Тестирование микросателлитных локусов крыжовника на черной и красной смородине
- Авторы: Пикунова А.В.1, Павленко А.А.1, Должикова М.А.1, Голяева О.Д.1, Князев С.Д.1
-
Учреждения:
- Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
- Выпуск: Том 60, № 10 (2024)
- Страницы: 117-121
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0016-6758/article/view/273880
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675824100114
- EDN: https://elibrary.ru/wekcgy
- ID: 273880
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Одиннадцать микросателлитных маркеров, ранее разработанных на основании сиквенсов крыжовника, были протестированы на красной и черной смородине. В результате все микросателлитные локусы амплифицировали на представителях смородины черной, а на представителях смородины красной в трех локусах не было амплификации (RucANS, RucDFR2-1, RucDFR1-3). Выявлены полиморфные локусы как для черной, так и для красной смородины. В локусе MTT-7 у исследуемых генотипов черной смородины наблюдается амплификация трех фрагментов, возможно, данный локус дублицирован. При этом на красной смородине в локусе MTT-7 наблюдается амплификация, типичная для монолокусного микросателлита. Локусы RucHLH-1 и RucUFGT были протестированы на гибридной семье смородины красной (Белая Потапенко × 1426-21-80). Путем генетического картирования установлена локализация локуса RucHLH-1 на группе сцепления 4 в геноме красной смородины и локализация RucUFGT (предположительно) на группе сцепления 1. Набор микросателлитных локусов для рода Смородина на данный момент ограничен. В данной работе показано, что часть SSR-маркеров, разработанных на крыжовнике, амплифицируются и выявляют полиморфизм и на смородине тоже, а также могут быть использованы для исследований как черной, так и красной смородины.
Ключевые слова
Полный текст
Микросателлитные маркеры (SSR, simple sequence repeat) ограничивают повторы простых последовательностей ДНК, размер повторяющейся единицы которых не превышает 1–10 п. н. SSR ‒ мультиаллельные, кодоминантные маркеры, обладающие хорошей воспроизводимостью. Они широко используются как инструмент характеристики геномов различных живых организмов, в том числе сельскохозяйственно-значимых культур [1].
Первые микросателлитные маркеры для представителей рода Смородина были созданы шотландскими учеными в начале 2000-х гг. [2]. На данный момент набор протестированных микросателлитных локусов для смородин крайне ограничен и насчитывает не более 100 локусов, из них около 50 картированы в геноме черной или красной смородины [3, 4]. Для сравнения – база данных Hidras насчитывает 664 локуса для яблони (https://sites.unimi.it/camelot/hidras/HiDRAS-SSRdb/pages/CompleteSRRtable.php), большинство из которых картированы.
SSR применяют в фундаментальных исследованиях по оценке генетического полиморфизма, изучению филогенетических отношений, построению генетических карт для групп сцепления и в прикладных целях – для изучения родословных, формирования идентификационных систем, поиска маркеров, связанных с важными хозяйственно-биологическими свойствами, при маркер-вспомогательном отборе интересных с генетико-селекционной точки зрения генотипов в начале онтогенеза растений [5].
Род Смородина (Ribes L.) включает более 150 видов, хозяйственное значение имеют смородина черная (Ribes nigrum L.), смородина красная (Ribes rubrum L.) и крыжовник (Ribes uva-crispa L.) [6]. По современным взглядам, смородина и крыжовник принадлежат к одному роду Ribes [3, 7], хотя ранее относились к двум различным родам в пределах одного семейства в связи со значительными морфологическими отличиями [8]. Зачастую SSR-маркеры, разработанные для одного вида, могут использоваться и при исследовании близкородственных видов за счет консервативности генома [5].
Цель настоящей работы – проверить переносимость микросателлитных локусов, разработанных для крыжовника на черной и красной смородине.
Таблица 1. Микросателлитные локусы, задействованные в работе
№ | Название локуса | T отжига, °С | Последовательность праймеров 5–3′ | Источник | |
F | R | ||||
1 | MTT-5 | 56 | GCGATTCCATTACGACACTTTGCA | gtttATAGGCAAGCATCACCTCACC | [10] |
2 | MTT-7 | 50 | CACCCAACATACTGTAATGGATCGAAG | gtttACACGATCTCGTTCTATC | |
3 | MTT-9 | 50 | ATGACTCTGATACCACACCAG | gttTGCGTATGTGATTCTGCTCTG | |
5 | RucANS | 60 | TCTTAACCCTAAAATTGCAGCC | gtttCCATTCCACCAACTTCTTTCTC | [11] |
6 | RucHLH-1 | 60 | TTTCACTAGAGCCATTCTTGCC | gtttGAAAATACGTTCACGATGGAGC | |
7 | RucHLH-2 | 60 | TTTTCTCTTCCTCGTGTTGCTC | gtttCCCTCTCTGTAGTGCCAAATTC | |
8 | RucHLH-3 | 60 | GAATTTGGCACTACAGAGAGGG | gttTGAAGTTGAGTGTTCGGAGAGA | |
9 | RucDFR1-2 | 50 | ACCCTACTTGGCAGAATGAAGT | gtttCGTGGTCTTCGACACAAAATAC | |
10 | RucDFR1-3 | 60 | CTAGTGGTTGGTCCTTTCATCA | gtttCTAGGCTGGTCCCTAAATCGTA | |
11 | RucDFR2-1 | 60 | CTATATCGTTCGAGCAACCGTA | gttTGGCAAGTCTAACAAATGCTTC | |
12 | RucUFGT | 55 | GTGCTCATGTTTATACCGACTTCA | gtttCAAAGCAAAGGGAAGAGGTTG |
ДНК выделяли из молодых листьев смородины CTAB-методом с небольшими модификациями [9]. В настоящей работе протестировали 11 микросателлитных локусов (табл. 1) на красной (сорт Белая Потапенко и гибридная форма 1426-21-80) и черной смородине (сорта Кипиана, Арапка, Воевода, гибридная форма 3516-14-46). Локусы RucHLH-1 и RucUFGT также были протестированы на гибридах картирующей популяции красной смородины, полученной от скрещивания Белая Потапенко и формы 1426-21-80, всего 139 гибридов (шесть из них были исключены в процессе картирования в связи с большим количеством выпадов). Разделение фрагментов проводили в 8%-ном ПААГ с окрашиванием нитратом серебра. Значение коэффициентов гетерозиготности вычисляли в программе GenAIEx 6.5 [12]. Генетическую карту составляли с применением программы Join Map3/0, регрессионное картирование с использованием функции Kosambi.
Микросателлитные локусы, задействованные в работе, ранее были получены на основании сиквенсов крыжовника в работах K. Antonius с соавт. [10] и E. Vidyagina с соавт. [11]. В результате все микросателлитные локусы амплифицировали на представителях смородины черной, а на представителях смородины красной не было амплификации в трех локусах: RucANS, RucDFR2-1, RucDFR1-3 (табл. 2). Данный факт может опосредованно отражать большую генетическую близость крыжовника к смородине черной, нежели чем к смородине красной, отмеченную ранее на основании исследований с применением различных типов молекулярно-генетических данных [13, 14].
Диапазон амплифицируемых на образцах смородины фрагментов в целом аналогичен диапазону аллелей на крыжовнике, кроме локусов RucUFGT и RucDFR1-3, в которых размеры фрагментов для крыжовника и смородин значительно различаются. Локус RucHLH-2 оказался мономорфным у всех проанализированных образцов красной и черной смородины, в нем был амплифицирован один фрагмент размером около 245 п. н. У образцов черной смородины в локусах RucDFR1-3, RucDFR2-1, RucHLH-3 также амплифицировался один мономорфный фрагмент (160, 230, 310 п. н. соответственно). У образцов красной смородины мономорфный фрагмент амплифицировался также в локусе MTT-5. При этом в локусах MTT-9, RucHLH-3 и RucDFR1-2 у образцов красной смородины наблюдалась амплификация лишь у одного из тестируемых образцов, данные локусы мы рассматриваем как полиморфные.
