Biotechnology in dermatology: present and future

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

One of the fastest disciplinary measures 21 century is biotechnology, which in the last decade has become a powerful tool and assistant in the diagnosis, prognosis and elimination of various diseases. The article is devoted to a description of the following sections of medical biotechnologies used in dermatology, such as gene therapy, molecular diagnostics, pharmacogenomics and genetic (tissue) engineering. The article creates the potential for the use of biotechnology in dermatology, which remains the main hope of dermatology patients and dermatologists.

About the authors

Anna V. Vlasova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

Author for correspondence.
Email: avvla@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7677-1544
SPIN-code: 8802-7325

MD, PhD

Russian Federation, 8 bldg 2 Trubetskaya street, 119991 Moscow

Andrey A. Martynov

State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Email: aamart@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5756-2747
SPIN-code: 2613-8597

MD, Dr. Sci. (Med.), Professor

Russian Federation, Moscow

Maria A. Martynova

Tel Aviv University

Email: manmartyn@gmail.com
ORCID iD: 0009-0000-5377-1739

Student

Israel, Tel Aviv

References

  1. Pham PV. Medical Biotechnology: Techniques and Applications. In: Omics Technologies and Bio-engineering: Towards Improving Quality of Life. Academic Press; 2018. P. 449–69. doi: 10.1016/B978-0-12-804659-3.00019-1
  2. Bulcha JT, Wang Y, Ma H, Tai PWL, Gao G. Viral vector platforms within the gene therapy landscape. Signal Transduct Target Ther. 2021;6(1):53. doi: 10.1038/s41392-021-00487-6
  3. Alnasser SM. Review on mechanistic strategy of gene therapy in the treatment of disease. Gene. 2021;769:145246. doi: 10.1016/j.gene.2020.145246
  4. Guide SV, Gonzalez ME, Bağcı IS, Agostini B, Chen H, Feeney G, et al. Trial of Beremagene Geperpavec (B-VEC) for Dystrophic Epidermolysis Bullosa. N Engl J Med. 2022;387(24):2211–2219. doi: 10.1056/nejmoa2206663
  5. Dhillon S. Beremagene Geperpavec: First Approval. Drugs. 2023;83(12):1131–1135. doi: 10.1007/s40265-023-01921-5
  6. Krystal biotech. New Data on B-VEC and Dystrophic Epidermolysis Bullosa (DEB) Presented at the DEBRA International Conference; 2021.
  7. Ferrucci PF, Pala L, Conforti F, Cocorocchio E. Talimogene laherparepvec (T-VEC): An intralesional cancer immunotherapy for advanced melanoma. Cancers (Basel). 2021;13(6):1383. doi: 10.3390/cancers13061383
  8. Baum C, Kustikova O, Modlich U, Li Z, Fehse B. Mutagenesis and Oncogenesis by Chromosomal Insertion of Gene Transfer Vectors. Hum Gene Ther. 2006;17(3):253–263. doi: 10.1089/hum.2006.17.253
  9. Thomas CE, Ehrhardt A, Kay MA. Progress and problems with the use of viral vectors for gene therapy. Nat Rev Genet. 2003;4(5):346–358. doi: 10.1038/nrg1066
  10. Bessis N, GarciaCozar FJ, Boissier MC. Immune responses to gene therapy vectors: Influence on vector function and effector mechanisms. Gene Ther. 2004;11(Suppl 1):S10–7. doi: 10.1038/sj.gt.3302364
  11. Midoux P, Pichon C, Yaouanc JJ, Jaffrès PA. Chemical vectors for gene delivery: A current review on polymers, peptides and lipids containing histidine or imidazole as nucleic acids carriers. Br J Pharmacol. 2009;157(2):166–178. doi: 10.1111/j.1476-5381.2009.00288.x
  12. Wang M, Marepally SK, Vemula PK, Xu C. Inorganic Nanoparticles for Transdermal Drug Delivery and Topical Application. In: Nanoscience in Dermatology. Elsevier Inc.; 2016. P. 57–72. doi: 10.1016/B978-0-12-802926-8.00005-7
  13. Siu KS, Chen D, Zheng X, Zhang X, Johnston N, Liu Y, et al. Non-covalently functionalized single-walled carbon nanotube for topical siRNA delivery into melanoma. Biomaterials. 2014;35(10):3435–3442. doi: 10.1016/j.biomaterials.2013.12.079
  14. Desai PR, Marepally S, Patel AR, Voshavar C, Chaudhuri A, Singh M. Topical delivery of anti-TNFα siRNA and capsaicin via novel lipid-polymer hybrid nanoparticles efficiently inhibits skin inflammation in vivo. J Control Release. 2013;170(1):51–63. doi: 10.1016/j.jconrel.2013.04.021
  15. Bracke S, Carretero M, Guerrero-Aspizua S, Desmet E, Illera N, Navarro M, et al. Targeted silencing of DEFB4 in a bioengineered skin-humanized mouse model for psoriasis: Development of siRNA SECosome-based novel therapies. Exp Dermatol. 2014;23(3):199–201. doi: 10.1111/exd.12321
  16. Kim ST, Lee KM, Park HJ, Jin SE, Ahn WS, Kim CK. Topical delivery of interleukin-13 antisense oligonucleotides with cationic elastic liposome for the treatment of atopic dermatitis. J Gene Med. 2009;11(1):26–37. doi: 10.1002/jgm.1268
  17. Li J, Li X, Zhang Y, Zhou XK, Yang HS, Chen XC, et al. Gene therapy for psoriasis in the K14-VEGF transgenic mouse model by topical transdermal delivery of interleukin-4 using ultradeformable cationic liposome. J Gene Med. 2010;12(6):481–490. doi: 10.1002/jgm.1459
  18. Lewandowski KT, Thiede R, Guido N, Daniel WL, Kang R, Guerrero-Zayas MI, et al. Topically Delivered Tumor Necrosis Factor-α–Targeted Gene Regulation for Psoriasis. J Invest Dermatol. 2017;137(9):2027–2030. doi: 10.1016/j.jid.2017.04.027
  19. Zheng D, Giljohann DA, Chen DL, Massich MD, Wang XQ, Iordanov H, et al. Topical delivery of siRNA-based spherical nucleic acid nanoparticle conjugates for gene regulation. Proc Nat Acad Sci U S A. 2012;109(30):11975–11980. doi: 10.1073/pnas.1118425109/-/DCSupplemental
  20. Randeria PS, Seeger MA, Wang XQ, Wilson H, Shipp D, Mirkin CA, et al. siRNA-based spherical nucleic acids reverse impaired wound healing in diabetic mice by ganglioside GM3 synthase knockdown. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015;112(18):5573–5578. doi: 10.1073/pnas.1505951112
  21. Yi X, Zhao G, Zhang H, Guan D, Meng R, Zhang Y, et al. MITF-siRNA formulation is a safe and effective therapy for human melasma. Mol Ther. 2011;19(2):362–371. doi: 10.1038/mt.2010.263
  22. Heydari Z, Peshkova M, Gonen ZB, Coretchi I, Eken A, Yay AH, et al. EVs vs. EVs: MSCs and Tregs as a source of invisible possibilities. J Mol Med (Berl). 2023;101(1–2):51–63. doi: 10.1007/s00109-022-02276-2
  23. Lo AC, Feldman SR. Polymerase chain reaction: Basic concepts and clinical applications in dermatology. J Am Acad Dermatol. 1994;30(2):250–260. doi: 10.1016/S0190-9622(94)70025-7
  24. Mania-Pramanik J, Donde UM, Maitra A. Use of polymerase chain reaction (PCR) for detection of Chlamydia trachomatis infection in cervical swab samples. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2001;67(5):246–250.
