. AOAC Int. 2014. V. 97. № 3. P. 778. https://doi.org/10.5740/jaoacint.13-029
  11. Cvetanović A., Švarc-Gajić J., Mašković P., Savić S., Nikolić L. Antioxidant and biological activity of chamomile extracts obtained by different techniques: Perspective of using superheated water for isolation of biologically active compounds // Ind. Crops Prod. 2015. V. 65. P. 582. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2014.09.044
  12. Mulinacci N., Romani A., Pinelli P., Vincieri F.F., Prucher D. Characterization of Matricaria recutita L. flower extracts by HPLC-MS and HPLC-DAD analysis // Chromatographia. 2000. V. 51. № 5–6. P. 301. https://doi.org/10.1007/BF02490607
  13. Ajila C.M., Brar S.K., Verma M., Tyagi R., Godbout S., Valéro J. Extraction and analysis of polyphenols: Recent trends // Crit. Rev. Biotechnol. 2011. V. 31. № 3. P. 227. https://doi.org/10.3109/07388551.2010.513677
  14. Nováková L., Vildová A., Mateus J.P., Gonçalves T., Solich P. Development and application of UHPLC–MS/MS method for the determination of phenolic compounds in Chamomile flowers and Chamomile tea extracts // Talanta. 2010. V. 82. № 4. P. 1271. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2010.06.057
  15. Valduga A.T., Gonçalves I.L., Magri E., Delalibera Finzer J.R. Chemistry, pharmacology and new trends in traditional functional and medicinal beverages // Food Res. Int. 2019. V. 120. P. 478. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2018.10.091
  16. Sentkowska A., Biesaga M., Pyrzynska K. Effects of brewing process on phenolic compounds and antioxidant activity of herbs // Food Sci. Biotechnol. 2016. V. 25. № 4. P. 965. https://doi.org/10.1007/s10068-016-0157-9
  17. Maschi O., Cero E.D., Galli G.V., Caruso D., Bosisio E., Dell’Agli M. Inhibition of human cAMP-phosphodiesterase as a mechanism of the spasmolytic effect of Matricaria recutita L. // J. Agric. Food Chem. 2008. V. 56. № 13. P. 5015. https://doi.org/10.1021/jf800051n
  18. Kassi E., Papoutsi Z., Fokialakis N., Messari I., Mitakou S., Moutsatsou P. Greek plant extracts exhibit selective estrogen receptor modulator (SERM)-like properties // J. Agric. Food Chem. 2004. V. 52. № 23. P. 6956. https://doi.org/10.1021/jf0400765
  19. Macchioni F., Perrucci S., Cecchi F., Cioni P.L., Morelli I., Pampiglione S. Acaricidal activity of aqueous extracts of camomile flowers, Matricaria chamomilla, against the mite Psoroptes cuniculi // Med. Vet. Entomol. 2004. V. 18. № 2. P. 205. https://doi.org/10.1111/j.0269-283X.2004.00488.x
  20. Sentkowska A., Biesaga M., Pyrzynska K. Retention study of flavonoids under different chromatographic modes // J. Chromatogr. Sci. 2016. V. 54. № 4. P. 516. https://doi.org/10.1093/chromsci/bmv174
  21. Raal A., Orav A., Püssa T., Valner C., Malmiste B., Arak E. Content of essential oil, terpenoids and polyphenols in commercial chamomile (Chamomilla recutita L. Rauschert) teas from different countries // Food Chem. 2012. V. 131. № 2. P. 632. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.09.042
  22. Kobayashi Y., Nakano Y., Inayama K., Sakai A., Kamiya T. Dietary intake of the flower extracts of German Chamomile (Matricaria recutita L.) inhibited compound 48/80-induced itch-scratch responses in mice // Phytomedicine. 2003. V. 10. № 8. P. 657. https://doi.org/10.1078/0944-7113-00283
