Assessment of The Possibility of Soil Contamination by Pyrolysis By-Products When Adding Biochars

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

In the last decade, there has been a growing interest in the possibility of introducing biochars (BC) into soils to solve a wide range of problems: from sequestration of atmospheric carbon and long-term increase in fertility to their use as effective sorbents in the remediation of contaminated soils. However, uncontrolled use of low-quality BC has environmental risks associated with the danger of soil contamination with toxic by-products of pyrolysis. The aim of the work was to study the content and composition of labile hydrophobic by-products of pyrolysis (lipid fraction) extracted by organic solvents from BC obtained from various plant materials at different pyrolysis temperatures. The studies used six types of BC prepared from corn and millet straw, as well as willow wood by pyrolysis to final temperatures of 400 and 600°C (low- and high-temperature – LT/BC and HT/BC, respectively). It was shown that all HT/BС have a significantly lower content of lipid fraction (CLF) compared to LT/BC: within 0.16–0.46 and 0.54–3.38% of the BC weight, respectively. Also, BC obtained at higher temperatures were characterized by a higher content of total organic carbon (CTOC) with a lower proportion of lipid fraction organic carbon (CTOCLF). For a qualitative characterization of the lipid fraction, SUVA254 and Sr indices reflecting the degree of aromaticity and molecular weights of colored soluble organic compounds were calculated based on the UV-VIS absorption spectra of their extracts. Based on the obtained results, it was concluded that, regardless of the feedstock, with an increase in the final pyrolysis temperature, decrease the degree of aromaticity and molecular weight of organic compounds included in the lipid fraction. In addition, with increasing pyrolysis temperature, the total content and proportion of polynuclear representatives of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs), which are the most dangerous by-products due to their high toxicity, carcinogenicity and resistance to biodegradation, decrease. It was also found that in all HT/BC, the total PAH content exceeds the maximum permissible level (20 mg/kg) recommended by the International Biochar Initiative (IBI), while in HT/BC, the total PAH content was below this value. Thus, a conclusion was made about the need to develop general quality standards for BC produced for application to soil, taking into account the content of hydrophobic pyrolysis by-products, including PAHs, which are hazardous soil pollutants.

Full Text

Restricted Access

About the authors

E. V. Smirnova

Kazan (Volga Region) Federal University

Author for correspondence.
Email: tutinkaz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3081-7615
Russian Federation, 18, Kremlevskaya St., Kazan, 420008

K. G. Giniyatullin

Kazan (Volga Region) Federal University

Email: tutinkaz@mail.ru
Russian Federation, 18, Kremlevskaya St., Kazan, 420008

R. V. Okunev

Kazan (Volga Region) Federal University

Email: tutinkaz@mail.ru
Russian Federation, 18, Kremlevskaya St., Kazan, 420008

References

  1. Бойцова Л.В., Рижия Е.Я., Вертебный В.Е. Индивидуальные органические соединения дерново-подзолистой супесчаной почвы при внесении биоугля // Агрохимия. 2022. № 11. C. 26–32. https://doi.org/10.31857/S0002188122110035
  2. Глущенко Н.Н., Лобаева Т.А., Байтукалов Т.А., Богословская О.А., Ольховская И.П. Анализ показателей качества фитопрепаратов на основе жирных растительных масел // Фармация. 2005. № 3. С. 7–9.
  3. Дубровина И.А. Влияние биоугля на агрохимические показатели и ферментативную активность почв средней тайги Карелии // Почвоведение. 2021. № 12. С. 1523–1534. https://doi.org/10.31857/S0032180X21120054
  4. Евдокимов И.Н., Лосев А.П. Применение УФ-видимой абсорбционной спектроскопии для описания природных нефтей // Нефтегазовое дело. 2007. № 1. C. 1.
  5. Зиннатшина Л.В., Стрижакова Е.Р., Даньшина А.В. и др. Влияние сорбентов на скорость биоремедиации и свойства почвы, загрязненной смесью нефтепродуктов // Естественные и технические науки. 2018. № 9. https://doi.org/10.25633/ETN.2018.09.08
  6. Когут Б.М., Семенов В.М., Артемьева З.С., Данченко Н.Н. Дегумусирование и почвенная секвестрация углерода // Агрохимия. 2021. № 5. C. 3–13. https://doi.org/10.31857/S0002188121050070
  7. Копцик Г.Н. Современные подходы к ремедиации почв, загрязненных тяжелыми металлами (обзор литературы) // Почвоведение. 2014. № 7. С. 851–868. https://doi.org/10.7868/S0032180X14070077
  8. Малыхина Л.В., Шайдуллина И.А., Антонов Н.А., Сибгатова Д.И., Яппаров А.Х., Дегтярева И.А., Латыпова В.З., Гадиева Э.Ш. Применение новых биотехнологий при рекультивации черноземов со смешанным типом загрязнения // Георесурсы. 2016. Т. 18. № 2. С. 138–144. https://doi.org/10.18599/grs.18.2.12
  9. Пансю М., Готеру Ж. Анализ почвы. Справочник. Минералогические, органические и неорганические методы анализа / Gер. с англ. под ред. Панкратова Д.А. СПб.: ЦОП, Профессия, 2014. 800 с.
  10. Рижия Е.Я., Мухина И.М., Вертебный В.Е., Хорак Я., Конончук П.Ю., Хомяков Ю.В. Ферментативная активность и эмиссия закиси азота из дерново-подзолистой супесчаной почвы с биоуглем // Сельскохозяйственная биология. 2017. № 3. C. 464–470. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.3.464rus
  11. Синицын А.П., Гусаков А.В., Черноглазов В.М. Биоконверсия лигноцеллюлозных материалов. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1995. 224 с.
  12. Смирнова Е.В., Гиниятуллин К.Г., Валеева А.А., Ваганова Е.С. Пироугли как перспективные почвенные мелиоранты: оценка содержания и спектральные свойства их липидных фракций // Ученые записки Казанского университета. Сер. Естественные науки. 2018. № 160. Кн. 2. С. 259–275.
  13. Соколов Д.А., Кулижский С.П., Лим А.Г., Гуркова Е.А., Нечаева Т.В., Мерзляков О.Э. Сравнительная оценка методов определения педогенного органического углерода в углесодержащих почвах // Вестник Томск. гос. ун-та. Сер. Биология. 2017. № 39. C. 29–43. https://doi.org/10.17223/19988591/39/2
  14. Холодов В.А., Ярославцева Н. В., Фарходов Ю. Р., Яшин М.А., Лазарев В.И., Ильин Б.С., Филиппова О.И., Воликов А.Б., Иванов А.Л. Оптические характеристики экстрагируемых фракций органического вещества типичных черноземов в многолетних полевых опытах // Почвоведение. 2020. № 6. С. 691–702. https://doi.org/10.31857/S0032180X20060052
  15. Abdel-Shafy H.I., Mansour M.S.M. A review on polycyclic aromatic hydrocarbons: Source, environmental impact, effect on human health and remediation // Egypt. J. Petroleum. 2016. № 25. P. 107–123.
  16. Agarry S.E., Oghenejoboh K.M., Solomon B.O. Kinetic modelling and half life study of adsorptive bioremediation of soil artificially contaminated with bonny light crude oil // J. Ecol. Eng. 2015. V. 16. P. 1–13. https://doi.org/10.12911/22998993/2799
  17. Barrow C.J. Biochar: Potential for countering land degradation and for improving agriculture // Appl. Geogr. 2012. V. 34. P. 21–28. https://doi.org/10.1016/j.apgeog.2011.09.008
  18. Beesley L., Moreno-Jiménez E., Gomez-Eyles J.L., Harris E., Robinson B., Sizmur T. A review of biochars’ potential role in the remediation, revegetation and restoration of contaminated soils // Environ. Poll. 2011. V. 159. P. 3269–3282. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2011.07.023
  19. Bilias F., Nikoli T., Kalderis D., Gasparatos D. Towards a Soil Remediation Strategy Using Biochar: Effects on Soil Chemical Properties and Bioavailability of Potentially Toxic Elements // Toxics. 2021. V. 9. P. 184. https://doi.org/10.3390/toxics9080184
  20. Buss W., Graham M.C., MacKinnon G., Mašek O. Strategies for producing biochars with minimum PAH contamination // J. Anal. Appl. Pyrol. 2016. V. 119. P. 24–30. https://doi.org/10.1016/j.jaap. 2016.04.001
  21. Cely P., Gascó G., Paz-Ferreiro J., Méndez A. Agronomic properties of biochars from different manure wastes // J. Anal. Appl. Pyrol. 2015. V. 111. P. 173–182. https://doi.org/0.1016/j.jaap. 2014.11.014
  22. Chibuike G.U., Obiora S.C. Heavy Metal Polluted Soils: Effect on Plants and Bioremediation Methods // Appl. and Environ. Soil Sci. 2014. V. 2014. P. 752708. https://doi.org/10.1155/2014/752708
  23. Chin Y., Aiken G., O’Loughlin E. Molecular Weight, Polydispersity, and Spectroscopic Properties of Aquatic Humic Substances // Environ. Sci. Tech. 1994. V. 11. P. 1853–1858. https://doi.org/10.1021/es00060a015
  24. Devi P., Saroha A.K. Effect of pyrolysis temperature on polycyclic aromatic hydrocarbons toxicity and sorption behaviour of biochars prepared by pyrolysis of paper mill effluent treatment plant sludge // Bioresource Technol. 2015. V. 192. P. 312–320. http://dx.doi.org/10.1016/j.biortech.2015.05.084
  25. EL-Sayed M.M., Mahdy A.Y., Gebreel M., Abdeenc S.A. Effectiveness of Biochar, Organic Matter and Mycorrhiza to Improve Soil Hydrophysical Properties and Water Relations of Soybean under Arid Soil Conditions // Eurasian Soil Sci. 2023. V. 56. P. 1055–1066. https://doi.org/10.1134/S1064229323600276
  26. Fabbri D., Rombolà A.G., Torri C., Spokas K.A. Determination of polycyclic aromatic hydrocarbons in biochar and biochar amended soil // J. Anal. Appl. Pyrol. 2013. V. 103. P. 60–67. https://doi.org/10.1016/j.jaap. 2012.10.003
  27. Gaskin J.W., Steiner C., Harris K., Das K.C., Bibens B. Effect of low–temperature pyrolysis conditions on biochar for agricultural use // Am. Soc. Agricult. Biolog. Engin. 2008. V. 51. P. 2061–2069. https://doi.org/10.13031/2013.25409
  28. Helms J.R., Stubbins A., Ritchie J.D., Minor E., Kieber D.J., Mopper K. Absorption spectral slope ratios as indicators of molecular weight, source, and photobleaching of chromophoric dissolved organic matter // Limnology and Oceanography. 2008. V. 53. P. 955–969. https://doi.org/10.2307/40058211
  29. Hu Z., Li J., Wang H., Ye Z., Wang X., Li Y., Liu D., Song Z. Soil Contamination with Heavy Metals and Its Impact on Food Security in China // J. Geosci. Environ. Protection. 2019. V. 7. P. 168–183.
  30. International Biochar Initiative, Standardized Product Definition and Product Testing Guidelines for Biochar that is used in Soil. 2013. http://www.biochar–international.org/sites/default/files/IBI_Biochar_ Standards_V1.1.pdf
  31. Jamieson T., Sager E., Guéguen C. Characterization of biochar-derived dissolved organic matter using UV–visible absorption and excitation-emission fluorescence spectroscopies // Chemosphere. 2014. V. 103. P. 197–204. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2013.11.066
  32. Jeffery S., Verheijen F.G.A., Kammann C., Abalos D. Biochar effects on methane emissions from soils: A meta-analysis // Soil Biol. Biochem. 2016. V. 101. P. 251–258. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2016.07.021
  33. Jeffery S., Verheijen F.G.A., van der Velde M., Bastos A.C. A quantitative review of the effects of biochar application to soils on crop productivity using meta-analysis // Agriculture, Ecosystems and the Environment. 2011. V. 144. P. 175–187. https://doi.org/10.1016/j.agee.2011.08.015
  34. Johnsen A.R., Karlson U. PAH degradation capacity of soil microbial communities–does it depend on PAH exposure? // Microbial Ecology. 2005. V. 50. P. 488–495. https://doi.org/10.1007/s00248-005-0022-5
  35. Junna S., Bingchen W., Gang X., Hongbo S. Effects of wheat straw biochar on carbon mineralization and guidance for large-scale soil quality improvement in the coastal wetland // Ecol. Eng. 2014. V. 62. P. 43–47. https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2013.10.014
  36. Kapoor A., Sharma R., Kumar A., Sepehya S. Biochar as a means to improve soil fertility and crop productivity: a review // J. Plant Nutr. 2022. V. 45. P. 2380–2388. https://doi.org/10.1080/01904167.2022.2027980
