Микроструктура гель-пленок бактериальной целлюлозы, синтезируемой в статических условиях культивирования штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 на питательных средах с различными источниками углерода

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Проведен сравнительный анализ структуры высушенных пленок бактериальной целлюлозы (БЦ), продуцируемых бактериями штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 при статическом культивировании на питательных средах с различными источниками углерода: глюкоза, сахароза, мальтоза, фруктоза, лактоза. Обнаружено, что надмолекулярная структура пленок представляет собой пространственную сетку из ориентационно-упорядоченных микрофибрилл со средним диаметром от 30 до 60 нм, состоящих из кристаллических и аморфных областей. Анализ рентгенограмм показал, что кристаллические области микрофибрилл сформированы целлюлозой I. В зависимости от состава питательной среды степень кристалличности пленок изменяется в диапазоне от ~20 до 90%. Обнаружено, что независимо от источника углерода микроструктура верхней и нижней поверхностей пленок БЦ различна и определяется статическими условиями культивирования: на верхней поверхности гель-пленок присутствуют поры диаметром до 500 нм; на нижней поверхности распределение пор по размерам носит более широкий характер (до 600 нм). Разница между средними значениями пор на верхних и нижних поверхностях варьируется от 95 до 180 и от 100 до 200 нм соответственно. Результаты измерений механических свойств пленок показали, что максимальную прочность имеют пленки, полученные при культивировании на фруктозе и сахарозе, а минимальную – на лактозе и мальтозе. Приведены данные продуктивности БЦ штамма GH-1/2008.

Ключевые слова

Об авторах

А. Л. Болгова

Московский политехнический университет

Email: ashi-chi@yandex.ru
Россия, Москва

А. А. Шевцов

Институт биоинженерии им. К.Г. Скрябина ФИЦ “Фундаментальные основы биотехнологии” РАН; Институт искусственного интеллекта AIRI

Email: natalya.arkharova@yandex.ru
Россия, Москва; Россия, Москва

Н. А. Архарова

Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН

Email: natalya.arkharova@yandex.ru
Россия, Москва

Д. Н. Каримов

Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН

Email: dnkarimov@gmail.com
Россия, Москва

И. С. Макаров

Институт нефтехимического синтеза им. А.В. Топчиева РАН

Email: natalya.arkharova@yandex.ru
Россия, Москва

Т. И. Громовых

Московский политехнический университет; Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН

Email: natalya.arkharova@yandex.ru
Россия, Москва; Россия, Москва

В. В. Клечковская

Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: klechvv@crys.ras.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Basu A., Vadanan S.V., Lim S. // Sci Rep. 2018. P. 447. https://doi.org/10.1038/s41598-018-23701-y
  2. Ross P., Mayer R., Benziman M. // Microbiol. Rev. 1991. V. 55. № 1. P. 35. https://doi.org/10.1128/mr.55.1.35-58.1991
  3. Hassan E.A., Abdelhady H.M., El-Salam S.S. A. et al. // Microbiol. Res. J. 2015. V. 9. P. 1. https://doi.org/10.9734/BMRJ/2015/18223
  4. Hong F., Qiu K. // Carbohydr. Polym. 2008. P. 545. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2007.09.015
  5. Huang Y., Zhu C., Yang J. et al. // Cellulose. 2014. V. 21. P. 1. https://doi.org/10.1007/s10570-013-0088-z
  6. Frone A.N., Panaitescu D.M., Nicolae C.A. et al. // Polymers. 2020. V. 14. 5358. https://doi.org/10.3390/polym14245358
  7. Arkharova N., Suvorova E., Severin A. et al. // Scanning. 2016. V. 38. P. 757. https://doi.org/10.1002/sca.21325
  8. Svensson A., Nicklasson E., Harrah T. et al. // Biomaterials. 2005. P. 419. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2004.02.049
  9. Буянов А.Л., Гофман И.В., Хрипунов А.К. и др. // Высокомолекулярные соединения. А. 2013. Т. 55. С. 512. https://doi.org/10.7868/S0507547513050036
  10. Millon L., Wan W. // Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater. 2006. V. 79 (2). P. 245. https://doi.org/10.1002/jbm.b.30535
  11. Klemm D., Schumann D., Udhardt U. et al. // Prog. Polym. Sci. 2001. V. 26. P. 1561. https://doi.org/10.1016/S0079-6700(01)00021-1
  12. Wan Y., Gao C., Han M. et al. // Polym. Adv. Technol. 2011. V. 22. P. 2643. https://doi.org/10.3390/app9010107
  13. Wang J., Gao C., Zhang Y. et al. // Mater. Sci. Eng. C. 2010. P. 214. https://doi.org/10.1016/j.msec.2009.10.006
  14. Yoshino A., Tabuchi M., Uo M. // Acta Biomater. 2013. V. 9. P. 6116. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2012.12.022
  15. Coffindaffer T.W., Heath B.P., Kyte K.E. et al. U.S. Patent 8.097.574. 2012.
  16. Hasan N., Biak D.R.A., Kamarudin S. // Int. J. Adv. Sci. Eng. Inform. Technol. 2012. V. 2. P. 272. https://doi.org/10.18517/ijaseit.2.4.201
  17. Amnuaikit T., Chusuit T., Raknam P. et al. // Med. Dev. 2011. V. 4. P. 77. https://doi.org/10.2147/MDER.S20935
  18. Czaja W., Romanovicz D., Brown Rm. // Cellulose. 2004. V. 11. P. 403. https://doi.org/10. 1023/b:cell.0000046412.11983.61
  19. Watanabe K., Tabuchi M., Morinaga Y. et al. // Cellulose. 1998. V. 5. P. 187. https://doi.org/10.1023/a:1009272904582
  20. Wang J., Tavakoli J., Tang Y. // Carbohydrate Polymers. 2019. V. 219. P. 63. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2019.05.008
  21. Bakhman M., Petrukhin I.Yu., Butenko I.Ye. et al. // EHO. 2018. № 6–2 (40). P. 61.
  22. Singhsa P., Narain R., Manuspiya H. // Cellulose. 2018. V. 25. P. 1571. https://doi.org/10.1007/s10570-018-1699-1
  23. Costa A., Almeida F., Vinhas G. et al. // Front. Microbiol. 2017. V. 8. P. 528. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.02027
  24. Mikkelsen D., Flanagan B.M., Dykes G.A. et al. // Microbiol. 2009. V. 107. P. 576. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2009.04226.x
  25. Keshk S.M.A.S., Sameshima K. // Afr. J. Biotechnol. 2005. V. 4. № 6. P. 478. https://doi.org/10.5897/AJB2005.000-3087
  26. Wang S.S., Han Y.-H., Chen J.-L. et al. // Polymers. 2018. V. 10. P. 963. https://doi.org/10.1016/10.3390/polym10090963
  27. Киселева О.И., Луценко С.В., Фельдман Н.Б. и др. // Вестн. Том. гос. ун-та. Биология. 2021. № 53. С. 22. https://doi.org/10.17223/19988591/53/2
  28. Gromovykh T.I., Pigaleva M.A., Gallyamov M.O. et al. // Carbohydr. Polym. 2020. V. 237. P. 116140 https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2020.116140
  29. Skvortsova Z.N., Gromov T.I., Grachev V.S. et al. // Colloid J. 2019. V. 81. № 4. P. 441. https://doi.org/10.1134/S1061933X19040161
  30. Gromovykh T.I., Fan M.K., Danil’chuk T.N. Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 bacterial strain - bacterial cellulose producer // Patent RF. № 2464307. 2012.
  31. Hestrin S., Schramm M. // Biochem. J. 1954. V. 58. P. 345. https://doi.org/10.1042/bj0580345
  32. Bi J.C., Liu S.X., Li C.F. et al. // J. Appl. Microbiol. 2014. V. 117. P. 1305.
  33. Atalla R., Vanderhart D. // Science. 1984. V. 223. P. 283. https://doi.org/10.1126/science.223.4633.283
  34. French A.D. // Cellulose. 2014. V. 21. P. 885. https://doi.org/10.1007/s10570-013-0030-4
  35. Fink H.-P., Purz H., Bohn A., Kunze J. // Macromol. Symp. 1997. V. 120. P. 207. https://doi.org/10.1021/bm3005929
  36. Клечковская В.В., Баклагина Ю.Г., Степина Н.Д. и др. // Кристаллография. 2003. Т. 48. № 5. С. 813. https://doi.org/10.1134/1.1612596
  37. Horii F., Yamamoto H., Hirai A. // Macromol. Symp. 1997. V. 120. P. 197. https://doi.org/10.1002/masy.19971200120
  38. Алешина Л.А., Глазкова С.В., Луговская Л.А. и др. // Химия растительного сырья. 2001. № 1. С. 5.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

3.

4.

Скачать (231KB)

© А.Л. Болгова, А.А. Шевцов, Н.А. Архарова, Д.Н. Каримов, И.С. Макаров, Т.И. Громовых, В.В. Клечковская, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах