Chronic pancreatitis and underlying causes


Cite item

Full Text

About the authors

N A Zhukov

Омская государственная медицинская академия

Омская государственная медицинская академия

V A Akhmedov

Омская государственная медицинская академия

Омская государственная медицинская академия

N V Shirinskaya

Омская государственная медицинская академия

Омская государственная медицинская академия

Е N Zhukova

Омская государственная медицинская академия

Омская государственная медицинская академия

References

  1. Steer M. L., Waxman I., Freedman S. Chronic pancreatitis. N. Engl. J. Med. 1995; 332: 1482-1490.
  2. Riela A., Zinsmeister A. R., Melton L. J. et al. Increasing incidence of pancreatic cancer among women in Olmsted Country, Minnesota, 1940 throught 1988. Mayo Clin. Proc. 1992; 67: 839-845.
  3. Robles-Diaz C., Vargas F., Uscanga L. et al. Chronic pancreatitis in Mexico City. Pancreas 1990; 5: 479-483.
  4. Lin Y., Tamakoshi A., Mutsuno S. et al. Nationwide epidemiological survey of chronic pancreatitis in Japan. J. Gastroenterol. 2000; 35: 136-141.
  5. Chart S. Т., Singer M. V. The problem of classification and staging of chronic pancreatitis: proposal based on current knowledge and its natural history. Scand. J. Gastroenterol. 1994; 29: 949-960.
  6. he Moine O., Devaster J. M., Deviere J. et al. Trypsin activity: A new marker of acute alcoholic pancreatitis. Dig. Dis. Sci. 1994; 39: 2634-2638.
  7. Lieber С. S. Metabolism of ethanol and associated hepatotoxicity. Drug Alcohol Rev. 1991; 10: 175-202.
  8. Лттапп R. W., Muellhaupt В., Croup Z. P. The natural history of pain in alcoholic chronic pancreatits. Gactroenterology 1999; 115: 1132-1140.
  9. Carey M. C., Fitzgerald O. Hyperparathyroidism associated with chronic pancreatitis in a family. Ibid. 1968; 9: 700-703.
  10. Freedman S. D., Sakamoto K., Venu R. P. GP2, the homologue to the renal cast protein uromodtiline is a major component of intraductal plugs in chronic pancreatitis. J. Clin. Invest. 1993; 92(1): 83-90.
  11. Bernard J. P., Aurich Z., Montana G. Inhibition of nucleation and crystal growth of calcium carbonate by human lithostathine. Gastroenterology 1992; 103: 1277-1284.
  12. Apte M. V., Wilson J. S., McCaughan G. W. et al. Ethanol-induced alterations in messenger RNA levels correlate with glandular content of pancreatic enzymes. J. Lab. Clin. Med. 1995; 125: 634-640.
  13. Wilson J. S., Apte M. V., Thomas M. С. et al. Effects of ethanol, acetaldehyde and cholesteryl esters on pancreatic lysosomes. Gut 1992; 33: 1099-1104.
  14. Haber P. S., Wilson J. S., Apte M. V. et al. Chronic ethanol consumption increases the fragility of rat pancreatic zymogen granules. Ibid. 1994; 35: 1474-1478.
  15. Haber P. S., Wilson J. S., Apte M. V. et al. Ethanol oxidation by pancreatic acinar cells is comparable to that of hepatocytes. Gastroenterology 1995; 39: 1351-1366.
  16. Жукова Е. Н. Дифференцированное участие активных медиаторов воспаления нейтрофилов в патогенезе хронического панкреатита. Сиб. журн. гастроэнтерол. и гепатол. 1997; 4-5: 176.
  17. Жукова Е. Н. Лизосомальные ферменты в механизмах обострения хронического панкреатита. Рос. гастроэнтеролог. журн. 1997; 1: 17-19.
  18. Norton L., Apte М., Haiber P. P 450 2EI is present in rat pancreas and is induced by chronic ethanol administration. Gastroenterology 1996; 110: 1280-1285.
  19. Жуков Н. А., Жукова Е. Н., Климова С. К. Механизм активации и роль перекисного окисления липидов при обострении хронического панкреатита. Тер. арх. 1989; 2: 15-18.
  20. Жукова Е. Н. Окислительный стресс при гиперактивации процессов перекисного окисления липидов у больных хроническим рецидивирующим панкреатитом. Там же. 2000: 3:68-71.
  21. Sunamura М., Shibuya К., Yamauchi J. et al. Microcirculatory derangement and ischemia of the pancreas. Nippon Geka Gakkai Zasshi 1999; 100(5): 342-346.
  22. Otamiri Т., Sjodahl R. Oxygen radicals: their role in selected gastrointestinal disorders. Dig. Dis. Sci. 1991; 9(3): 133-141.
  23. Denham W., Yang J., Fink G. et al. TNF but not IL-1 decreases pancreatic acinar cell survival without affecting exocrine function: a study in the perfused human pancreas. J. Surg. Res. 1998; 74(1): 3-7.
  24. Grimble R. F. Nutritional antioxidants and the modulation of inflammation: theory and practice. New Horiz. 1994; 2(2): 175-185.
  25. Niederau C., Schultz H. U., Letko G. Involvement of free radicals in the pathophysiology of chronic pancreatitis: potential of treatment with antioxidant and scavenger substances. Klin. Wschr. 1991; 69(23): 1018-1024.
  26. Kuklinski В., Zimmermann Т., Schweder R. Decreasing mortality in acute pancreatitis with sodium selenite. Clinical results of 4 years antioxidant therapy. Med. Klin. 1995; 90: 36-41.
  27. Ijuin H. Evaluation of pancreatic exocrine function and zinz absorption in alcoholism. Kurumc Med. J. 1998; 45(1): 1-5.
  28. Alvarez C., Bass B. L. Role of transforming growth factor-beta in growth and injury response of the pancreatic duct epithelium in vitro. J. Gastrointest. Surg. 1999; 3(2): 178-184.
  29. Fogar P., Pasqaali C., Basso D. et al. Transforming growth factor beta, fibrogenesis and hyperglycemia in patients with chronic pancreatitis. S. J. Med. 1998; 29(5): 277-287.
  30. Menke A., Geerling I., Giehl K. et al. Transforming growth factor-beta-induced upregulation of transforming growth factorbeta receptors expression in pancreatic regeneration. Biochim. Biophys. Acta 1999; 1449(2): 178-185.
  31. Kazbay K., Tarnasky P. R., Hawes R. H. et al. Increased transforming growth factors beta in pure pancreatic juice in pancreatitis. Pancreas 2001; 22(2): 193-195.
  32. Mutter-Pillasch F., Menke A., Yamaguchi H. et al. TGF beta and the extracellular matrix in pancreatitis. Hepatogastroenterology 1999; 46(29): 2751-2756.
  33. Жукова Е. Н. Поли- и мононуклеарные фагоциты в механизмах хронического воспаления и развития фиброза в поджелудочной железе. Там же. 1999; 3: 28-31.
  34. Talamini G., Bassi С., Falconi M. et al. Alcohol and smoking as risk factors in chronic pancreatitis and pancreatic cancer. Dig. Dis. Sci. 1999; 44: 1301-1311.
  35. Bynum T. E., Solomon T. E., Johnson L. R. et al. Inhibition of exocrine pancreatic secretion in man by cigarette smoking. Gut 1972; 13: 361-365.
  36. Mithofer K., Fernandez-Del Castillo C., Frick T. W. et al. Acute hypercalcemia causes acute pancreatitis and ectopic trypsinogen activation in the rat. Gastroenterology 1995; 109: 239- 246.
  37. Cope O., Culver P. J., Mixer Jr. С. G. et al. Pancreatitis, a diagnostic clue to hyperparathyroidism. Am. Surg. 1957; 145: 857-863.
  38. Bess M. A., Edis A. J., van Heerden J. A. Hyperparathyroidism and pancreatitis. Chance or a causal association? J. A. M. A. 1980; 243: 246-247.
  39. Merkord J., Jonas L., Weber H. et al. Acute interstitial pancreatitis in rats induced by dibutylin dichloride (DBTC): pathogenesis and natural course of lesions. Pancreas 1997; 112: 1664-1672.
  40. Merkord J., Weber H., Sparmann G. et al. The course of pancreatic fibrosis induces by dibutylin dichloride (DBTC). Ann. N. Y. Acad. Sci. 1999; 880: 231-237.
  41. Leivh M. M., Hoppe-Seyler P., Gerok W. Origin and development of exocrine pancreatic insufficiency in experimental renal failure. Gut 1994; 35: 401-407.
  42. Dinoso V. P. Jr., Mitrthy S. N.. Saris A. L. et al. Gastric and pancreatic function in patients with end-stage renal disease. J. Clin. Gastroenterol. 1982; 4: 321-324.
  43. Feldstein J. D., Johnson F. R., Kallick С. A. et al. Acute hemorragic pancreatitis and pseudocyst due to mumps. Ann. Surg. 1974; 180: 85-88.
  44. Imrie С. W., Ferguson J. C., Sommerville R. G. Coxsackie and mumpsvirus infection in a prospective study of acute pancreatitis. Gut 1977; 18: 53-56.
  45. Kibrick S., Benirschke K. Severe generalised disease occurring in newborn period and due to infection with coxsackie virus, group B. Pediatrics 1958; 22: 857-875.
  46. Capner P., Lendrum R., Walker G. Viral antibody studies in pancreatic disease. Ibid. 1975; 16: 886-870.
  47. Ozsvar Z., Deak J., Pap A. Possible role of coxsackie-B virus infection in pancreatitis. Int. J. Pancreatol. 1992; 11: 105- 108.
  48. Ectors N., Maillet В., Aerts R. et al. Non-alcoholic duct destructive chronic pancreatitis. Gut 1997; 41: 263-268.
  49. Gschwantler M., Kogelbauer G., Klose W. et al. The pancreas as a site of granulomatous inflammation in Crohn's disease. Gastroenterology 1995; 108: 1246-1249.
  50. Cavalimi G. Is chronic pancreatitis a primary disease of the pancreatic ducts? A new pathogenetic hypotesis. Ital. J. Gastroenterol. 1993; 25: 400-407.
  51. Kawaguchi K., Koize M., Tsuruta K. et al. Lymphoplasmacytic sclerosing pancreatitis with cholangitis: a variant of primary sclerosing cholangitis extensively involving pancreas. Hum. Pathol. 1991; 22: 387-391.
  52. Erkelens G. W., Vleggaar F. P., Lesterhuis W. et al. Sclerosing pancreato-cholangitis responsive to steroid therapy. Lancet 1999; 354: 43-44.
  53. Frulloni L., Bovo P., Brunelli S. et al. Elevated serum levels of antibodies to carbonic anhydrase I and II in patients with chronic pancreatitis. Pancreas 2000; 20: 382-388.
  54. Kino-Ohsaki J., Nishimori I., Morita M. et al. Serum antibodies to carbonic anhydrase I and II in patients with idiopathic chronic pancreatitis and Sjogren's syndrome. Gastroenterology. 1996; 110: 1579-1586.
  55. Layer P., Yamamoto H., Kalthoff L. et al. The different courses of early- and late-onset idiopathic and alcoholic chronic pancreatitis. Gastroenterology 1994; 107: 1481 - 1487.
  56. Pfutzer R. H., Barmada M. M., Brunskil A. P. SPINK1/PSTI polymorphisms act as disease modifiers in familial and idiopathic of chronic pancreatitis. Gastroenterology 2000; 119: 615-623.
  57. Rossi L., Whitcomb D. C., Ehrlich G. D. et al. Lack of R117H mutation in the cationic trypsinogen gene in patients with tropical pancreatitis from Bangladesh. Ibid. 1998; 17: 278- 280.
  58. Witt H., Luck W., Hennies H. С. et al. Mutations in the gene encoding the serine protease inhibitor, Kazal type I are associated with chronic pancreatitis. Nat. Genet. 2000; 25: 213- 216.
  59. Walsh T. N.. Rode J., Theis B. A. et al. Minimal change chronic pancreatitis. Gut 1992; 33: 1566-1571.
  60. Araki Т., Ueria M., Ogawa К et al. Histological pancreatitis in end-stage renal disease. Int. J. Pancreatol. 1992; 12: 263-269.
  61. Comfort M.. Steinberg A. Pedigree of a family with hereditary relapsing pancreatitis. Gastroenterology 1952; 21: 54-63.
  62. Whitcomb D. С. Genetic predispositions to acute and chronic pancreatitis. Med. Clin. N. Am. 2000; 84: 531-547.
  63. Жукова E. Н. Дефицит ингибитора протеаз а I-антитрипсина - фактор риска в развитии и обострении различных клинических форм хронического панкреатита. Рос. гастроэнтеролог, журн. 1998; 2: 10-12.
  64. Жукова Е. Н. Сывороточный интерлейкин-8 в различные периоды течения хронического рецидивирующего панкреатита и его участие в патогенезе заболевания. Там же. 2001; 3: 15-18.
  65. Heath D. I., Cruickshank A., Gudgeon М. et al. Role of interleukin-6 in mediating the acute phase protein response and potential as an early means of severity assessment in acute pancreatitis. Gut 1993; 34: 41-43.
  66. Aspinall R. J., Lemoine N. R. Gene therapy for pancreatic and biliary malignancies. Ann. Oncol. 1999; 10: 188-192.
  67. Di Sebastiano P., di Moda F. F., di Febbo С. et al. Expression of interleukin 8 (IL-8) and substance P in human chronic pancreatitis. Gut 2000; 47(3): 423-428.
  68. Aleynik S. I., Leo M. A., Aleynik M. K. et at. Alcohol-induced pancreatic oxidative stress: protection by phospholipid repletion. Free Radic. Biol. Med. 1999; 26(5): 609-619.
  69. Ashizawa N., Niigaki M., Hamamoto N. et al. The morphological changes of exocrine pancreas in chronic pancreatitis. Histol. Histopathol. 1999; 14(2): 539-552.
  70. Friess H., Zhu Z. W., di Mola F. F. et al. Nerve growth factor and its light-affinity receptor in chronic pancreatitis. Ann. Surg. 1999; 230(5): 615-624.
  71. Zhu Z. W., Friess H., Wang L. et al. Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) is upregulated and associated with pain in chronic pancreatitis. Dig. Dis. Sci. 2001; 46(8): 1633-1639.
  72. Glasbrenner В., Adler G. Evaluating pain and the quality of life in chronic pancreatitis. Int. J. Pancreatol. 1997; 22(3): 163- 170.
  73. Manes G., Pieramico O., Uomo G. Pain in chronic pancreatitis: recent pathogenetic findings. Minerva Gastroenterol. Dietol. 1992; 38(3): 137-143.
  74. Rutsky E. A., Rdoards M., Van Dyke J. A. et al. Acute pancreatitis in patients with end-stage renal disease without transplantation. Arch. Intern. Med. 1986; 146: 1741-1745.
  75. Shah R. J., Martin S. P. Endoscopic retrograde cholangiopancreatography in the diagnosis and management of pancreatic disease. Curr. Gastroenterol. Rev. 2000; 2: 133-145.
  76. Sherman S. Idiopathic acute recurrent pancreatitis: endoscopic approach to diagnosis and therapy. Gastrointest. Endosc. 1992; 38: 261.
  77. Sherman S., Jamidar P., Reber H. Idiopathic acute pancreatitis: endoscopic approach to diagnosis and treatment. Am. J. Gastroenterol. 1993; 88: 1541.
  78. Ахмедов В. А., Жуков Я. А. Повышение базального давления сфинктера Одди - причина развития панкреато-холедохо-пузырного и билиарно-панкреатического рефлюксов. Рос. гастроэнтеролог, журн. 2000. 4: 59-64.
  79. Sherman S., Troiano F. P., Hawes R. H. et al. Frequency of abnormal sphincter of Oddi manometry compared with the clinical suspicion of sphincter of Oddi dysfunction. Ibid. 1991; 86: 586-589.
  80. Kuo W. H., Pasricha P., Kalloo A. The role of sphincter ot Oddi Surg manometry in the diagnosis and therapy of pancreatic disease. Gastrointest. Endosc. Clin. N. Am. 1998; 8: 79-85.
  81. Guelrud M., Plaz J., Mendoza S. et al. Endoscopic treatment in type II pancreatic sphincter dysfunction Gastrointest. Endoscopy 1995; 52: 398.
  82. Freeman M. L., Nelson D. В., Sherman S. et al. Complications of endoscopic biliary sphincterotomy. N. Engl. J. Med. 1996: 335: 909-918.
  83. Tarnasky P., Pa/esch Y., Cunningham J. et al. Pancreatic stenting prevent pancreatitis after biliary sphincterotomy in patients with sphincter of Oddi dysfunction. Gastroenterology 1998; 115: 1518-1524.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2003 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
 
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».