Особенности полиимидных пленок с молекулярными отпечатками эритрозина и индигокармина

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

Получены полиимидные пленки с молекулярными отпечатками эритрозина и индигокармина. Методами сканирующей силовой микроскопии и ИК-спектроскопии изучены структура и морфология поверхности пленок. Установлено, что в полимерах с молекулярными отпечатками (ПМО) увеличивается шероховатость поверхности, при этом высота рельефа составляет 3–4 нм, удаление молекул темплата приводит к перераспределению в полимерах с молекулярными отпечатками пор по размеру. Сорбцию красителей пленками ПМО проводили в статических условиях. Рассчитаны степени извлечения и импринтинг-фактор для полимеров с молекулярными отпечатками красителей, полученные высокие их величины указывают на избирательность ПМО к целевой молекуле темплата.

Full Text

ВВЕДЕНИЕ

Полиимиды и полимеры на основе полиамидокислоты нашли применение в биотехнологии, медицине, электротехнике, а также в качестве основы для различных термо- и биостойких материалов и композитов [1, 2]. Отличительной чертой полиимидов является одновременное содержание нескольких различных функциональных групп, а именно амидных, карбоксильных, а также аминогрупп. Совокупность этих структурных элементов дает возможность изменять полимерную цепь, благодаря способности создавать разные сополимеры, а также дает возможность конструировать полимеры, селективные к биоактивным веществам пленки [3, 4]. Отмечается, что полиимиды обладают диэлектрическими свойствами, химической стойкостью, хорошо поддаются микрообработке [5–7]. Для решения аналитических и природоохранных задач, проблем медицины и биохимии требуется получение новых универсальных, селективных и экологически безопасных материалов, которые могут быть использованы в качестве сорбентов, химических и биологических сенсоров, материалов для адресной транспортировки лекарственных веществ [8, 9]. Так, в частности, для создания селективных сенсоров могут быть использованы полимеры с молекулярными отпечатками (ПМО) на основе полиимидов, что позволяет селективно определять в растворах целевые молекулы веществ [10–13].

В процессе синтеза полимеров с молекулярными отпечатками между полимерной сеткой и молекулами–шаблонами (темплатами) происходят взаимодействия за счет образования ковалентных или нековалентных связей. Последующее удаление темплата приводит к образованию полостей, причем их форма, размер и расположение функциональных групп соответствуют используемому темплату. Благодаря “молекулярной памяти”, заложенной в полимерной матрице, эти полости способны к повторному взаимодействию с темплатом [14–16]. Наличие полостей позволяет использовать ПМО как носители лекарственных средств, что значительно расширяет возможности их применения для решения аналитических, медицинских задач и биотехнологий.

Синтетические красители широко используются в пищевой и медицинской индустрии. Содержание красителей строго регламентировано, но если в пищевой промышленности ведется контроль, то в фармацевтической промышленности строгого учета содержания красителей нет. Эритрозин и индигокармин используют для окраски оболочек таблеток, биотканей, в стоматологии. Эритрозин запрещен для применения в пищевой промышленности, но не в фармакологии.

Применение ПМО в качестве селективного слоя сенсоров значительно расширяет спектр возможностей определения красителей в пищевых матрицах, лекарственных препаратах и др. [17–20].

Таким образом, целью работы было получение полиимидных пленок с молекулярными отпечатками эритрозина и индигокармина, исследование их сорбционных свойств, морфологии поверхности и межмолекулярных взаимодействий с молекулами темплата.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Для синтеза полимеров с молекулярными отпечатками использовали сополимер 1,2,4,5-бензолтетракарбоновой кислоты с 4,4'-диаминодифенилоксидом (ТУ-6-19-283-85, ОАО МИПП НПО “Пластик”). Шаблонами (темплатами, Т) были синтетические красители (85%, “Люмекс”): эритрозин (Е127) и индигокармин (Е132). Предполимеризационную смесь (ППС) и водно-этанольный раствор красителя (1 мг/см3) в объемном соотношении (ППС : Т = 1 : 1) наносили на керамическую подложку, нагревали при 80°С в течение 1 ч в сушильном шкафу LF-25 (АО “ЛОИП”, г. Санкт-Петербург), затем нагревание продолжали при 180°С в течение 30 мин, что приводит к образованию полиимида по двухстадийной схеме, описанной в работах [21–23]. Далее полученные пленки помещали в дистиллированную воду на 24 ч для удаления темплата. В аналогичных условиях были получены неимпринтированные полимеры (полимеры сравнения).

