Зависимость интенсивности высвобождения кислорода из эритроцитов от степени их кластеризации в сладжи

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Режимы прохождения эритроцитов по микрососудам определяют эффективность транспорта кислорода. В рамках представлений об упаковке эритроцитов в сладжи при прохождении ими микрососудов построена и исследована математическая модель переноса кислорода. Получено аналитическое выражение для зависимости интенсивности высвобождения кислорода от размера эритроцитарного сладжа. Найденное выражение носит инвариантный характер, не зависит от степени детализации описания изменений формы эритроцитов. Обсуждается возможное значение полученных результатов для развития методов экспресс-диагностики кислородтранспортной функции крови человека.

Об авторах

И. А Пономарев

Национальный медицинский исследовательский центр гематологии Минздрава России;Московский физико-технический институт

Москва, Россия;Долгопрудный, Московская обл., Россия

Г. Т Гурия

Национальный медицинский исследовательский центр гематологии Минздрава России;Московский физико-технический институт

Email: guria@blood.ru
Москва, Россия;Долгопрудный, Московская обл., Россия

Список литературы

  1. C. Wang and A. S. Popel, Math Biosci., 116 (1), 89 (1993). doi: 10.1016/0025-5564(93)90062-f
  2. E. Ortiz-Prado, J. F. Dunn, J. Vasconez, et al., Am. J. Blood Res., 9 (1), 1 (2019).
  3. A. Sircan-Kucuksayan, M. Uyuklu, and M. Canpolat, Physiol. Meas., 36, 2461 (2015). doi: 10.1088/09673334/36/12/2461
  4. A. M. Pilotto, A. Adami, R. Mazzolari, et al., J. Physiol., 600 (18), 4153 (2022). doi: 10.1113/JP283267
  5. N. Tateishi, N. Maeda, and T. Shiga, Circ. Res., 70 (4), 812 (1992). doi: 10.1161/01.RES.70.4.812
  6. A. G. Tsai, P. C. Johnson, and M.Intaglietta, Physiol. Rev., 83, 933 (2003). doi: 10.1152/physrev.00034.2002
  7. D. C. Poole, T. I. Musch, and T. D. Colburn, Eur. J. Appl. Physiol., 122, 7 (2022). doi: 10.1007/s00421-021-04854-7
  8. H. Kohzuki, S. Sakata, Y. Ohga, et al., Jap. J. Physiol., 50, 167 (2000). doi: 10.2170/jjphysiol.50.167
  9. N. Tateishi, Y. Suzuki, I. Cicha, and N. Maeda, Am. J. Physiol. - Heart and Circulatory Physiology, 281, H448 (2001). doi: 10.1152/ajpheart.2001.281.1.H448
  10. M. Uyuklu, H. J. Meiselman, and O. K. Baskurt, Clin. hemorheology and microcirculation, 41 (3), 179 (2009). doi: 10.3233/CH-2009-1168
  11. A. Semenov, A. Lugovtsov, P. Ermolinskiy, et al., Photonics, 9 (4), 1 (2022). doi: 10.3390/photonics9040238
  12. R. J. Tomanek, Anatom. Record, 305 (11), 3199 (2022). doi: 10.1002/ar.24951
  13. D. C. Poole and T. I. Musch, Function, 4 (3), zqad013 (2023). doi: 10.1093/function/zqad013
  14. A. Melkumyants, L. Buryachkovskaya, N. Lomakin, et al., Thrombosis and Haemostasis, 122 (01), 123 (2022). doi: 10.1055/a-1551-9911
  15. A. Gupta, M. V. Madhavan, K. Sehgal, et al., Nature Medicine, 26 (7), 1017 (2020). doi: 10.1038/s41591-020-0968-3
  16. S. Chien, in The red blood cell, Ed. by D. M. Surgenor (Acad. Press, London, New York, San Francisco, 1975), pp. 1031-1133.
  17. A. N. Beris, J. S. Horner, S. Jariwala, et al., Soft Matter, 17 (47), 10591 (2021). doi: 10.1039/D1SM01212F
  18. D. A. Fedosov, M. Peltomaki, and G. Gompper, Soft Matter, 10, 4258 (2014). doi: 10.1039/C4SM00248B
  19. N. Z. Piety, W. H. Reinhart, P. H. Pourreau, et al., Transfusion, 56, 844 (2016). doi: 10.1111/trf.13449
  20. T. J. McMahon, Front. Physiol., 10 (1417), 1 (2019). doi: 10.3389/fphys.2019.01417
  21. J. T. Celaya-Alcala, G. V. Lee, A. F. Smith, et al., J. Cerebral Blood Flow & Metabolism, 41 (3), 656 (2021). doi: 10.1177/0271678X20927100
  22. И. Н. Бронштейн и К. А. Семендяев, Справочник по математике для инженеров и учащихся втузов, (Совместное издание издательств "Тойбнер", Лейпциг, и "Наука", Москва, 1981), сс. 169-170.
  23. P. B. Canham, Journal of Theoretical Biology, 26, 61 (1970). doi: 10.1016/S0022-5193(70)80032-7
  24. T. Shiga, N. Maeda, and K. Kon, Crit. Rev. in Oncology/Hematology, 10 (1), 9 (1990). doi: 10.1016/1040-8428(90)90020-S
  25. T. Tajikawa, Y. Imamura, T. Ohno, et al., J. Biorheology, 27, 1 (2013). doi: 10.1007/s12573-012-0052-9
  26. T. W. Secomb, Annu. Rev. Fluid Mechanics, 49, 443 (2017). doi: 10.1146/annurev-fluid-010816-060302
  27. В. Л. Воейков, Успехи физиол. наук, 29, 55 (1998).
  28. A. Rabe, A. Kihm, A. Darras, et al., Biomolecules, 11, 1 (2021). doi: 10.3390/biom11050727
  29. Yu. I. Gurfinkel, O. A. Korol, and G. E. Kufal, SPIE, 3260, 232 (1998). doi: 10.1117/12.307096
  30. I. Cicha, Y. Suzuki, N. Tateishi, and N. Maeda, Am. J. Physiol. - Heart and Circulatory Physiology, 284 (6), H2335 (2003). doi: 10.1152/ajpheart.01030.2002
  31. Y. Arbel, S. Banai, J. Benhorin, et al., Int. J. Cardiol., 154 (3), 322 (2012). doi: 10.1016/j.ijcard.2011.06.116
  32. M. A. Elblbesy and M. E. Moustafa, Int. J. Biomed. Sci., 13 (2), 113 (2017).
  33. R. N. Pittman, Microcirculation, 20 (2), 117 (2013). doi: 10.1111/micc.12017
  34. A. E. Lugovtsov, Y. I. Gurfinkel, P. B. Ermolinskiy, et al., in Biomedical Photonics for Diabetes Research, Ed. by A. V. Dunaev and V. V. Tuchin (CRC Press, London, New York, 2023), pp. 57-79. DOI: 10.1201/ 9781003112099
  35. E. Hysi, R. K. Saha, and M. C. Kolios, J. Biomed. Optics, 17 (12), 125006 (2012). doi: 10.1117/1.JBO.17.12.125006
  36. T. H. Bok, E. Hysi, and M. C. Kolios, Biomed. Optics Express, 7 (7), 2769 (2016). doi: 10.1364/BOE.7.002769

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах