Peripheral blood leukocyte composition of the Atka mackerel Pleurogrammus monopterygius (hexagrammidae) and chum salmon oncorhynchus keta (Salmonidae) from the Bering sea

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

In the Atka mackerel Pleurogrammus monopterygiusand chum salmon Oncorhynchus keta from the Bering Sea, lymphocytes predominate among leukocytes in peripheral blood. Atka mackerel lacks segmented neutrophils and basophils, while chum salmon lack eosinophils. The studied species differ in the size of leukocytes and the values of the leukocyte abundance index.

About the authors

D. V. Mikryakov

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences

Email: daniil@ibiw.ru
Borok, Nekouzskii raion, Yaroslavl oblast, Russia

I. I. Gordeev

Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography; Lomonosov Moscow State University

Moscow, Russia; Moscow, Russia

L. V. Balabanova

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences

Borok, Nekouzskii raion, Yaroslavl oblast, Russia

T. A. Suvorova

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences

Borok, Nekouzskii raion, Yaroslavl oblast, Russia

References

  1. Басова М.М.2017. Лейкоцитарная формула морского ершаScorpaena porcusкак биомаркер антропогенного загрязнения прибрежных вод Чёрного моря // Вопр. ихтиологии. Т. 57. № 3. С. 347–352. https://doi.org/10.7868/S004287521703002X
  2. Галактионов В.Г.2005. Эволюционная иммунология. М.: Академкнига, 408 с.
  3. Головатюк Г.Ю.,Смирнов А.А.,Согрина А.В.,Ведищева Е.В.2023. Биологическое состояние и промысловые показатели северного однопёрого терпуга (Pleurogrammus monopterygius) в Восточно-Камчатской и Западно-Беринговоморской промысловых зонах в 2021–2022 гг. в контексте рационального природопользования // Сб. ст. IV Всерос. (нац.) науч.-практ. конф. “Охрана биоразнообразия и экологические проблемы природопользования”. Пенза: Изд-во ПГАУ. С. 31–34.
  4. Головина Н.А.2018. Гематологические исследования и их использование для оценки здоровья рыб // Рыбоводство и рыб. хоз-во. № 5 (148). С. 72–74.
  5. Гордеев И.И.,Кловач Н.В.2019. Вольный лосось: трудности прогнозирования уловов тихоокеанских лососей // Природа. Т. 3. C. 22–27. https://doi.org/10.7868/S0032874X19030049
  6. Гордеев И.И.,Балабанова Л.В.,Суворова Т.А.,Микряков Д.В.2022. Состав лейкоцитов периферической крови горбушиOncorhynchus gorbuschaи кетыO. keta(Salmonidae) в морской период жизни // Вопр. ихтиологии. Т. 62. № 2. С. 244–248. https://doi.org/10.31857/S0042875222020084
  7. Житенева Л.Д.,Рудницкая О.А.,Калюжная Т.И.1997. Эколого-гематологические характеристики некоторых видов рыб. Ростов н/Д: Молот, 152 с.
  8. Иванова Н.Т. 1983. Атлас клеток крови рыб. М.: Лег. и пищ. пром-сть, 184 с.
  9. Изергина Е.Е.,Изергин И.Л.,Изергин Л.И.2014. Атлас клеток крови лососевых рыб материкового побережья северной части Охотского моря. Магадан: Кордис, 127 с.
  10. Королева И.М.2016. Гематологические показатели сига обыкновенногоCoregonus lavaretusL. в водоемах Кольского севера // Тр. ВНИРО. Т. 162. С. 36–45.
  11. Микряков В.Р.1991. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. Рыбинск: Изд-во ИБВВ РАН, 153 с.
  12. Микряков В.Р.,Лапирова Т.Б.1997. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на состав белой крови молоди ленского осетраAcipenser baeri // Вопр. ихтиологии. Т. 37. № 4. С. 538–542.
  13. Минеев А.К.2015. Морфофункциональные изменения у лещаAbramis bramaСаратовского водохранилища // Вопр. рыболовства. Т. 16. № 3. С. 332–350.
  14. Промысловые рыбы России. 2006. Т. 1. М.: Изд-во ВНИРО, 656 с.
  15. Ройт А.,Бростофф Дж.,Мейл Д.2000. Иммунология. М.: Мир, 592 с.
  16. Яхненко В.М.,Клименков И.В.2009. Особенности состава и структуры клеток крови рыб пелагиали и прибрежья озера Байкал // Изв. РАН. Сер. биол. № 1. С. 46–54.
  17. Ciereszko A.,Liu L.,Dabrowski K.2007. Optimal conditions for determination of aspartate aminotransferase activity in rainbow trout and whitefish // J. Appl. Ichthyol. V. 14. № 1–2. P. 57–63. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.1998.tb00614.x
  18. Dessen J.-E.,Østbye T.K.,Ruyter B. et al.2020. Sudden increased mortality in large seemingly healthy farmed Atlantic salmon (Salmo salarL.) was associated with environmental and dietary changes // J. Appl. Aquac. V. 33. № 2. P. 165–182. https://doi.org/10.1080/10454438.2020.1726237
  19. Ellis A.E.1977. The leucocytes of fish: a review // J. Fish. Biol. V. 11. № 5. P. 453–491. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1977.tb04140.x
  20. Gao X.,Chu Z.,Shi L. et al.2022. Comparative study of blood physiological, antioxidant capacity, nutrition and organoleptic quality between wild, factory and cage-culturedHexagrammos otakii // Aquac. Res. V. 53. № 18. P. 6890–6899. https://doi.org/10.1111/are.16154
  21. Gordeev I.I.,Mikryakov D.V.,Balabanova L.V.,Mikryakov V.R.2017. Composition of leucocytes in peripheral blood of Patagonian toothfish (Dissostichus eleginoides, Smitt, 1898) (Nototheniidae) // Polar Res. V. 36. Article 1374126. https://doi.org/10.1080/17518369.2017.1374126
  22. Havixbeck J.J.,Barreda D.R.2015. Neutrophil development, migration, and function in teleost fish // Biology. V. 4. № 4. P. 715–734. https://doi.org/10.3390/biology4040715
  23. Hodgkinson J.W.,Grayfer L.,Belosevic M.2015. Biology of bony fish macrophages // Ibid. V. 4. № 4. P. 881–906. https://doi.org/10.3390/biology4040881
  24. Lulijwa R.,Alfaro A.C.,Merien F. et al.2019. Characterisation of Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) blood and validation of flow cytometry cell count and viability assay kit // Fish Shellfish Immunol. V. 88. P. 179–188. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2019.02.059
  25. Sandnes K.,Lie Ø.,WaagbøR.1988. Normal ranges of some blood chemistry parameters in adult farmed Atlantic salmon,Salmo salar // J. Fish Biol. V. 32. № 1. P. 129–136. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1988.tb05341.x
  26. Scapigliati G.2013. Functional aspects of fish lymphocytes // Dev. Comp. Immunol. V. 41. № 2. P. 200–208. https://doi.org/10.1016/j.dci.2013.05.012
  27. Uribe C.,Folch H.,Enriquez R.,Moran G.2011. Innate and adaptive immunity in teleost fish: a review // Vet. Med. V. 56. № 10. P. 486–503. https://doi.org/10.17221/3294-VETMED
  28. Van Muiswinkel W.В.,Vervoorn-Van der Wal B.2006. The immune system of fish // Fish diseases and disorders. V. 1. Wallingford: CABI. P. 678–701. https://doi.org/10.1079/9780851990156.0678
  29. Zapata A.G.,Chiba A.,Varas A.1996. 1 — Cells and tissues of the immune system of fish // Fish Physiol. V. 15. P. 1–62. https://doi.org/10.1016/S1546-5098(08)60271-X
  30. Zhou Z.,Hu F.,Li W. et al.2021. Effects of salinity on growth, hematological parameters, gill microstructure and transcriptome of fat greenlingHexagrammos otakii // Aquaculture. V. 531. Article 735945. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735945

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).