Толщина полученных пленок измерена эллипсометром ЛЭФ-754 с рабочей длиной волны излучения HeNe лазера – 632.8 нм и составила 1–1.2 мкм.

ИК-спектры полученных полимеров снимали на приборе VERTEX-70 “Брукер” (Германия). Морфологию поверхности пленок исследовали сканирующим силовым микроскопом (ССМ) Solver P47 PRO, (г. Зеленоград). Сканирование образцов проводили в полуконтактном режиме зондом длиной 87 ± 2 мкм фирмы NT-MDT модели HA_NC, жесткость 3.5 Н/м. Обработку изображений проводили в программе FemtoScan Online [24].

Для оценки способности полученных полимеров сорбировать красители из водных растворов использовали метод переменных концентраций. Зависимости представляли в координатах изотерм сорбции А = f(Cравн). Навески полимеров массой 0.015 г помещали в 5 см3 водного раствора красителя, при постоянном перемешивании термостатировали 15–30 мин при температуре 20°C, после чего проводили определение оптической плотности раствора при характеристической длине волны (Е127 – 526 нм, Е132 – 610 нм) на спектрофотометре ПЭ-5300В (“Промэколаб”, г. Санкт-Петербург). Время установления сорбционного равновесия для красителя Е127 составляет 15 мин, а для красителя Е132 – 30 мин.

Сорбционную способность ПМО изучали в статических условиях путем контроля степени извлечения из водного раствора и коэффициента распределения красителя. Степень извлечения (R, %) красителей из раствора определяли по уравнению:

R, %=C0CC0100%,

где С0 – концентрация определяемого красителя в водном растворе перед сорбцией, г/дм3; С – концентрация красителя в растворе после сорбции, г/дм3.

Коэффициенты распределения (D) красителей находили по уравнению:

D=R, %(100R, %)Vm,

где V – объем анализируемого раствора, дм3, m – масса навески сорбента, г.

Для оценки способности сорбента с молекулярными отпечатками распознавать краситель по сравнению с неимпринтированным полимером рассчитывали импринтинг-фактор:

IF=DПМОDПС,

где DПМО – коэффициент распределения вещества на полимере с молекулярными отпечатками, DПС – коэффициент распределения вещества на неимпринтированном полимере (полимере сравнения, ПС) [25].

По экспериментально установленной максимальной сорбционной емкости ПМО были рассчитаны удельная поверхность полимера Sуд [26] и площади проекции молекул красителей на поверхность сорбента (Si) [27] по формуле:

Si=SУД1021AmNA,

где Sуд – удельная поверхность полимера м2/г, Аm – максимальная сорбционная емкость ммоль/г, NА – число Авогадро, 6.02 × 1023 моль–1.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

В результате анализа поверхности полиимидной пленки без добавления красителя с помощью ССМ выявлено, что высота рельефа составляет 0.5–1.5 нм с содержанием микропор 69.9% (рис. 1). В то же время анализ морфологии пленок ПМО показал, что происходит небольшое изменение количества пор и их размера (табл. 1) с преобладанием микропор, увеличивается шероховатость поверхности (табл. 2). При этом пленки ПМО-Е127 (рис. 2) и ПМО-Е132 (рис. 3) имеют незначительное количество дефектов поверхности, а высота рельефа составляет 3–4 нм. Таким образом, после удаления молекулы темплата на поверхности пленки остаются полости (молекулярные отпечатки), которые комплементарны по форме и размеру, а также по расположению функциональных групп в молекуле красителя.

 

Таблица 1. Содержание пор (%) в синтезированных полимерных пленках

Классификация пор r, нм

ПАК

ПМО- Е127

ПМО- Е132

n, %

n, %

n, %

ультра-

1–10

нет

нет

нет

микро-

10–25

69.9

76.2

66.8

мезо-

25–50

26.6

22.9

30.9

макро-

>50

3.5

0.9

2.3

 

Таблица 2. Параметры шероховатости поверхности полиимидных пленок

Пленка

Наибольшая высота рельефа, Smax, нм

Среднеарифметическое отклонение рельефа, Sa, нм

Высота неровностей рельефа по 10 точкам, Sz, нм

ПАК

1.48

0.13

0.16

ПМО-Е127

5.52

0.44

0.61

ПМО-Е132

2.65

0.45

0.56

Рис. 1. ССМ-изображение поверхности пленки на основе полиимида (ПС).

 

Рис. 2. ССМ-изображение поверхности пленки полимера с молекулярным отпечатком красителя Е127.

 

Рис. 3. ССМ-изображение поверхности пленки полимера с молекулярным отпечатком красителя Е132.

 

Структурно-групповой анализ, проведенный по ИК-спектрам полимеров, выявил увеличение интенсивности характеристических полос пропускания для полиимида с молекулами-шаблонами и отсутствие существенных изменений в ИК-спектрах ПМО и их полимеров сравнения (рис. 4, 5).

 

Рис. 4. ИК-спектр красителя эритрозина (Е127) и полимерных пленок на основе полиимида: 1 – чистый полимер; 2 – полимер после удаления красителя; 3 – полимер с красителем; 4 – краситель.

 

Рис. 5. ИК-спектр красителя индигокармина (Е132) и полимерных пленок на основе полиимида: 1 – чистый полимер; 2 – полимер после удаления красителя; 3 – полимер с красителем; 4 – краситель.

 

По данным сорбции красителей исследованными полимерами установлено, что из-за слабого взаимодействия между молекулами растворителя и эритрозина Е127 (рис. 6) изотерма S-типа (по классификации Ч. Джайлса) [28] характеризуется вогнутой линией относительно оси концентрации. Параллельная ориентация молекул красителя Е127 относительно поверхности пленки при малых концентрациях приводит к занятию активных центров полимера [28]. Сорбция Е127 на поверхности полиимида (рис. 7) может проходить за счет образования водородной связи между функциональной группой красителя и водой (2364 см–1; СОО Н2О) и водой и функциональной группой полиимида (1373 см–1; =NH H2O) (рис. 4) [29, 30].

 

Рис. 6. Изотерма сорбции красителя эритрозина (Е127) (рН 6.90): 1 – ПМО-Е127; 2 – ПС.

 

Рис. 7. Схема образования водородных связей молекул эритрозина Е127 и полиимида.

 

В случае с индигокармином Е132 (рис. 8) из-за взаимодействия красителя с растворителем сорбция его незначительна до концентрации 25 мкмоль/дм3, затем она резко увеличивается, что описывается изотермой V-типа (классификация по IUPAC) [28, 31]. Анализ ИК-спектров показал, что сорбция Е132 на поверхности полиимида протекает через гидрато-разделенную пару, как и при сорбции эритрозина, о чем свидетельствуют полосы пропускания характеристических частот колебаний функциональных групп красителя и воды (1117 см–1; SO3 … H2O) или (1612 см–1; >С=О …Н2О), а также воды и функциональных групп полиимида (2357 см–1; СОО … Н2О) или (1365 см–1; = NH … H2O) (рис. 5, 9) [29, 30].

 

Рис. 8. Изотерма сорбции красителя индигокармина (Е132) (рН 6.99): 1 – ПМО-Е132; 2 – ПС.

 

Рис. 9. Схема образования водородных связей молекул индигокармина Е132 и полиимида.

 

Сорбционные характеристики для полученных полимеров представлены в табл. 3. Для полимеров сравнения (ПС) значения коэффициентов распределения на порядок ниже, чем для ПМО красителей. Для ПМО красителей характерны высокие значения степеней извлечения и импринтинг-фактор, что указывает на селективность к молекуле красителя.

 

Таблица 3. Характеристики адсорбции красителя ПМО и ПС (n = 5, P = 0.95)

Сорбент

Краситель

R, %

Sr, %

D, дм3

Sr, %

IF

Sr,%

ПС

Е127

18.1 ± 0.9

3.8

0.0150 ± 0.0007

3.5

7.3

4.1

ПМО-Е127

79.3 ± 4.3

4.3

0.110 ± 0.005

3.8

ПС

Е132

4.4 ± 0.2

3.7

0.0121 ± 0.0006

3.8

3.7

4.1

ПМО-Е132

88.1 ± 3.2

2.9

0.044 ± 0.002

3.2

 

В результате плотного заполнения поверхности полиимидной пленки молекулами эритрозина и индигокармина их площади проекций (Si) не сильно отличаются от рассчитанных значений площадей молекул (а) (табл. 4), что указывает на увеличение дисперсионного взаимодействия с активными центрами поверхности и сохранение образовавшихся Н-связей между функциональными группами молекул красителя и молекулами воды. Вероятно, молекулы красителя в адсорбционном слое располагаются перпендикулярно относительно поверхности сорбента. Таким образом, сорбция красителей происходит за счет образования гидрато-разделенной пары между полиимидом (сорбентом) и красителем.

 

Таблица 4. Максимальная емкость (Аm) и площадь поверхности Si сорбента, приходящаяся на молекулу красителя

Краситель

S0, нм2

Хm, мг/г

а, нм2

Sуд, м2

Аm, мкмоль/г

Si, нм2

Эритрозин, Е127

6.24

1.01

1.41

1.07

1.36

1.31

Индигокармин, Е132

4.08

1.35

0.92

1.78

3.97

0.74

Примечание: Хm – величина монослойной адсорбции; а – площадь “посадочной площадки” одной молекулы, S0 – площадь одной молекулы.

 

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В работе определены равновесные характеристики сорбции красителей полиимидными пленками с молекулярными отпечатками. Изотермы сорбции имеют S-образную форму. Рассчитанные сорбционные характеристики и импринтинг-фактор свидетельствуют о том, что полимеры с молекулярными отпечатками на основе полиимида обладают наибольшей сорбируемостью молекул красителя, чем их полимеры сравнения. Рассчитанные характеристики площади проекции молекул красителя и данные ИК-спектроскопии указывают на их перпендикулярную ориентацию относительно поверхности сорбента, а также на образование водородных связей с полиимидом через гидрато-разделенную пару. Полученные пленки предполагается использовать в создании модифицированных сенсоров и сенсорных систем, которые могут быть использованы в научных исследованиях, а также применяться для анализа или очистки сточных вод.

ФИНАНСИРОВАНИЕ РАБОТЫ

Работа выполнена без какой-либо финансовой поддержки.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

В данной работе отсутствуют исследования человека или животных.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы данной работы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

×

About the authors

С. А. Хальзова

Муниципальное унитарное предприятие “Очистные сооружения” Борисоглебского городского округа Воронежской области

Author for correspondence.
Email: ahalzov@mail.ru
Russian Federation, ул. Привольная, 2а, Борисоглебск, Борисоглебский район, Воронежская область, 397166

А. Н. Зяблов

Воронежский государственный университет Министерства науки и высшего образования Российской Федерации

Email: ahalzov@mail.ru
Russian Federation, Университетская пл., 1, Воронеж, 394018

А. Ю. Выборный

Воронежский государственный университет Министерства науки и высшего образования Российской Федерации

Email: ahalzov@mail.ru
Russian Federation, Университетская пл., 1, Воронеж, 394018

References

  1. Зуев В.В. Основы создания полимеров медицинского назначения. Университет ИТМО, 2022.
  2. Адрова Н.А., Бессонов М.И., Лайус Л.А., Рудаков А.П. Полиимиды – новый класс термостойких полимеров. Ленинград: Наука, 1968.
  3. Крутько Э.Т., Прокопчук Н.Р. Перспективные пути создания новых термостойких материалов на основе полиимидов // Труды БГТУ: Химия, технология органических веществ и биотехнология. 2013. № 4. С. 145–149.
  4. Мишина А.А., Зяблов А.Н., Селеменев В.Ф. Моделирование полимеров с молекулярными отпечатками глицина на основе полиамидокислоты и коллоксилина // Известия высших учебных заведений. Сер. Химия и химическая технология. 2010. Т. 53. № 4. С. 20–24.
  5. Jiang X., Sui X., Lu Y. et al. In vitro and in vivo evaluation of a photosensitive polyimide thin-film microelectrode array suitable for epiretinal stimulation // Journal of Neuroengineering and Rehabilitation. 2013. V. 48. № 10. P. 1–12. https://doi.org/10.1186/1743-0003-10-48
  6. Lago N., Yoshida K., Koch P.K. et al. Assessment of biocompatibility of chronically implanted polyimide and platinum intrafascicular electrodes // IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 2007. V. 2. № 54. P. 281–290. https://doi.org/10.1109/TBME.2006.886617
  7. Lee K.B., He J., Singh A. et al. Polyimide-based intracortical neural implant with improved structural stiffness // Journal of Micromechanics and Microengineering. 2004. V. 1. № 14. P. 32–37. https://doi.org/10.1088/0960-1317/14/1/305
  8. Kanno M., Kawakami H., Nagaoka S. et al. Biocompatibility of fluorinated polyimide // Journal of Biomedical Materials Research. 2002. V. 1. № 60. P. 53–60. https://doi.org/10.1002/jbm.1280
  9. Rusu R.D., Damaceanu M.D., Constantin P.C. Intelligent Polymers for Nanomedicine and Biotechnologies. Boca Raton: Taylor & Francis, 2018.
  10. Зяблов А.Н., Калач А.В., Жиброва Ю.А., Селеменев В.Ф., Дьяконова О.В. Определение глицина в водных растворах пьезосенсором, модифицированным полимером с молекулярным отпечатком // Журн. аналит. химии. 2010. Т. 65. № 1. С. 93–95. https://doi.org/10.1134/S106193481001017X
  11. Жиброва Ю.А., Зяблов А.Н., Селеменев В.Ф., Дьяконова О.В., Соколова С.А. Полимеры с молекулярными отпечатками для пьезокварцевых сенсоров. Сообщение 2. Анализ морфологии поверхности пленки коллоксилина // Сорбц. и хроматограф. процессы. 2008. Т. 8. № 5. С. 853–857.
  12. Зяблов А.Н., Максимов М.С., Селеменев В.Ф., Жиброва Ю.А., Калач А.В. Анализ морфологии поверхности модифицированного пьезокварцевого резонатора // Сорбц. и хроматограф. процессы. 2006. Т. 6. № 5. С. 869–874.
  13. Бондаревский А.С., Ермолаева Т.Н. Биомимические сенсоры с рецепторными покрытиями на основе полимеров с молекулярными отпечатками // Сорбц. и хроматограф. процессы. 2007. Т. 7. № 1. С. 171–179.
  14. Гендриксон О.Д., Жердев А.В., Дзантиев Б.Б. Молекулярно-импринтированные полимеры и их применение в биохимическом анализе // Успехи биолог. химии. 2006. Т. 46. С. 149–192.
  15. Ермолаева Т.Н., Чернышова В.Н., Бессонов О.И. Микро- и наночастицы полимеров с молекулярными отпечатками – синтез, характеристика и применение в пьезокварцевых сенсорах // Сорбц. и хроматограф. процессы. 2015. Т. 15. № 3. С. 345–365.
  16. Благутина В.В. Отпечатки молекул // Химия и жизнь. 2011. № 3. С. 2–8.
  17. Болотов В.М. Пищевые красители: классификация, свойства, анализ, применение. СПб.: ГИОРД, 2008.
  18. Хальзова С.А., Кривоносова Д.А., Зяблов А.Н., Дуванова О.В. Определение синтетических красителей Е102, Е110, Е122 и Е124 в безалкогольных напитках модифицированными пьезосенсорами // Аналитика и контроль. 2017. Т. 21. № 2. С. 85–92. http://dx.doi.org/10.15826/analitika.2017.21.2.006
  19. Hilal I., Ahmet K. Electrochemical determination of indigo carmine in food and water samples using a novel platform based on chiral amine-bis(phenolate) boron complex. Dyes and Pigments, 2022. Vol. 197. https://doi.org/10.1016/j.dyepig.2021.109921
  20. Xiaoyu Z., Wenshuai H., Yanfei W. et al. Decoration of graphene with 2-aminoethanethiol functionalized gold nanoparticles for molecular imprinted sensing of erythrosine // Carbon. 2018. V. 127. P. 618–626. https://doi.org/10.1016/j.carbon.2017.11.041
  21. Бессонов М.И., Котон М.М., Кудрявцев В.В., Лайус Л.А. Полиимиды – класс термостойких полимеров. Ленинград: Наука, 1983.
  22. Бессонов М.И., Кузнецов Н.П., Котон М.М. О температурах переходов ароматических полиимидов и физических основах их химической классификации // Высокомолекул. соединения. 1978. Т. 20. № 2. С. 347–353.
  23. Дьяконова О.В., Зяблов А.Н., Котов В.В., Елисеева Т.В., Селеменев В.Ф., Фролова В.В. Исследование состояния поверхности мембран на основе полиамидокислоты // Сорбц. и хроматограф. процессы. 2005. Т. 5. № 6. С. 824–831.
  24. Scanning Probe Microscopy Image Processing Software “FemtoScan Online”. Moscow: Advanced Technologies Center. spm@nanoscopy.org (accessed on March 11, 2017).
  25. Кудринская В.А., Дмитриенко С.Г. Влияние растворителя на сорбционные свойства полимеров с молекулярными отпечатками кверцетина // Сорбц. и хроматограф. процессы. 2009. Т. 9. № 6. С. 824–829.
  26. Яшкин С.Н., Кольцов Л.В., Лосева М.А. Молекулярная адсорбция на границе раздела «жидкий раствор – твердый адсорбент». Самара: Самарский государственный технический университет, 2012.
  27. Когановский А.М., Левченко Т.М., Кириченко В.А. Адсорбция растворенных веществ. Киев: Наукова думка, 1977.
  28. Липатов Ю.З., Сергеева Л.С. Адсорбция полимеров. Киев: Наукова думка, 1972.
  29. Тарасевич Б.Н. ИК спектры основных классов органических веществ: справочные материалы. Москва: МГУ, 2012.
  30. Silverstein R.M., Webster F.X. Spectrometric Identification of Organic Compounds. New York: John Wiley & Sons, Inc. 1997.
  31. Sing K.S.W., Everett D.H., Haul R.A.W., Moscou L., Pierotti R.A., Rouquerol J., Siemieniewska T. Reporting physisorption data for gas/solid systems with special reference to the determination of surface area and porosity [IUPAC Recommendations 1984] // Pure Appl. Chem. 1985. V. 57. № 4. pp. 603–619.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. Fig. 1. SSM image of the surface of a polyimide-based film (PS).

Download (352KB)
3. Fig. 2. SSM image of the surface of a polymer film with a molecular imprint of the dye E127.

Download (176KB)
4. Fig. 3. SSM image of the surface of a polymer film with a molecular imprint of the E132 dye.

Download (173KB)
5. Fig. 4. IR spectrum of erythrosine dye (E127) and polymer films based on polyimide: 1 - pure polymer; 2 – polymer after removal of the dye; 3 – polymer with dye; 4 – dye.

Download (242KB)
6. Fig. 5. IR spectrum of indigocarmine (E132) dye and polymer films based on polyimide: 1 – pure polymer; 2 – polymer after removal of the dye; 3 – polymer with dye; 4 – dye.

Download (238KB)
7. Fig. 6. Isotherm of erythrosine dye sorption (E127) (pH 6.90): 1 – PMO-E127; 2 – PS.

Download (85KB)
8. Fig. 7. Scheme of formation of hydrogen bonds of erythrosine E127 and polyimide molecules.

Download (73KB)
9. Fig. 8. Isotherm of sorption of indigocarmine dye (E132) (pH 6.99): 1 – PMO-E132; 2 – PS.

Download (93KB)
10. Fig. 9. Scheme of formation of hydrogen bonds of indigocarmine E132 and polyimide molecules.

Download (70KB)

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».