Клинико-диагностическая ценность включения ПЦР-исследования крови в традиционный алгоритм идентификации возбудителей инфекционного эндокардита: когортное исследование 124 пациентов
- Авторы: Котова Е.О.1,2, Домонова Э.А.3, Кобалава Ж.Д.1,2, Моисеева А.Ю.1, Писарюк А.С.1,2, Сильвестрова О.Ю.3, Караулова Ю.Л.1,2, Акимкин В.Г.3
-
Учреждения:
- ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»
- ГБУЗ «Городская клиническая больница им. В.В. Виноградова» Департамента здравоохранения г. Москвы
- ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора
- Выпуск: Том 95, № 1 (2023)
- Страницы: 23-31
- Раздел: Оригинальные статьи
- URL: https://journals.rcsi.science/0040-3660/article/view/133007
- DOI: https://doi.org/10.26442/00403660.2023.01.202042
- ID: 133007
Цитировать
Полный текст
Аннотация
При подозрении на инфекционный эндокардит (ИЭ) определение этиологии имеет принципиальное значение для верификации заболевания и назначения эффективной терапии. Микробиологические методы диагностики являются основными, но зачастую они должны быть дополнены исследованиями, независимыми от культуральных свойств выявляемых патологических агентов.
Цель. Изучение диагностического преимущества и ценности параллельного внедрения молекулярно-биологических методов (полимеразная цепная реакция – ПЦР, секвенирование) в дополнение к микробиологическому исследованию образцов цельной венозной крови при ИЭ.
Материалы и методы. Обследованы 124 пациента с достоверным или вероятным ИЭ (DUKE 2015), госпитализированных в ГБУЗ «ГКБ им. В.В. Виноградова» (2015–2021 гг.). Всем пациентам проводилось параллельное микробиологическое (культуральное) и молекулярно-биологическое (ПЦР или ПЦР с последующим секвенированием) исследования образцов цельной венозной крови.
Результаты. Внедрение раннего параллельного ПЦР-исследования в алгоритм этиологической диагностики ИЭ позволило получить дополнительное преимущество у 43/124 (34,7%) пациентов, позволившее исключить недостоверные результаты при определении комменсалов кожных покровов CoNS и нетипичных для ИЭ патогенов или контаминацию и идентифицировать истинные возбудители, а также впервые выделить этиопатогенетического возбудителя при отрицательном микробиологическом исследовании. Показано, что при ИЭ, ассоциированном с CoNS, связь с заболеванием подтверждена при ПЦР-исследовании у 21,4% (3/14) и опровергнута у 71,4% (10/14) пациентов. Совпадение результатов микробиологического и ПЦР-исследования образцов крови получено только у 35/95 (36,8%) больных. Положительные результаты ПЦР-исследования крови биологического материала при отрицательных результатах культурального исследования получены у 22/51 (43,1%) пациентов, из них у 2/22 (9,0%) удалось подтвердить наличие ДНК Bartonella spp. Представленный комплексный алгоритм позволил значительно увеличить возможность прижизненной идентификации возбудителя в крови от 58,9 до 76,6%. ИЭ с неустановленной этиологией имелся у 29/124 (23,4%) обследованных. Параллельное ПЦР-исследование позволило провести своевременную коррекцию антибактериальной терапии у 43/124 (34,7%) пациентов.
Заключение. Обоснованно расширение показаний для применения ПЦР-исследования, в первую очередь образцов цельной венозной крови, не только при ИЭ с отрицательными результатами микробиологического исследования, но и в качестве метода-контроля за достоверностью получаемых результатов традиционных (культуральных) методов диагностики.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Елизавета Олеговна Котова
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»; ГБУЗ «Городская клиническая больница им. В.В. Виноградова» Департамента здравоохранения г. Москвы
Автор, ответственный за переписку.
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-9643-5089
канд. мед. наук, доц. каф. внутренних болезней с курсом кардиологии и функциональной диагностики им. В.С. Моисеева Медицинского института
Россия, Москва; МоскваЭльвира Алексеевна Домонова
ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0001-8262-3938
канд. биол. наук, рук. научной группы разработки новых методов диагностики оппортунистических и папилломавирусных инфекций отд. молекулярной диагностики и эпидемиологии
Россия, МоскваЖанна Давидовна Кобалава
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»; ГБУЗ «Городская клиническая больница им. В.В. Виноградова» Департамента здравоохранения г. Москвы
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-5873-1768
чл.-кор. РАН, д-р мед. наук, проф., зав. каф. внутренних болезней с курсом кардиологии и функциональной диагностики им. В.С. Моисеева Медицинского института
Россия, Москва; МоскваАлександра Юрьевна Моисеева
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0003-0718-5258
аспирант 2-го года каф. внутренних болезней с курсом кардиологии и функциональной диагностики им. В.С. Моисеева Медицинского института
Россия, МоскваАлександра Сергеевна Писарюк
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»; ГБУЗ «Городская клиническая больница им. В.В. Виноградова» Департамента здравоохранения г. Москвы
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0003-4103-4322
канд. мед. наук, доц. каф. внутренних болезней с курсом кардиологии и функциональной диагностики им. В.С. Моисеева Медицинского института; врач-кардиолог отд-ния реанимации и интенсивной терапии
Россия, Москва; МоскваОльга Юрьевна Сильвестрова
ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0001-8412-9765
науч. сотр. научной группы разработки новых методов диагностики оппортунистических и папилломавирусных инфекций отд. молекулярной диагностики и эпидемиологии
Россия, МоскваЮлия Леонидовна Караулова
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»; ГБУЗ «Городская клиническая больница им. В.В. Виноградова» Департамента здравоохранения г. Москвы
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0003-4799-2740
д-р мед. наук, доц., проф. каф. внутренних болезней с курсом кардиологии и функциональной диагностики им. В.С. Моисеева Медицинского института
Россия, Москва; МоскваВасилий Геннадьевич Акимкин
ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора
Email: mauschen@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0003-4228-9044
акад. РАН, д-р мед. наук, проф., дир.
Россия, МоскваСписок литературы
- Habib G, Lancellotti P, Antunes MJ, et al. 2015 ESC Guidelines for the management of infective endocarditis: the Task Force for the Management of Infective Endocarditis of the European Society of Cardiology (ESC). Endorsed by: European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS), the European Association of Nuclear Medicine (EANM). Eur Heart J. 2015;36(44):3075-128. doi: 10.1093/eurheartj/ehv319
- Демин А.А., Кобалава Ж.Д., Скопин И.И., и др. Инфекционный эндокардит и инфекция внутрисердечных устройств у взрослых. Клинические рекомендации МЗ РФ. Российский кардиологический журнал. 2022;27(10):5233 [Demin AA, Kobalava ZD, Skopin II, et al. Infectious endocarditis and infection of intracardiac devices in adults. Clinical guidelines 2021. Russian Journal of Cardiology. 2022;27(10):5233 (in Russian)]. doi: 10.15829/1560-4071-2022-5233
- Котова Е.О., Домонова Э.А., Кобалава Ж.Д., и др. Современные тренды этиологической диагностики инфекционного эндокардита. Рациональная фармакотерапия в кардиологии. 2021;17(1):153-64 [Kotova EO, Domonova EA, Kobalava ZhD, et al. Modern trends in identification of causative agents in infective endocarditis. Rational Pharmacotherapy in Cardiology. 2021;17(1):153-64 (in Russian)]. doi: 10.20996/1819-6446-2021-02-14
- Liesman RM, Pritt BS, Maleszewski JJ, Patel R. Laboratory diagnosis of infective endocarditis. J Clin Microbiol. 2017;55(9):2599-608. doi: 10.1128/JCM.00635-17
- Fournier PE, Gouriet F, Casalta JP, et al. Blood culture-negative endocarditis. Medicine. 2017;47(96):8392. doi: 10.1097/MD.0000000000008392
- Geissdorfer W, Moos V, Moter A, et al. High frequency of Tropheryma whipplei in culturenegative endocarditis. J Clin Microbiol. 2012;50(2):216-22. doi: 10.1128/JCM.05531-11
- Miller RJ, Chow B, Pillai D, Church D. Development and evaluation of a novel fast broad-range 16S ribosomal DNA PCR and sequencing assay for diagnosis of bacterial infective endocarditis: multi-year experience in a large Canadian healthcare zone and a literature review. BMC Infect Dis. 2016;16:146. doi: 10.1186/s1287 9-016-1476-4
- Котова Е.О., Домонова Э.А., Кобалава Ж.Д., и др. Инфекционный эндокардит неустановленной этиологии: возможности преодоления и роль микробиологистики. Кардиология. 2021;61(1):87-97 [Kotova EO, Domonova EA, Kobalava ZhD, и др. Infective Endocarditis With Unknown Etiology: Possibilities of Conquering and Role of Microbiologistics. Kardiologiia. 2021;61(1):87-97 (in Russian)]. doi: 10.18087/cardio.2021.1.n1218
- Godfrey R, Curtis S, Schilling W, James P. Blood culture negative endocarditis in the modern era of 16S rRNA sequencing. Clin Med. 2020;20(40):412-6. doi: 10.7861/clinmed.2019-0342
- Kuhn C, Disque C, Muhl H, et al. Evaluation of Commercial Universal rRNA Gene PCR plus Sequencing Tests for Identification of Bacteria and Fungi Associated with Infectious Endocarditis. J Clin Microbiol. 2011;8(49):2919-23. doi: 10.1128/JCM.00830-11
- El-Kholy AA, El-Rachidi NG, El-Enany M, et al. Impact of serology and molecular methods on improving the microbiologic diagnosis of infective endocarditis in Egypt. Infection. 2015;43(5):523-9. doi: 10.1007/s15010-015-0761-2
- Habib G, Erba PA, Iung B, et al. Clinical presentation, aetiology and outcome of infective endocarditis. Results of the ESC-EORP EURO-ENDO (European infective endocarditis) registry: a prospective cohort study. Eur Heart J. 2019;40(39):3222-32. doi: 10.1093/eurheartj/ehz620
- Домонова Э.А., Творогова М.Г., Подколзин А.Т., и др. Взятие, транспортировка, хранение биологического материала для ПЦР-диагностики: Методические рекомендации. М.: ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, 2021 [Domonova EA, Tvorogova MG, Podkolzin AT, et al. Vziatie, transportirovka, khranenie biologicheskogo materiala dlia PTsR-diagnostiki: Metodicheskie rekomendatsii. Moscow: Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, 2021 (in Russian)]. doi: 10.36233/978-5-6045286-6-2
- Armstrong K, Kuhn TC, Dufner M, et al. The diagnostic benefit of 16S rDNA PCR examination of infective endocarditis heart valves: a cohort study of 146 surgical cases confirmed by histopathology. Clin Res Cardiol. 2021;110:332-42. doi: 10.1007/s00392-020-01678-x
- Котова Е.О., Домонова Э.А., Караулова Ю.Л. и др. Инфекционный эндокардит: значение молекулярно-биологических методов в этиологической диагностике. Терапевтический архив. 2016;88(11):62-7 [Kotova EO, Domonova EA, Karaulova YuL, et al. Infective endocarditis: Importance of molecular biology techniques in the etiological diagnosis. Terapevticheskii Arkhiv (Ter. Arkh.). 2016;88(11):62-7 (in Russian)]. doi: 10.17116/terarkh2016881162-67
- Данилов А.И., Алексеева И.В., Аснер Т.В., и др. Реальная практика терапии инфекционного эндокардита в РФ: промежуточные результаты исследования МАЭСТРО. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2013;15(2):18-9 [Danilov AI, Alekseeva IV, Asner TV, et al. Real practice of therapy for infective endocarditis in the Russian Federation: interim results of the MAESTRO study. Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. 2013;15(2):18-9 (in Russian)].
- Peeters B, Herijgers P, Beuselinck K, et al. Added diagnostic value and impact on antimicrobial therapy of 16S rRNA PCR and amplicon sequencing on resected heart valves in infective endocarditis: a prospective cohort study. Clin Microbiol Infect. 2017;23(11):888e1-5. doi: 10.1016/j.cmi.2017.06.008
- Halavaara M, Martelius T, Jarvinen A, et al. Impact of pre-operative antimicrobial treatment on microbiological findings from endocardial specimens in infective endocarditis. Eur J Clin Microbiol Infect. 2019;38(3):497-503. doi: 10.1007/s1009 6-018-03451-5
- Kemp M, Bangsborg J, Kjerulf A, et al. Advantages and Limitations of Ribosomal RNA PCR and DNA Sequencing for Identification of Bacteria in Cardiac Valves of Danish Patients. Open Microbiol J. 2013;7:146-51. doi: 10.2174/1874285801307010146
- Bast A, Dohmen PM, Podbielski A, Warnke P. Rapid Microbiological Diagnostics from Explanted Heart Valves by a Multiplex PCR Assay. J Clin Microbiol. 2019;57(2):e01575-18. doi: 10.1128/JCM.01575-18
- Kim MS, Chang J, Kim MN, et al. Utility of a Direct 16S rDNA PCR and Sequencing for Etiological Diagnosis of Infective Endocarditis. Ann Lab Med. 2017;37(6):505-10. doi: 10.3343/alm.2017.37.6.505
- Boujelben I, Gdoura R, Hammami A. A broad-range PCR technique for the diagnosis of infective endocarditis. Braz J Microbiol. 2018;49(3):534-43. doi: 10.1016/j.bjm.2017.03.019
- Voldstedlund M, Pedersen L, Baandrup U, et al. Broad-range PCR and sequencing in routine diagnosis of infective endocarditis. APMIS. 2008;116(3):190-8. doi: 10.1111/j.1600-0463.2008.00942.x
Дополнительные файлы