  25. Liu H, Rodes B, Chen CY, Steiner B. New tests for syphilis: Rational design of a PCR method for detection of Treponema pallidum in clinical specimens using unique regions of the DNA polymerase I gene. J Clin Microbiol. 2001;39(5):1941–1946. doi: 10.1128/JCM.39.5.1941-1946.2001
  26. Shafie MH, Antony Dass M, Ahmad Shaberi HS, Zafarina Z. Screening and confirmation tests for SARS-CoV-2: benefits and drawbacks. Beni Suef Univ J Basic Appl Sci. 2023;12(1):6. doi: 10.1186/s43088-023-00342-3
  27. D’Amico F, Skarmoutsou E, Stivala F. State of the art in antigen retrieval for immunohistochemistry. J Immunol Methods. 2009;341(1–2):1–18. doi: 10.1016/j.jim.2008.11.007
  28. Magaki S, Hojat SA, Wei B, So A, Yong WH. An introduction to the performance of immunohistochemistry. Methods Mol Biol. 2019;1897:289–298. doi: 10.1007/978-1-4939-8935-5_25
  29. Palit A, Inamadar AC. Immunohistochemistry: Relevance in dermatology. Indian J Dermatol. 2011;56(6):629–640. doi: 10.4103/0019-5154.91818
  30. Chatterjee D, Bhattacharjee R. Immunohistochemistry in dermatopathology and its relevance in clinical practice. Indian Dermatol Online J. 2018;9(4):234–244. doi: 10.4103/idoj.idoj_8_18
  31. Esposito R. What are the different detection methods for IHC? Enzo Life Sciences; 2019.
  32. King AD, Deirawan H, Klein PA, Dasgeb B, Dumur CI, Mehregan DR. Next-generation sequencing in dermatology. Front Med (Lausanne). 2023;10:2128404. doi: 10.3389/fmed.2023.1218404
  33. Qin D. Next-generation sequencing and its clinical application. Cancer Biol Med. 2019;16(1):4–10. doi: 10.20892/j.issn.2095-3941.2018.0055
  34. Sarig O, Sprecher E. The Molecular Revolution in Cutaneous Biology: Era of Next-Generation Sequencing. J Invest Dermatol. 2017;137(5):е79–е82. doi: 10.1016/j.jid.2016.02.818
  35. Gonzalez D, Fearfield L, Nathan P, Tanière P, Wallace A, Brown E, et al. BRAF mutation testing algorithm for vemurafenib treatment in melanoma: Recommendations from an expert panel. Br J Dermatol. 2013;168(4):700–707. doi: 10.1111/bjd.12248
  36. Todd P, Samaratunga IR, Pembroke A. Screening for glucose-6-phosphate dehydrogenase deficiency prior to dapsone therapy. Clin Exp Dermatol. 1994;19(3):217–218. doi: 10.1111/j.1365-2230.1994.tb01168.x
  37. Iznardo H, Roé E, Serra-Baldrich E, Puig L. Efficacy and Safety of JAK1 Inhibitor Abrocitinib in Atopic Dermatitis. Pharmaceutics. 2023;15(2):385. doi: 10.3390/pharmaceutics15020385
  38. Diasio RB, Offer SM. Testing for Dihydropyrimidine Dehydrogenase Deficiency to Individualize 5-Fluorouracil Therapy. Cancers (Basel). 2022;14(13):3207. doi: 10.3390/cancers14133207
  39. Mitra D, Chopra A, Saraswat N, Mitra B, Talukdar K, Agarwal R. Biologics in Dermatology: Off-Label Indications. Indian Dermatol Online J. 2020;11(3):319–327. doi: 10.4103/idoj.IDOJ_407_18
  40. Mpofu S, Fatima F, Moots RJ. Anti-TNF-α therapies: They are all the same (aren’t they?). Rheumatology. 2005;44(3):271–273. doi: 10.1093/rheumatology/keh483
  41. Atiqi S, Hooijberg F, Loeff FC, Rispens T, Wolbink GJ. Immunogenicity of TNF-Inhibitors. Front Immunol. 2020;11:312. doi: 10.3389/fimmu.2020.00312
  42. Hodi FS, Soiffer RJ. Interleukins. In: Encyclopedia of Cancer. 2nd ed. Academic Press; 2002. P. 523–35. doi: 10.1016/B0-12-227555-1/00110-6
  43. Sehgal VN, Pandhi D, Khurana A. Biologics in dermatology: An integrated review. Indian J Dermatol. 2014;59(5):425–441. doi: 10.4103/0019-5154.139859
  44. Gonçalves F, Freitas E, Torres T. Selective IL-13 inhibitors for the treatment of atopic dermatitis. Drugs Context. 2021;10:2021-1-7. doi: 10.7573/DIC.2021-1-7
  45. Yang K, Oak ASW, Elewski BE. Use of IL-23 Inhibitors for the Treatment of Plaque Psoriasis and Psoriatic Arthritis: A Comprehensive Review. Am J Clin Dermatol. 2021;22(2):173–192. doi: 10.1007/s40257-020-00578-0
  46. Batta S, Khan R, Zaayman M, Limmer A, Kivelevitch D, Menter A. IL-17 and -23 Inhibitors for the Treatment of Psoriasis. EMJ Allergy & Immunology. 2023; doi: 10.33590/emjallergyimmunol/10301362
  47. Nie T. Spesolimab in generalised pustular psoriasis flares: a profile of its use. Drugs & Therapy Perspectives. 2023;39:404–412. doi: 10.1007/s40267-023-01034-9
  48. Курбачева О.М., Галицкая М.А. Место омализумаба в терапии аллергических заболеваний. Медицинский совет. 2019;15:38–49. [Kurbacheva OM, Galitskaya MA. The place of Omalizumab in the treatment of allergic diseases. Meditsinskiy sovet = Medical Council. 2019;15:38–49. (In Russ.)] doi: 10.21518/2079-701x-2019-15-38-49
  49. Kara RO, Dikicier BS, Yaldiz M, Koku B, Çosansu NC, Solak B. Omalizumab treatment for chronic spontaneous urticaria: data from Turkey. Postepy Dermatol Alergol. 2022;39(4):704–707. doi: 10.5114/ada.2021.109081
  50. Khandelwal K, Jajoo V, Bajpai K, Madke B, Prasad R, Wanjari MB, et al. Rituximab in Pemphigus Vulgaris: A Review of Monoclonal Antibody Therapy in Dermatology. Cureus. 2023;15(6):e40734. doi: 10.7759/cureus.40734
  51. Кубанов А.А., Абрамова Т.В. Современные методы терапии истинной акатолитической пузырчатки. Вестник дерматологии и венерологии. 2014;90(4):19–27. [Kubanov AА, Abramova TV. Current methods of treatment of true acantholytic pemphigus. Vestnik Dermatologii i Venerologii. 2014;90(4):19–27. (In Russ.)] doi: 10.25208/0042-4609-2014-90-4-19-27
  52. Arin MJ, Engert A, Krieg T, Hunzelmann N. Anti-CD20 monoclonal antibody (rituximab) in the treatment of pemphigus. Br J Dermatol. 2005;153(3):620–625. doi: 10.1111/j.1365-2133.2005.06651.x
  53. Tarhini A, Lo E, Minor DR. Releasing the brake on the immune system: Ipilimumab in melanoma and other tumors. Cancer Biother Radiopharm. 2010;25(6):601–613. doi: 10.1089/cbr.2010.0865
  54. Kwok G, Yau TCC, Chiu JW, Tse E, Kwong YL. Pembrolizumab (Keytruda). Hum Vaccin Immunother. 2016;12(11):2777–89. doi: 10.1080/21645515.2016.1199310
  55. Sengupta A. Biological drugs: challenges to access. Penang: Third World Network; 2018. P. 20–5.
  56. Soliman M, Oredein O, Dass CR. Update on Safety and Efficacy of HPV Vaccines: Focus on Gardasil. Int J Mol Cell Med. 2021;10(2):101–113. doi: 10.22088/IJMCM.BUMS.10.2.101
  57. Heineman TC, Cunningham A, Levin M. Understanding the immunology of Shingrix, a recombinant glycoprotein E adjuvanted herpes zoster vaccine. Curr Opin Immunol. 2019;59:42–48. doi: 10.1016/J.COI.2019.02.009
  58. Carvalho T. Personalized anti-cancer vaccine combining mRNA and immunotherapy tested in melanoma trial. Nat Med. 2023;29(10):2379–2380. doi: 10.1038/d41591-023-00072-0
  59. Chocarro-Wrona C, López-Ruiz E, Perán M, Gálvez-Martín P, Marchal JA. Therapeutic strategies for skin regeneration based on biomedical substitutes. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2019;33(3):484–496. doi: 10.1111/jdv.15391
  60. Cai R, Gimenez-Camino N, Xiao M, Bi S, Divito KA. Technological advances in three-dimensional skin tissue engineering. Reviews on Advanced Materials Science. 2023;62(1):20220289. doi: 10.1515/rams-2022-0289
  61. Reijnders CMA, Van Lier A, Roffel S, Kramer D, Scheper RJ, Gibbs S. Development of a Full-Thickness Human Skin Equivalent in Vitro Model Derived from TERT-Immortalized Keratinocytes and Fibroblasts. Tissue Eng Part A. 2015;21(17–18):2448–2459. doi: 10.1089/ten.tea.2015.0139
  62. Vidal Yucha SE, Tamamoto KA, Nguyen H, Cairns DM, Kaplan DL. Human Skin Equivalents Demonstrate Need for Neuro-Immuno-Cutaneous System. Adv Biosyst. 2019;3(1):e1800283. doi: 10.1002/adbi.201800283
  63. Wong R, Geyer S, Weninger W, Guimberteau JC, Wong JK. The dynamic anatomy and patterning of skin. Exp Dermatol. 2016;25(2):92–98. doi: 10.1111/exd.12832
  64. Ковылин Р.С., Алейник Д.А., Федюшкин И.Л. Современные пористые полимерные импланты: получение, свойства, применение. Высокомолекулярные соединения (серия С). 2021;63(1):33–53. [Kovylin RS, Aleinik DA, Fedyushkin IL. Modern porous polymer implants: preparation, properties, application. High molecular weight compounds. 2021;63(1):33–53. (In Russ.)] doi: 10.31857/s2308114721010039
  65. Bishop ES, Mostafa S, Pakvasa M, Luu HH, Lee MJ, Wolf JM, et al. 3-D bioprinting technologies in tissue engineering and regenerative medicine: Current and future trends. Genes Dis. 2017;4(4):185–195. doi: 10.1016/J.GENDIS.2017.10.002
  66. Bertassoni LE, Cecconi M, Manoharan V, Nikkhah M, Hjortnaes J, Cristino AL, et al. Hydrogel bioprinted microchannel networks for vascularization of tissue engineering constructs. Lab Chip. 2014;14(13):2202–2211. doi: 10.1039/c4lc00030g
  67. Kang HW, Lee SJ, Ko IK, Kengla C, Yoo JJ, Atala A. A 3D bioprinting system to produce human-scale tissue constructs with structural integrity. Nat Biotechnol. 2016;34(3):312–319. doi: 10.1038/nbt.3413
  68. Poldervaart MT, Gremmels H, Van Deventer K, Fledderus JO, Öner FC, Verhaar MC, et al. Prolonged presence of VEGF promotes vascularization in 3D bioprinted scaffolds with defined architecture. J Control Release. 2014;184(1):58–66. doi: 10.1016/j.jconrel.2014.04.007
  69. Rice JJ, Martino MM, De Laporte L, Tortelli F, Briquez PS, Hubbell JA. Engineering the Regenerative Microenvironment with Biomaterials. Adv Healthc Mater. 2013;2(1):57–71. doi: 10.1002/adhm.201200197
  70. Hinton TJ, Jallerat Q, Palchesko RN, Park JH, Grodzicki MS, Shue HJ, et al. Three-dimensional printing of complex biological structures by freeform reversible embedding of suspended hydrogels. Sci Adv. 2015;1(9):e1500758. doi: 10.1126/sciadv.1500758
  71. Murphy SV., De Coppi P, Atala A. Opportunities and challenges of translational 3D bioprinting. Nat Biomed Eng. 2020;4(4):370–380. doi: 10.1038/s41551-019-0471-7
  72. Nathoo R, Howe N, Cohen G. Skin Substitutes An Overview of the Key Players in Wound Management. Skin substitutes: an overview of the key players in wound management. 2014;7(10):44–48.
  73. Cervelli V, Brinci L, Spallone D, Tati E, Palla L, Lucarini L, et al. The use of MatriDerm® and skin grafting in post-traumatic wounds. Int Wound J. 2011;8(4):400–405. doi: 10.1111/j.1742-481X.2011.00806.x
  74. Zaulyanov L, Kirsner RS. A review of a bi-layered living cell treatment (Apligraf® ) in the treatment of venous leg ulcers and diabetic foot ulcers. Clin Interv Aging. 2007;2(1):93–98. doi: 10.2147/ciia.2007.2.1.93
  75. Gibson ALF, Holmes JH, Shupp JW, Smith D, Joe V, Carson J, et al. A phase 3, open-label, controlled, randomized, multicenter trial evaluating the efficacy and safety of StrataGraft® construct in patients with deep partial-thickness thermal burns. Burns. 2021;47(5):1024–1037. doi: 10.1016/j.burns.2021.04.021
  76. Hart CE, Loewen-Rodriguez A, Lessem J. Dermagraft: Use in the Treatment of Chronic Wounds. Adv Wound Care (New Rochelle). 2012;1(3):138–141. doi: 10.1089/wound.2011.0282
  77. Ehrenreich M, Ruszczak Z. Update on Tissue-Engineered Biological Dressings. Tissue Eng. 2006;12(9):2407–2424. doi: 10.1089/ten.2006.12.2407
  78. Мелешина А.В., Быстрова А.В., Роговая О.С., Воротеляк Е.А., Васильев А.В., Загайнова Е.В. Тканеинженерные конструкты кожи и использовние стволовых клеток для создания кожных эквивалентов (обзор). СТМ. 2017;9(1):198–218. [Meleshina AV, Bystrova AS, Rogovaya OS, Vorotelyak EA, Vasiliev AV, Zagaynova EV. Tissue-engineered skin constructs and application of stem cells for creation of skin equivalents (Review). Sovremennye Tehnologii v Medicine. 2017;9(1):198–218. (In Russ.)] doi: 10.17691/stm2017.9.1.24
  79. Карамова А.Э., Кубанов А.А., Воротеляк Е.А., Роговая О.С., Чикин В.В., Нефедова М.А., и др. Эффективность живого эквивалента кожи в терапии врожденного буллезного эпидермолиза. Вестник дерматологии и венерологии. 2023;99(6):29–36. [Karamova AE, Kubanov AA, Vorotelyak EA, Rogovaya OS, Chikin VV, Nefedova MA, et al. Efficacy of human living skin equivalent in the treatment of inherited epidermolysis bullosa. Vestnik Dermatologii i Venerologii. 2023;99(6):29–36. (In Russ.)] doi: 10.25208/vdv16249
  80. Min JH, Yun IS, Lew DH, Roh TS, Lee WJ. The use of Matriderm and autologous skin graft in the treatment of full thickness skin defects. Arch Plast Surg. 2014;41(4):330–336. doi: 10.5999/aps.2014.41.4.330
  81. Waltz E. Cosmetics: when biotech is better than nature. Nat Biotechnol. 2022;40(5):626–628. doi: 10.1038/s41587-022-01318-x

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Fig. 1. Classification of medical biotechnologies

Download (172KB)
Indexing metadata
3. Fig. 2. In vivo and ex vivo gene transfer

Download (196KB)
Indexing metadata
4. Fig. 3. The results of IMLYGIC therapy recieved by a 62-year-old patient presented with 2 huge malleolar lessions and metastasis in the lymph nodes caused by acral melanoma. The patient underwent therapy with the IMLYGIC for 2 yerars, achieving complete remission, which was also observed 2 years later after the end of therapy: а — during the initial examination; б — 6 months after the prescription of IMLYGIC; в — 12 months after the prescription of IMLYGIC

Download (143KB)
Indexing metadata
5. Fig. 4. The results of therapy using the dermal substitute Matriderm: а — soft tissue injury of the foot as a result of severe burns; б — applying a Matriderm skin substitute over the wound after sanitization; в — 10 months after the operation. The aesthetic result and the analysis of the skin at the site of transplantation are assessed as good [80]

Download (170KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2024 Vlasova A.V., Martynov A.A., Martynova M.A.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».