Таблица 2. Результаты амплификации микросателлитных локусов на красной и черной смородине
№ | Локус | Размеры фрагментов, п. н. | Ho | He | ||
крыжовник* | черная смородина | красная смородина | ||||
1 | MTT-5 | 145–261 | 140–152 | 162 | 0.50 | 0.68 |
2 | MTT-7 | 151–193 | 150, 160, 198 | 140–153 | 1.00 | 0.74 |
3 | MTT-9 | – | 225, 320 | 335 | 0.40 | 0.34 |
4 | RucANS | 237, 241 | 210, 212 | – | 0.75 | 0.47 |
5 | RucHLH-1 | 198, 208 | 235–240 | 220–222 | 0.33 | 0.67 |
6 | RucHLH-2 | 243–248 | 245 | 245 | – | – |
7 | RucHLH-3 | 314–319 | 310 | 305 | 0.00 | 0.32 |
8 | RucDFR1-2 | 364–397 | 375–480 | 340 | 0.20 | 0.46 |
9 | RucDFR1-3 | 318–326 | 160 | – | – | – |
10 | RucDFR2-1 | 257–261 | 230 | – | – | – |
11 | RucUFGT | 343–355 | 510, 515 | 685–700 | 0.50 | 0.74 |
Примечание. Прочерк - амплификации на протестированных образцах не было. * – по ранее опубликованным данным разработчиков локусов [11, 12]; Ho – наблюдаемая гетерозиготность; He – ожидаемая гетерозиготность.
По полученным данным были подсчитаны коэффициенты гетерозиготности (см. табл. 2). Наблюдаемая гетерозиготность варьировала от 0.2 (в локусе RucDFR1-2) до 1 (в локусе MTT-7), ожидаемая гетерозиготность варьировала от 0.32 (в локусе RucHLH-3) до 0.74 (в локусах MTT-7 и RucUFGT). MTT-7 на ДНК каждого образца черной смородины амплифицировал по три фрагмента и, возможно, является двулокусным. При этом на красной смородине наблюдается амплификация, типичная для монолокусного микросателлита. Возможно, в геноме черной смородины локус MTT-7 дублицирован. Однако для подтверждения данной гипотезы необходимы дополнительные исследования.
Таким образом, в результате были выявлены полиморфные локусы для черной (MTT-5, MTT-7, MTT-9, RucANS, RucHLH-1, RucDFR1-2, RucUFGT) и красной (MTT-9, RucHLH-3, RucDFR1, MTT-7, RucHLH-1, RucUFGT) смородины.
Локусы RucHLH-1 и RucUFGT протестировали на гибридной семье (Белая Потапенко × 1426-21-80). Полученные данные были использованы для построения генетической карты вместе с ранее полученной информацией о полиморфизме микросателлитных и SNP-маркеров [4]. Локус RucHLH-1 был локализован нами на группе сцепления 4 вместе с микросателлитным локусом e1-О21 и 94 SNP-маркерами (карта раунда 3, LOD 5, рис. 1).
Рис. 1. Генетическая карта группы сцепления 4 смородины красной и локализация на ней локуса RucHLH-1 (указан стрелкой).
Локус RucUFGT сгруппировался вместе с микросателлитным локусом g1-K04 и SNP-маркером TP1673 (карта раунда 1, LOD 5) на расстоянии 5 сМ от g1-K04. На предыдущей генетической карте красной смородины локус g1-K04 не был сгруппирован с другими маркерами [4], однако на ранее опубликованной генетической карте черной смородины он располагается на группе сцепления 1 [3]. Таким образом, в данной работе установлена локализация локуса RucHLH-1 на группе сцепления 4 в геноме смородины красной и локализация RucUFGT, предположительно, на группе сцепления 1.
В настоящей работе показано, что большая часть SSR-маркеров, разработанных на крыжовнике, амплифицируется и выявляет полиморфизм и на смородине, они могут быть использованы для исследований как черной, так и красной смородины.
Работа выполнена при поддержке гранта РНФ “Изучение генома смородины (Ribes L.) с помощью ДНК маркеров” 23-26-00160.
Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с использованием в качестве объекта животных.
Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с участием в качестве объекта людей.
Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
Об авторах
А. В. Пикунова
Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Автор, ответственный за переписку.
Email: pikuanna84@mail.ru
Россия, Орловская область, п/о Жилина, 302530
А. А. Павленко
Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Email: pikuanna84@mail.ru
Россия, Орловская область, п/о Жилина, 302530
М. А. Должикова
Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Email: pikuanna84@mail.ru
Россия, Орловская область, п/о Жилина, 302530
О. Д. Голяева
Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Email: pikuanna84@mail.ru
Россия, Орловская область, п/о Жилина, 302530
С. Д. Князев
Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Email: pikuanna84@mail.ru
Россия, Орловская область, п/о Жилина, 302530
Список литературы
- Vieira M.L., Santini L., Diniz A.L., Munhoz C.D. Microsatellite markers: What they mean and why they are so useful // Genet. Mol. Biol. 2016. V. 4. № 39. P. 312–328. https://doi.org/10.1590/1678-4685-GMB-2016-0027
- Brennan R., Jorgensen L., Woodhead M., Russell J. Development and characterization of SSR markers in Ribes species // Mol. Ecol. 2002. V. 2. № 3. P. 327–330. https://doi.org/10.1046/j.1471-8286.2002.00233.х
- Brennan R., Jorgensen L., Hackett C. et al. The development of a genetic linkage map of blackcurrant (Ribes nigrum L.) and the identification of regions associated with key fruit quality and agronomic traits // Euphytica. 2008. V. 161. P. 19–34. https://doi.org/10.1007/s10681-007-9412-8
- Пикунова А.В, Горюнова С.В, Горюнов Д.В. Генетическая карта смородины красной (Ribes rubrum L.), построенная с применением SSR и SNP ДНК-маркеров // Генетика. 2020. V. 56. № 11. С. 1340–1344. https://doi.org/10.31857/S0016675820100100
- Kalia R.K., Rai M.K., Kalia S. et al. Microsatellite markers: An overview of the recent progress in plants // Euphytica. 2011. V. 177. № 3. P. 309–334. https://doi.org/10.1007/s10681-010-0286-9
- Князев С.Д., Огольцова Т.П. Селекция смородины черной на современном этапе. Орел: Изд-во ОрелГАУ, 2004. 238 с.
- Janczewski E. Monograph of the currants Ribes L. // Mem. Soc. Phys. Hist. Nat. Geneve. 1907. V. 35. P. 199–517.
- Berger A. A taxonomic review of currants and gooseberries // N.Y. Agric. Exptl Sta. Techn. Bull. 1924. V. 109. P. 1–118.
- Doyle J.J., Doyle J.L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue // Phytochem. Bull. 1987. V. 19. P. 11–15.
- Antonius K., Karhu S., Kaldm H. et al. Development of the Northern European Ribes core collection based on a microsatellite (SSR) marker diversity analysis // Plant Genet. Res.: Characterization and Utilization. 2012. V. 10. P. 70–73. https://doi.org/10.1017/S1479262111000980
- Vidyagina E.O., Lebedev V.G., Subbotina N.M. The development of the genic SSR markers for analysis of genetic diversity in gooseberry cultivars // Agronomy. 2021. V. 11. № 6. https://doi.org/10.3390/agronomy11061050
- Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: Genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research — an update // Bioinformatics. 2012. V. 28. Р. 2537–2539. https: 10.1111/j.1471- 8286.2005.01155.x
- Пикунова А.В., Мартиросян Е.В., Князев С.Д., Рыжова Н.Н. Применение RAPD-анализа для изучения генетического полиморфизма и филогенетических связей у представителей рода Ribes L // Экол. генетика. 2011. Т. 9. № 2. С. 34–44.
- Pikunova A., Goryunova S., Goryunov D. Genetic diversity and pedigree analysis of red currant germplasm // Plants. 2022. V. 11. № 13. https://doi.org/10.3390/plants11131623
Дополнительные файлы
