Образование колетер на листьях микроклонов батата (Ipomoea batatas L.) в условиях in vitro
- Авторы: Киракосян Р.Н.1, Голиванов Я.Ю.1,2, Трухачев В.И.1, Зайцева С.М.1, Халилуев М.Р.2, Баранова Е.Н.2,3, Калашникова Е.А.1
-
Учреждения:
- Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования “Российский государственный аграрный университет − МСХА им. К.А. Тимирязева”
- Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии”
- Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина Российской академии наук
- Выпуск: Том 70, № 6 (2023)
- Страницы: 612-622
- Раздел: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://journals.rcsi.science/0015-3303/article/view/232774
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0015330323600201
- EDN: https://elibrary.ru/CWCXWX
- ID: 232774
Цитировать
Аннотация
Получены микроклоны in vitro овощного батата (Ipomoea batatas L.) и исследовано образование колетер на их листьях. Исследования проводили на трех сортах батата, отличающихся цветом мякоти и кожурой клубнеплодов, а также разными сроками созревания – Пурпл, Jewel и Мускатный. Изучено влияние ½ нормы минеральных солей МС, 1 нормы МС и 1½ нормы МС на морфометрические показатели микроклонов батата. Установлено, что применение ½ нормы минеральных солей по МС приводило к получению быстро растущих пазушных и адвентивных побегов и формированию мощной корневой системы в базальной части микрочеренков. Впервые на листьях микроклонов батата при введении и выращивании в культуре in vitro обнаружено образование секреторных выростов. Новообразования были отнесены к колетерам и дана их характеристика. Показана зависимость образования колетер на листьях микроклонов от циклов культивирования.
Ключевые слова
Об авторах
Р. Н. Киракосян
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования“Российский государственный аграрный университет − МСХА им. К.А. Тимирязева”
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва
Я. Ю. Голиванов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования“Российский государственный аграрный университет − МСХА им. К.А. Тимирязева”; Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии”
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва; Россия, Москва
В. И. Трухачев
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования“Российский государственный аграрный университет − МСХА им. К.А. Тимирязева”
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва
С. М. Зайцева
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования“Российский государственный аграрный университет − МСХА им. К.А. Тимирязева”
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва
М. Р. Халилуев
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии”
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва
Е. Н. Баранова
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии”; Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина Российской академии наук
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва; Россия, Москва
Е. А. Калашникова
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования“Российский государственный аграрный университет − МСХА им. К.А. Тимирязева”
Автор, ответственный за переписку.
Email: mia41291@mail.ru
Россия, Москва
Список литературы
- Tumwegamire S., Kapinga R., Rubaihayo P.R., LaBonte D.R. Evaluation of dry matter, protein, starch, sucrose, ß-carotene, iron, zinc, calcium, and magnesium in East African sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam) germplasm // Hort. Sci. 2011. V. 46. P. 348. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.46.3.348
- Abubakar A.S., Yahaya S.U., Shaibu A.S., Ibrahim H. In vitro propagation of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) cultivars // Agric. Sci. Digest. 2018. V. 38. P. 17. https://doi.org/10.18805/ag.D-128
- Калашникова Е.А. Клеточная инженерия растений: Учебник и практикум. М.: Юрайт. Сер. 76. Высшее образование. (2-е изд.). 2020. 378 с.
- Калашникова Е.А., Киракосян Р.Н. Современные аспекты биотехнологии. М.: РГАУ–МСХА. 2016. 145 с.
- Tresmondi F., Canaveze Y., Guimarães E., Machado S.R. Colleters in Rubiaceae from forest and savanna: The link between secretion and environment // Sci. Nat. 2017. V. 104. P. 17. https://doi.org/10.1007/s00114-017-1444-x
- Voigt D., Kim J., Jantschke A., Varenberg M. Robust, universal, and persistent bud secretion adhesion in horse-chestnut trees // Sci. Rep. 2020. V. 10. P. 16925. https://doi.org/10.1038/s41598-020-74029-5
- Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. V. 15. P. 473. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
- Soukupova J., Cvikrova M., Albrechtova J., Rock B.N., Eder J. Histochemical and biochemical approaches to the study of phenolic compounds and peroxidases in needles of Norway spruce (Picea abies) // New Phytol. 2000. V. 146. P. 403. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2000.00666.x
- Разаренова К.Н., Бабушкина Е.В., Смирнов П.Д., Костина О.В., Муравник Л.Е. Гистохимия трихом официнальных представителей семейства Lamiaceae // Медицинский альманах. 2017. Т. 3. С. 193.
- Gardner R.O. Vanillin-hydrochloric acid as a histochemical test for tannin //Stain Technol. 1975. T. 50. P. 315. https://doi.org/10.3109/10520297509117081
- Костина О.В., Муравник Л.Е. Колетеры прилистников Pentas lanceolata (Rubiaceae) ультраструктурные и функциональные особенности // Ботанический журнал. 2017. Т. 102. С. 733.