  23. Ramos M.F.S., Santos E.P., Bizarri C.H.B., Mattos H.A., Padilha M.R.S., Duarte H.M. Preliminary studies towards utilization of various plant extracts as antisolar agents // Int. J. Cosmet. Sci. 2007. V. 18. № 3. P. 87. https://doi.org/10.1111/j.1467-2494.1996.tb00140.x
  24. Павлова Л.В., Платонов И.А., Куркин В.А., Афанасьева П.В., Новикова Е.А., Муханова И.М. Оценка эффективности извлечения биологически активных соединений экстрагентами в субкритическом состоянии из цветков ромашки аптечной (Chamomilla recutita R.), произрастающей в Самарской области// Сверхкритические флюиды: теория и практика. 2018. Т. 13. № 1. С. 16. (Pavlova L.V., Platonov I.A., Kurkin V.A., Afanasyeva P.V., Novikova E.A., Mukhanova I.M. Evaluation of the extraction efficiency of biologically active compounds from chamomile flowers (Chamomilla recutita R.) grown in the Samara region by extractants in the subcritical state // Russ. J. Phys. Chem. В. 2018. V. 12. № 8. P. 1212.) https://doi.org/10.1134/S2070205114060173
  25. Avula B., Wang Y.-H., Isaac G., Yuk J., Wrona M., Yu K., Khan I. Metabolic profiling of Hoodia, Chamomile, Terminalia species and evaluation of commercial preparations using ultrahigh-performance liquid chromatography quadrupole-time-of-flight mass spectrometry // Planta Med. 2017. V. 83. № 16. P. 1297. https://doi.org/10.1055/s-0043-109239
  26. Милевская В.В., Статкус М.А., Темердашев З.А., Киселева Н.В., Бутыльская Т.С., Шилько Е.А. Экстракция и определение биологически активных компонентов зверобоя и препаратов на его основе // Журн. аналит. химии. 2016. Т. 71. № 7. С. 768. (Milevskaya V.V., Temerdashev Z.A., Kiseleva N.V., Butyl’skaya T.S., Shil’ko E.A., Statkus M.A. Extraction and determination of biologically active components of St. John’s wort and its pharmaceutical preparations // J. Anal. Chem. 2016. V. 71. № 7. P. 741.) https://doi.org/10.7868/S0044450216070136
  27. Avula B., Wang Y.-H., Wang M., Avonto C., Zhao J., Smillie T.J., Rua D., Khan I.A. Quantitative determination of phenolic compounds by UHPLC-UV–MS and use of partial least-square discriminant analysis to differentiate chemo-types of Chamomile/Chrysanthemum flower heads // J. Pharm. Biomed. Anal. 2014. V. 88. P. 278. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2013.08.037
  28. Сычев К.С. Методы высокоэффективной жидкостной хроматографии и твердофазной экстракции. М., 2006. С. 90.
  29. Милевская В.В., Статкус М.А., Темердашев З.А., Киселева Н.В., Верниковская Н.А. Способы экстрагирования биологически активных веществ из лекарственных растений на примере компонентов зверобоя // Журн. аналит. химии. 2015. Т. 70. № 12. С. 1255. (Milevskaya V.V., Statkus M.A., Temerdashev Z.A., Kiseleva N.V., Vernikovskaya N.A. Methods for the extraction of biologically active substances from medicinal plants based on an example of St. John’s wort components // J. Anal. Chem. 2015. V. 70. № 12. P. 1432.) https://doi.org/10.7868/S0044450215120129
  30. Biesaga M. Influence of extraction methods on stability of flavonoids // J. Chromatogr. A. 2011. V. 1218. № 18. P. 2505. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2011.02.059
  31. Карпук В.В. Фармакогнозия. Минск: БГУ, 2011. С. 65.
  32. The Science of Flavonoids / Ed. Grotewold E. N.Y.: Springer, 2006. P. 50.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2.

Скачать (114KB)
Метаданные
3.

Скачать (942KB)
Метаданные
4.

Скачать (109KB)
Метаданные
5.

Скачать (100KB)
Метаданные

© З.А. Темердашев, Т.К. Чубукина, Е.А. Виницкая, Н.В. Киселева, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах