Metagenomic profiling of the soil microbiological community in the area of impact of the tailings dump of the Urup mining and processing plant (Karachay-Cherkess Republic)

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

In recent years, the use of metagenomic analysis of the microbial community has been developed to monitor changes related to soil contamination with heavy metals. The paper studies the effect of extremely high concentrations of heavy metals on the microbiocenosis of mountain meadow chernozem soil (Eutric Mollic Leptosol) in the zone of impact of the tailings dam of the Urup mining and Processing Plant. As a result of the research, the authors compared the metagenomes of soil susceptible to polymetallic contamination and uncontaminated (background) soil. The content of nine heavy metals in the soil at the monitoring site exceeded the background value by 6 to 63 times. As a result of the analysis of the metagenome of contaminated soil, indicator groups of microorganisms associated with polymetallic contamination have been established. However, heavy metal pollution has caused obvious changes in the structure of the microbial community, rather than in microbial diversity, since the same physico-chemical properties of soils control microbiomes. This study confirms the complexity of the microbial response to complex polymetallic contamination and will be useful in the future to study the long-term response and resistance mechanism of the soil microbiome. As a result of the analysis of the metagenome of soil contaminated with heavy metals near the tailing dump, minor changes in the relative abundance of bacterial groups associated with polymetallic contamination were revealed. A decrease in abundance was observed for several minor genera of the classes of actinobacteria Thermoleophilia and Rubrobacteria, namely Conexibacter, Capillimicrobium, Paraconexibacter and Baekduia. However, the overall biodiversity of microbiocenosis did not decrease.

About the authors

E. S. Khrapai

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Email: KaterinaP1996@mail.ru
Rostov-on-Don, 344090 Russia

S. I. Kolesnikov

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

A. A. Kuzina

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

K. Sh. Kazeev

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

T. V. Minnikova

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

K. A. Demin

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

Yu. N. Kocharovskaya

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University; Skryabin Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms of the Russian Academy of Sciences

Rostov-on-Don, 344090 Russia; Pushchino, 142290, Russia

Ya. A. Delegan

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University; Skryabin Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms of the Russian Academy of Sciences

Rostov-on-Don, 344090 Russia; Pushchino, 142290, Russia

A. G. Bogun

Skryabin Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms of the Russian Academy of Sciences

Pushchino, 142290, Russia

T. M. Minkina

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

S. N. Sushkova

Ivanovsky Academy of Biology and Biotechnology, Federal University

Rostov-on-Don, 344090 Russia

References

  1. Алиева И.В., Бабьева И.П., Бызов Б.А., Гузеев В.С., Добровольская Т.Г., Звягинцев Д.Г., Зенова Г.М. и др. Методы почвенной микробиологии и биохимии / Под ред. Звягинцева Д.Г. М.: Изд-во МГУ, 1991. С. 132–140
  2. Даденко Е.В., Казеев К.Ш., Колесников С.И. Методы определения ферментативной активности почв. Ростов-на-Дону: Южный федеральный университет 2021. 176 с.
  3. Евстегнеева Н.А., Колесников С.И., Тимошенко А.Н., Минникова Т.В., Цепина Н.И., Казеев К.Ш. Оценка экотоксичности таллия по биологическим свойствам почв // Почвоведение. 2024. № 3. С. 470–481.
  4. Иванова Е.А., Першина Е.В., Карпова Д.В., Тхакахова А.К., Железова А.Д., Рогова О.Б., Андронов Е.Е. Прокариотные сообщества почвогрунтов отвалов Курской магнитной аномалии // Экологическая генетика. 2020. Т. 18. С. 331–342. https://doi.org/10.17816/ecogen17901
  5. Казеев К.Ш., Вальков В.Ф., Колесников С.И. Атлас почв юга России. Ростов-на-Дону: Эверест, 2010. 128 с.
  6. Растанина Н.К., Голубев Д.А., Шаврин Е.И. Состояние экосферы и здоровья населения в границах влияния закрытого горного предприятия Приморья // Горный информационно-аналитический бюл. (научно-технический журнал). 2021. № 3. С. 114–127.
  7. Сает Ю.Е., Ревич Б.А., Янин Е.П., Смирнова Р.С., Башаркевич И.Л., Онищенко Т.Л., Павлова Л.Н. и др. Геохимия окружающей среды. М.: Недра, 1990. 335 с.
  8. Семенова И.Н., Рафикова Ю.С., Ильбулова Г.Р. Воздействие предприятий горнорудного комплекса башкирского зауралья на состояние природной среды и здоровье населения прилегающих территорий // Фундаментальные исследования. 2011. № 1. С. 29–34.
  9. Терехова В.А. Биотестирование экотоксичности почв при химическом загрязнении: современные подходы к интеграции для оценки экологического состояния (обзор) // Почвоведение. 2022. № 5. С. 586–599. https://doi.org/10.31857/S0032180X22050094
  10. Терехова В.А., Прудникова Е.В., Кирюшина А.П., Карпухин М.М., Плеханова И.О., Якименко О.С. Фитотоксичность тяжелых металлов в дерново-подзолистых почвах разной степени окультуренности // Почвоведение. 2021. №. 6. С. 757–768.
  11. Юрак В.В., Апакашев Р.А., Лебзин М.С., Малышев А.Н. Оценка эффективности и экологичности сорбент-ориентированного метода восстановления загрязненных тяжелыми металлами и металлоидами почв // Горные науки и технологии. 2023. № 4. С. 327–340.
  12. Юркевич Н.В., Шавекина А.Ш., Гаськова О.Л., Артамонова В.С., Бортникова С.Б., Волынкин С.С. Аутигенный барит в техногенных отвалах: минералого-геохимические данные и результаты физико-химического моделирования // Георесурсы. 2024. Т. 26. № 1. С. 38–51.
  13. Bai X. T., Wang J., Dong H., Chen J.-M., Ge Y. Relative importance of soil properties and heavy metals/metalloids to modulate microbial community and activity at a smelting site // J. Soils Sediment. 2020. V. 21. P. 1–12. https://doi.org/10.1007/s11368-020-02743-8
  14. Bilal S., Khan A. L., Shahzad R., Kim Y. H., Imran M., Khan M. J., et al. Mechanisms of Cr(VI) resistance by endophytic Sphingomonas sp. lk11 and its cr(vi) phytotoxic mitigating effects in soybean (Glycine Max l.) // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2018. V. 164. P. 648–658. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2018.08.043
  15. Caeiro S., Costa M.H., Ramos T.B., Fernandes F., Silveira N., Coimbra A., Painho M. Assessing heavy metal contamination in Sado Estuary sediment: an index analysis approach // Ecol. Indic. 2005. V. 5. P. 151–169.http://dx.doi.org/10.1016/j.ecolind.2005.02.001
  16. Chen L., Wang J., Beiyuan J., Guo X., Wu H., Fang L. Environmental and health risk assessment of potentially toxic trace elements in soils near uranium (U) mines: A global meta-analysis. // Sci. Total Environ. 2021. V. 816 P. 151556. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.151556
  17. Gao S., Li S., Cao S., Zhong H., He Z. Disclosing the key role of Fe/As/Cu in community co-occurrence and microbial recruitment in metallurgical ruins // J. Hazard. Mater. 2024 V. 480. P. 135889. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2024.135889
  18. Gao X., Chen C.T.A. Heavy metal pollution status in surface sediments of the coastal Bohai Bay // Water Res. 2012. V. 46. P. 1901–1911. https://doi.org/10.1016/j.watres.2012.01.007
  19. Ghosh A., Sah D., Chakraborty M., Rai, J.P.N. Bio-mediated detoxification of heavy metal contaminated soil and phytotoxicity reduction using novel strain of Brevundimonas vancanneytii SMA3 // Heliyon. 2023. V. 9. P. e22344.
  20. Gołebiewski M., Deja-Sikora E., Cichosz M., Tretyn, A., Wrobel B. 16S rDNA pyrosequencing analysis of bacterial community in heavy metals polluted soils // Microb. Ecol. 2014. 67. P. 635-47. https://doi.org/10.1007/s00248-013-0344-7
  21. Guo H., Nasir M., Lv J., Dai Y., and Gao J. Understanding the variation of microbial comunity in heavy metals contaminated soil using high throughput sequencing // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2017. V. 144. P. 300–306. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2017.06.048
  22. Håkanson L. An ecological risk index for aquatic. Pollution control: A sedimentological approach” // Water Res. 1980. V. 14. P. 975–1001. http://dx.doi.org/10.1016/0043-1354(80)90143-8
  23. Halter D., Cordi A., Gribaldo S., Gallien S., Goulhen-Chollet F., Heinrich Salmeron A., et al. Taxonomic and functional prokaryote diversity in mildly arsenic-contaminated sediments // Res. Microbiol. 2011. V. 162. P. 877–887. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2011.06.001
  24. Hou X., Han H., Tigabu M., Cai L., Meng F., Liu A., et al. Changes in soil physico-chemical properties following vegetation restoration mediate bacterial community composition and diversity in Changting. China // Ecol. Eng. 2019. V. 138. P. 171–179. https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2019.07.031
  25. https://benlangmead.github.io/aws-indexes/k2
  26. https://soil-db.ru/map?lat=44.0116&lng=41.1977&zoom=12
  27. Hu X., Liu X., Zhang S., Yu C. Nitrogen-cycling processes under long-term compound heavy metal (loids) pressure around a gold mine: Stimulation of nitrite reduction // J. Environ Sci. 2025. V. 147. P. 571–581. https://doi.org/10.1016/j.jes.2023.12.027
  28. IUSS Working Group. World Reference Base for Soil Resources. International soil classification system for naming soils and creating legends for soil maps. 4th edition published in 2022 by the International Union of Soil Sciences (IUSS), Vienna, Austria. 2022.
  29. Jones D.S., Lapakko K.A., Wenz Z.J., Olson M.C., Roepke E.W., Sadowsky M.J., Bailey J.V. Novel microbial assemblages dominate weathered sulfide-bearing rock from copper-nickel deposits in the Duluth complex, Minnesota, USA // Appl. Environ. Microbiol. 2017. V. 83. P. e00909-17. https://doi.org/10.1128/aem.00909-17
  30. Kazapoe R.W., Amuah E.E.Y., Dankwa P., Ibrahim K., Mville B.N., Abubakari S., Bawa N. Compositional and source patterns of potentially toxic elements (PTEs) in soils in southwestern Ghana using robust compositional contamination index (RCCI) and k-means cluster analysis // Environ. Chall. 2021. V. 5. P. 100248. https://doi.org/10.1007/s10653-019-00404-5
  31. Kim C.S., Liu Z., Peng X., Qin K., Huang J., Niu J., Peng F. Paraconexibacter antarcticus sp. nov., a novel actinobacterium isolated from Antarctic tundra soil // IJSEM. 2022. V. 72. P. 005647. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.005647
  32. Kolesnikov S.I., Evstegneeva N.A, Minnikova T.V., Timoshenko A.N., Tsepina N.I., Kazeev K.Sh. Assessment of ecotoxicity of tellurium in soils of contrasting properties. // Emerg. Contam. 2024. V. 10. P. 100334. https://doi.org/10.1016/j.emcon.2024.100334
  33. Kumari B., Chandra R. Benzo [a] pyrene degradation from hydrocarbon-contaminated soil and their degrading metabolites by Stutzerimonas stutzeri (LOBP-19A) // Waste Manage. 2023. V. 1. P. 115–127. http://dx.doi.org/10.1016/j.wmb.2023.07.006
  34. Langmead B., Salzberg S.L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature methods. 2012. V. 9. P. 357–359.
  35. Li S., Zhao B., Jin M., Hu L., Zhong H., He Z. A comprehensive survey on the horizontal and vertical distribution of heavy metals and microorganisms in soils of a Pb/Zn smelter // J. Hazard. Mater. 2020. V. 400. P. 123255. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2020.123255
  36. Mondal N.K., Dey U., Ghosh S., Datta J. K. Soil enzyme activity under arsenic-stressed area of Purbasthali. West Bengal, India. Arch. Agron // Soil Sci. 2014. V. 61. P. 73–87. https://doi.org/10.1080/03650340.2014.922178
  37. Mulet M., Gomila M., Lalucat J., Bosch R., Rossello-Mora R., García-Valdes E. Stutzerimonas decontaminans sp. nov. isolated from marine polluted sediments // Syst. Appl. Microbiol. 2023. V. 46. P. 126400. https://doi.org/10.1016/j.syapm.2023.126400
  38. Okewale I.A., Grobler H. Assessment of heavy metals in tailings and their implications on human health // Geosystems and Geoenvironment. 2023. V. 2. P. 100203. http://dx.doi.org/10.1016/j.geogeo.2023.100203
  39. Oksanen J., Blanchet F. G., Kindt R., Legendre P., Minchin P. R., O’hara R. B., Oksanen M. J. et al. Package ‘vegan’ Community ecology package, version. 2013. V. 2. P. 1–295.
  40. Pejman A., Bidhendi G.N., Ardestani M., Saeedi M., Baghvand A. A new index for assessing heavy metals contamination in sediments: A case study // Ecol. Indic. 2015. V. 58. P. 365–373. http://dx.doi.org/10.1016/j.ecolind.2015.06.012
  41. Pereira L.B., Vicentini R., Ottoboni L.M. Changes in the bacterial community of soil from a neutral mine drainage channel // PLoS One. 2014. V. 9. P. e96605. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0096605
  42. Qiao Z., Cao M., Wang D., Liao S., Wang G. Sphingosinicella humi sp. nov., isolated from arsenic-contaminated farmland soil and emended description of the genus Sphingosinicella // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2019. V. 69. P. 498–503. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.003186
  43. Rungsihiranrut A., Muangchinda C., Naloka K., Dechsakulwatana C., Pinyakong, O. Simultaneous immobilization enhances synergistic interactions and crude oil removal of bacterial consortium. // Chemosphere. 2023. V. 340. P. 139934. http://dx.doi.org/10.1016/j.chemosphere.2023.139934
  44. Salvà-Serra F., Pérez-Pantoja D., Donoso R.A., Jaén-Luchoro D., Fernández-Juárez V., Engström-Jakobsson H., Bennasar-Figueras A. Comparative genomics of Stutzerimonas balearica (Pseudomonas balearica): diversity, habitats, and biodegradation of aromatic compounds // Front. Microbiol. 2023. V. 14. P. 1159176. http://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2023.1159176
  45. Serkebaeva Y.M., Kim Y., Liesack W., Dedysh S.N. Pyrosequencing-based assessment of the bacteria diversity in surface and subsurface peat layers of a northern wetland, with focus on poorly studied phyla and candidate divisions // PLoS One. 2013. V. 8. P. e63994. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0063994
  46. Song X.D., Yang F., Ju B., Li D.C., Zhao Y.G., Yang J.L., et al. The influence of the conversion of grassland to cropland on changes in soil organic carbon and total nitrogen stocks in the Songnen Plain of Northeast China // Catena. 2018. V. 171. P. 588–601. http://dx.doi.org/10.1016/j.catena.2018.07.045
  47. Tang J., Zhang J., Ren L., Zhou Y., Gao J., Luo L., et al. Diagnosis of soil contamination using microbiological indices: a review on heavy metal pollution // J. Environ. Manag. 2019. V. 242. P. 121–130. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2019.04.061
  48. Varol M. Assessment of heavy metal contamination in sediments of the Tigris River (Turkey) using pollution indices and multivariate statistical techniques // J. Hazard. Mater. 2011. V. 195. P. 355–364. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2011.08.051
  49. Vieira S., Huber K.J., Geppert A., Wolf J., Neumann-Schaal M., Luckner M., Overmann J. Capillimicrobium parvum gen. nov., sp. nov., a novel representative of Capillimicrobiaceae fam. nov. within the order Solirubrobacterales, isolated from a grassland soil International // J. Systematic Evolutionary Microbiol. 2022. V. 72. P. 005508. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.005508
  50. Vieira S., Huber K. J., Geppert A., Wolf J., Neumann-Schaal M., Müsken M., Overmann J. Baekduia alba sp. nov., a novel representative of the order Solirubrobacterales isolated from temperate grassland soil // Int. J. Systematic Evolutionary Microbiol. 2023. V. 73. P. 005918. http://dx.doi.org/10.1099/ijsem.0.005918
  51. Volungevičius J., Skorupskas R. Classification of anthropogenic soil transformation // Geologija. Lithuanian Academy of Sciences, 2011. V. 53. P. 165–177.
  52. Wang B., Yuan X., Han L., Wang X., Zhang L. Release and bioavailability of heavy metals in three typical mafic tailings under the action of Bacillus mucilaginosus and Thiobacillus ferrooxidans // Environ. Earth Sci. 2015. V. 74. P. 5087–5096.
  53. Wang T., Yuan Z., and Yao J. A combined approach to evaluate activity and structure of soil microbial community in long-term heavy metals contaminated soils // Environ. Eng. Res. 2017. V. 23. P. 62–69. https://doi.org/10.4491/eer.2017.063
  54. Watanabe T., Kojima H., Fukui M. Sulfuriferula thiophila sp. nov., a chemolithoautotrophic sulfur-oxidizing bacterium, and correction of the name Sulfuriferula plumbophilus to Sulfuriferula plumbiphila corrig // Int. J. Systematic Evolutionary Microbiol. 2016. V. 66. P. 2041–2045.
  55. Wood D.E., Lu J., Langmead B. Improved metagenomic analysis with Kraken 2 // Genome Biology. 2019. V. 20. P. 1–13. https://doi.org/10.1186/s13059-019-1891-0
  56. Wu P., Wang J., Guo Z., Cheng Y., Wu J. Heavy metals and bacterial community determine resistance genes distribution in agricultural soils surrounding long-term mining area // Appl. Soil Ecol. 2024. V. 202. P. 105581. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2024.105581
  57. Yang Z.N., Liu Z.S., Wang K.H., Liang Z.L., Abdugheni R., Huang Y., Liu, S.J. Soil microbiomes divergently respond to heavy metals and polycyclic aromatic hydrocarbons in contaminated industrial sites // Environ. Sci. Technol. 2022. V. 10. P. 100169. https://doi.org/10.1016/j.ese.2022.100169
  58. Yin H., Niu J., Ren Y., Cong J., Zhang X., Fan F., et al. An integrated insight into the response of sedimentary microbial communities to heavy metal contamination // Sci. Rep. 2015. V. 5. P. 14266.
  59. Zelaya-Molina L.X., Guerra-Camacho J.E., Ortiz-Alvarez J.M., Vigueras-Cortés J.M., Villa-Tanaca L., Hernández-Rodríguez C. Plant growth-promoting and heavy metal-resistant Priestia and Bacillus strains associated with pioneer plants from mine tailings // Arch. Microbiol. 2023. V. 205. 9. P. 318. https://doi.org/10.1007/s00203-023-03650-5
  60. Zeng X. Y., Li S. W., Leng Y., and Kang X. H. Structural and functional responses of bacterial and fungal communities to multiple heavy metal exposure in arid loess // Sci. Total Environ. 2020. V. 723. P. 138081. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.138081
  61. Zhao X., Huang J., Lu J., and Sun Y. Study on the influence of soil microbial community on the long-term heavy metal pollution of different land use types and depth layers in mine // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2019. V. 170. P. 218–226. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2018.11.136
  62. Zhong X., Chen Z., Ding K., Liu W.S., Baker A.J., Fei Y.H., Qiu R. Heavy metal contamination affects the core microbiome and assembly processes in metal mine soils across Eastern China // J. Hazard. Mater. 2023. V. 443. P. 130241. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2022.130241
  63. Zhou Y., Lan W., Yang F., Zhou Q., Liu M., Li J., Xiao Y. Invasive Amaranthus spp. for heavy metal phytoremediation: Investigations of cadmium and lead accumulation and soil microbial community in three zinc mining area // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2024. V. 285. P. 117040. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2024.117040
  64. Zhou Y., Qin Y., Liu X., Feng Z., Zhu H., Yao Q. Soil Bacterial Function Associated with Stylo (Legume) and Bahiagrass (Grass) is affected more strongly by soil chemical property than by bacterial community composition // Front. Microbiol. 2019. V. 10. P. 798. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00798
  65. Žibret G, Gosar M, Miler M, Alijagić J. Impacts of mining and smelting activities on environment and landscape degradation—Slovenian case studies // Land Degrad Dev. 2018. V. 29. Р. 4457–4470. http://dx.doi.org/10.1002/ldr.3198

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».