- Gonzalez M., Tarragô R. Anatomical structure and secretion compounds of colleters in nine Ilex species (Aquifoliaceae) from southern South America // Bot. J. Lin. Soc. 2009. V. 160. P. 197. https://doi.org/10.1111/j.1095-8339.2009.00969.x
- Miguel E.C., Klein D.E., Oliveira M.A., Cunha M. Ultrastructure of secretory and senescence phase in colleters of Bathysa gymnocarpa and B. stipulate (Rubiaceae) // Rev. Braz. Bot. 2010. V. 33. P. 425. https://doi.org/10.1590/S0100-84042010000300006
- Paiva E.A.S. Occurrence, structure and functional aspects of the colleters of Copaifera langs- dorffii Desf. (Fabaceae, Caesalpinioideae) // Comp. Rend. Biol. 2009. V. 332. P. 1078. https://doi.org/10.1016/j.crvi.2009.08.003
- Canaveze Y., Machado S.R. Leaf colleters in Tabernaemontana catharinensis (Apocynaceae, Rauvolfioideae): structure, ontogenesis, and cellular secretion // Botany. 2015. V. 93. P. 287. https://doi.org/10.1139/cjb-2014-0229
- Miguel E.C., Gomes V.M., Oliveira M.A., Cunha M.D. Colleters in Bathysa nicholsonii K. Schum. (Rubiaceae): ultrastructure, secretion protein composition and antifungal activity // Plant Biol. 2006. V. 8. P. 715. https://doi.org/10.1055/s-2006-924174
- Муравник Л.Е. Морфология и ультраструктура трихом околоплодников у видов Juglans (Juglandaceae) в связи с синтезом вторичных метаболитов // Ботанический журнал. 2007. Т. 92. P. 96.
- Valkama E., Salminen J.-P., Koricheva J., Pihlaja K. Comparative analysis of leaf trichome structure and composition of epicuticular flavonoids in Finnish birch species // Ann. Bot. 2003. V. 91. P. 643. https://doi.org/10.1093/aob/mcg070
- Kirakosyan R.N., Kalashnikova E.A., Abubakarov H.G., Sleptsov N.N., Dudina Y.A., Temirbekova S.K., Khuat Q.V., Trukhachev V.I., Sumin A.V. Influence of mineral treatment, plant growth regulators and artificial light on the growth of Jewel sweet potato (Ipomoea batatas Lam. cv. Jewel) in vitro // Life. 2023. V. 13. P. 52. https://doi.org/10.3390/ life13010052
- Klein D.E., Gomes V.M., Silva-Neto S.J., Cunha M. The structure of colleters in several species of Simira (Rubiaceae) // Ann. Bot. 2004. V. 94. P. 733. https://doi.org/10.1093/aob/mch198
- Thomas V. Structural, functional and phylogenetic aspects of the colleter // Ann. Bot. 1991. V. 68. P. 287.
- Appezzato-da-Gloria B., Estelita M.E.M. Development, structure and distribution of colleters in Mandevilla illustris and M. velutina (Apocynaceae) // Braz. J. Bot. 2000. V. 23. P. 113. https://doi.org/10.1590/S0100-84042000000200001
- Da Cunha M., Vieira R.C. Anatomia foliar de Psychotria velloziana Benth. (Rubiaceae) // Rodriguésia. 1993. V. 45–49. P. 39. https://doi.org/10.1590/2175-7860199319974549717504
- Mayer J.L.S., Cardoso-Gustavson P., Appezzato-da-Glória B. Colleters in monocots: new record for Orchidaceae // Flora. 2011. V. 206. P. 185. https://doi.org/10.1016/j.flora.2010.09.003
- De-Paula O.C., Oliveira D.M.T. Ocorrencia de coleteres em embrioes de tres especies de Chamaecrista Moench (Fabaceae: Caesalpinioideae) // Rev. Bras. Biocienc. 2007. V. 5. P. 348.
- Klein D.E., Gomes V.M., Silva-Neto S.J., Cunha M. The structure of colleters in several species of Simira (Rubiaceae) // Ann. Bot. 2004. V. 94. P. 733. https://doi.org/10.1093/aob/mch198
- Muravnik L.E., Kostina O.V., Shavarda A.L. Development, structure and secretion com- pounds of stipule colleters in Pentas lanceolata (Rubiaceae) // South African J. Bot. 2014. V. 93. P. 27. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2014.03.007
- Paiva E.A.S. Colleters in Cariniana estrellensis (Lecythidaceae): structure, secretion and evidences for young leaf protection1 // J.Torrey Bot. Soc. 2012. V. 139. P. 1. https://doi.org/10.3159/TORREY-D-11-00046.1
- Zanotti A., Fernandes V.F., Azevedo A.A., Meira R.M.S.A. Leaf and sepal colleters in Calolisianthus speciosus Gilg (Gentianaceae): a morphoanatomical comparative analysis and mechanisms of exudation // Acta Bot. Bras. 2021. V. 35. P. 445. https://doi.org/10.1590/0102-33062020abb0424
- Silva M.D.S., Coutinho Í.A.C., Araújo M.N., Meira R.M.S.A. Colleters in Chamaecrista (L.) Moench sect. Chamaecrista and sect. Caliciopsis (Leguminosae-Caesalpinioideae): anatomy and taxonomic implications // Acta Bot. Bras. 2017. V. 31. P. 382. https://doi.org/10.1590/0102-33062016abb0339
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)