  37. Keiluweit M., Kleber M., Sparrow M.A., Simoneit B.R.T., Prahl F.G. Solvent-extractable polycyclic aromatic hydrocarbons in biochar: influence of pyrolysis temperature and feedstock // Environ. Sci. Technol. 2012. V. 46. P. 9333–9341. https://doi.org/10.1021/es302125k
  38. Keiluweit M., Nico P.S., Johnson M.G., Kleber M. Dynamic molecular structure of plant biomass–derived black carbon (biochar) // Environ. Sci. Technol. 2010. V. 44. P. 1247–1253. https://doi.org/10.1021/es9031419
  39. Kloss S., Zehetner F., Wimmer B., Buecker J., Rempt F., Soja G. Biochar application to temperate soils: Effects on soil fertility and crop growth under greenhouse conditions // J. Plant Nutr. Soil Sc. 2014. V. 177. P. 3–15. https://doi.org/10.1002/jpln.201200282
  40. Krzyszczak A., Dybowski M.P., Czech B. Formation of polycyclic aromatic hydrocarbons and their derivatives in biochars: The effect of feedstock and pyrolysis conditions // J. Anal. Appl. Pyrolysis. 2021. V. 160. P. 105339. https://doi.org/ 10.1016/j.jaap. 2021.105339
  41. Kumar A., Shrivastava A., Vimal V., Gupta A.K., Bhujbal S., Biswas J., Singh L., Ghosh P., Pandey A., Sharma P., Kumar M. Biochar application for greenhouse gas mitigation, contaminants immobilization and soil fertility enhancement: A state-of-the-art review // Sci. Total Environ. 2022. V. 853. P. 158562. https://doi.org/0.1016/j.scitotenv.2022.158562
  42. Kuryntseva P., Karamova K., Galitskaya P., Selivanovskaya S., Evtugyn G. Biochar functions in soil depending on feedstock and pyrolyzation properties with particular emphasis on biological properties // Agriculture. 2023. V. 13. P. 2003. https://doi.org/10.3390/agriculture13102003
  43. Lehmann J., Joseph S. Biochar for environmental management science technology and implementation. New York: Routledge, 2015. 976 p.
  44. Luo K., L, Y., Guan X. Zhang X. Effects of biochar with different particle sizes on soil physicochemical properties and vertical transport of selenium and cadmium // Eurasian Soil Sci. 2023. V. 56. P. 1999–2008. https://doi.org/10.1134/S1064229323601270
  45. Maestrini B., Nannipieri P., Abiven S. A meta-analysis on pyrogenic organic matter induced priming effect // Global Chan. Biol. 2015. № 7. P. 577–590. https://doi.org/10.1111/gcbb.12194
  46. Mambwe M., Kalebaila K.K., Johnson T. Remediation technologies for oil contaminated soil // Global J. Environ. Sci. Management. 2021. V. 7. P. 1–20. https://doi.org/10.22034/gjesm.2021.3.09
  47. Mazarji M., Minkina T., Sushkova S., Mandzhieva S., Barakhov A., Barbashev A., Dudnikova T., Lobzenko I., Giannakis S. Decrypting the synergistic action of the Fenton process and biochar addition for sustainable remediation of real technogenic soil from PAHs and heavy metals // Environ. Poll. 2022. V. 303. P. 119096. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2022.119096
  48. Minnikova T., Kolesnikov S., Ruseva, A., Kazeev K., Minkina T., Mandzhieva S., Sushkova S. Influence of the biochar on petroleum hydrocarbon degradation intensity and ecological condition of Haplic Chernozem Eurasian // J. Soil Sci. 2022. V. 11. P. 157–166. https://doi.org/10.18393/ejss.1037798
  49. Okunev R.V, Smirnova E.V, Sharipova A.R, Gilmutdinova I.M., Giniyatullin K.G. Investigation of biological destruction of benzo[a]pyrene andpolycyclic aromatic hydrocarbons of biochar in soil // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2018. V. 107. P. 012121. https://doi.org/10.1088/1755–1315/107/1/012121
  50. Paz-Ferreiro J., Nieto, A., Méndez, A., Askeland, M.P.J., Gascó, G. Biochar from biosolids pyrolysis: A review // Int. J. Environ. Res. Public Health. 2018. V. 15. P. 956. https://doi.org/10.3390/ijerph15050956
  51. Qin G., Gong D., Fan M.Y. Bioremediation of petroleum–contaminated soil by biostimulation amended with biochar // Int. Biodeterior. Biodegr. 2013. V. 85. P. 150–155. https://doi.org/10.1016/j.ibiod.2013.07.004
  52. Rajput V.D., Chernikova N., Minkina T., Gorovtsov A., Fedorenko A., Mandzhieva S., Bauer T., Tsitsuashvili V., Beschetnikov V., Wong M.H. Biochar and metal-tolerant bacteria in alleviating ZnO nanoparticles toxicity in barley // Environ. Res. 2023. V. 220. P. 115243. https://doi.org/10.1016/j.envres.2023.115243
  53. Rizhiya E.Y., Buchkina N.P., Mukhina I.M., Belinets A.S., Balashov E.V. Effect of biochar on the properties of loamy sand Spodosol soil samples with different fertility levels: A laboratory experiment // Eurasian Soil Sci. 2015. V. 48. P. 192–200. https://doi.org/10.1134/S1064229314120084
  54. Selvarajoo A., Oochit D. Effect of pyrolysis temperature on product yields of palm fiber and its biochar characterictics // Mater. Sci. Energy Technol. 2020. V. 3. P. 575–583. https://doi.org/10.1016/j.mset.2020.06.003
  55. Seraj F., Rahman T. Heavy Metals, Metalloids, Their Toxic // Am. J. Plant Sci. 2018. V. 9. P. 2626–2643. https://doi.org/10.4236/ajps.2018.913191
  56. Stogiannidis E., Laane R.W.P.M. Source Characterization of Polycyclic Aromatic Hydrocarbons by Using Their Molecular Indices: An Overview of Possibilities // Rev. Environ. Contamin. Toxicol. 2015. V. 234. P. 49–133. https://doi.org/10.1007/978-3-319-10638-0_2
  57. Tsibart A.S., Gennadiev A.N. Polycyclic aromatic hydrocarbons in soils: sources, behavior, and indication significance (a review) // Eurasian Soil Sci. 2013. V. 46. P. 728–741. https://doi.org/10.1134/S1064229313070090
  58. Tu P., Zhang G., Wei G., Li J., Li Y., Lifang D., Yuan H. Influence of pyrolysis temperature on the physicochemical properties of biochars obtained from herbaceous and woody plants // Bioresources and Bioprocessing. 2022. V. 9. P. 131. https://doi.org/10.1186/s40643-022-00618-z
  59. Twardowski M.S., Boss E., Sullivan J.M., Donaghay P.L. Modeling the spectral shape of absorption by chromophoric dissolved organic matter // Mar. Chem. 2004. V. 89. P. 69–88. https://doi.org/10.1016/j.marchem.2004.02.008
  60. Valeeva A.A., Grigoryan B.R., Bayan M.R., Giniyatullin K.G., Vandyukov A.E., Evtygin V.G. Adsorption of methylene blue by biochar produced through torrefaction and slow pyrolysis from switchgrass // Res. J. Pharmaceut., Biol. Chem. Sci. 2015. V. 6. P. 8–17.
  61. Vasilyeva G., Mikhedova E., Zinnatshina L., Strijakova E., Akhmetov L., Sushkova S., Ortega-Calvo J.-J. Use of natural sorbents for accelerated bioremediation of grey forest soil contaminated with crude oil // Sci. Total Environ. 2022. V. 850. № 157952. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2022.157952
  62. Vasilyeva G.K., Strijakova E.R., Ortega-Calvo J.-J. Remediation of Soils Polluted by Oil Industries // Remediation Science and Technology. The Handbook of Environmental Chemistr. Springer, 2024. V. 130. https://doi.org/10.1007/698_2024_1080
  63. Wang C., Wang Y., Herath H.M.S.K. Polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in biochar – Their formation, occurrence and analysis: A review // Org. Geochem. 2017. V. 114. P. 1–11. https://doi.org/10.1016/j.orggeochem.2017.09.001
  64. Wang Y., Li F., Rong X., Song H., Chen J. Remediation of petroleum–contaminated soil using bulrush straw powder, biochar and nutrients // Bull. Environ. Contamin. Toxicol. 2017. V. 98. P. 690–697. https://doi.org/10.1007/s00128-017-2064-z
  65. Weishaar J.L., Aiken G.R., Bergamaschi B.A., Fram M.S., Fugii R. Mopper K. Evaluation of specific ultraviolet absorbance as an indicator of the chemical composition and reactivity of dissolved organic carbon // Environ. Sci. Technol. 2003. V. 37. P. 4702–4708. https://doi.org/10.1021/es030360x
  66. Xu G., Lv Y., Sun J., Shao H., Wei L. Recent Advances in Biochar Applications in Agricultural Soils: Benefits and Environmental Implications // Clean-Soil, Air, Water. 2012. V. 40. P. 1093–1098. https://doi.org/10.1002/clen.201100738
  67. Xue Y., Wang C., Hu Z., Zhou Y., Xiao Y., Wang T. Pyrolysis of sewage sludge by electromagnetic induction: Biochar properties and application in adsorption removal of Pb(II), Cd(II) from aqueous solution // Waste Management. 2019. V. 89. P. 48–56. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2019.03.047
  68. Yan J., You X., Li X., Ni M., Yin X., Cen K. Performance of PAHs emission from bituminous coal combustion // J. Zhejiang University. 2004. V. 5. P. 1554–1564. https://doi.org/10.1631/jzus.2004.1554
  69. Zhang C., Wu D., Ren H. Bioremediation of oil contaminated soil using agricultural wastes via microbial consortium // Scientif. Rep. 2020. V. 10. P. 9188. https://doi.org/10.1038/s41598-020-66169-5
  70. Zhang X., Zhao B., Liu H., Zhao Y., Li L. Mechanisms of sludge biochar effects on thermal properties of a loess soil (sierozem) // Eurasian Soil Sci. 2023. V. 56. P. 1683–1695. https://doi.org/10.1134/S1064229323600689

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Fig. 1. Content of total organic carbon (Stot) as well as lipid fraction (SLF) and lipid fraction organic carbon (SorgLF) in NT/BU and WT/BU obtained from maize straw (BU-SC), millet straw (BU-SP) and willow wood (BU-DI).

Download (31KB)
Indexing metadata
3. Fig. 2. UV-VIS absorption spectra in the wavelength range 240-400 nm of solutions of the lipid fraction of NT/BU and WT/BU obtained from maize straw (BU-SC), millet straw (BU-SP) and willow wood (BU-DI). Arrows show the region λ = 275 nm and rectangular boxes indicate the 275-395 and 350-400 nm regions, where the molecular weight of the coloured compounds in the extracts is estimated from the ratio of the curve slope angles.

Download (31KB)
Indexing metadata
4. Fig. 3. Aromaticity (SUVA254) and molecular weight values of coloured organic products (Sr) in the lipophilic fractions of NT/BU and WT/BU obtained from maize straw (BU-SC), millet straw (BU-SP) and willow wood (BU-DI).

Download (29KB)
Indexing metadata
5. Fig. 4. Total PAH content as well as the content of low-nuclear (2-, 3-, 4-PAHs) and polynuclear ((5-6)PAHs) in NT/BU and WT/BU derived from maize straw (BU-SC), millet straw (BU-SP) and willow wood (BU-DI).

Download (33KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».